Summary

Propagación de pequeña escala de iPSCs humano en condiciones sin suero para la caracterización inmunocitoquímica de rutina

Published: February 18, 2017
doi:

Summary

Regular characterization of induced pluripotent stem cells (iPSCs), to ascertain maintenance of their pluripotent state, is an important step before these cells are used for other applications. Here we describe a method for the small-scale propagation of human iPSCs specifically designed to enable their easy and routine characterization via immunocytochemistry.

Abstract

There is great interest in utilizing human induced pluripotent stem cells (hiPSCs) for disease modeling and cell therapeutics due to their patient specificity and characteristic stemness. However, the pluripotency of iPSCs, which is essential to their functionality, must be confirmed before these cells can be used in such applications. While a rigorous characterization of iPSCs, through different cellular and functional assays is necessary to establish their pluripotency, routine assessment of pluripotency maintenance can be achieved more simply and effectively through immunocytochemical techniques. Here, we present a systematic protocol for culturing hiPSCs, in a scaled-down manner, to particularly facilitate the verification of their pluripotent state using immunocytochemistry. More specifically, this methodology encompasses an efficient and cost-effective means of growing iPSCs in serum-free conditions and plating them on small chamber slides or glass coverslips ideal for immunocytochemistry.

Introduction

La reprogramación de células somáticas adultas humanas en células madre pluripotentes inducidas (iPS) ofrece una manera de obtener un suministro potencialmente ilimitado de células específicos para cada paciente para estudiar la enfermedad 1, 2. Recapitulando un fenotipo de la enfermedad in vitro sería plausible para examinar los mecanismos celulares y moleculares asociados con la enfermedad, y mejorar el descubrimiento de fármacos y la medicina 3 personalizado. Además, iPSCs humanos (hiPSCs) ofrecen la posibilidad de derivar los tipos de células específicas que se pueden usar como un recurso único para reemplazar las células muertas o disfuncionales y restaurar la función en el contexto de varios trastornos 4, 5.

Un requisito previo importante para el uso de células iPS en las aplicaciones anteriores es asegurarse de que su pluripotentes e indiferenciada estado se mantiene durante la expansión de la cultura. Típicamente, techniqUES tales como citometría de flujo, transferencia Western, reacción en cadena de la polimerasa y ensayos funcionales, que requieren grandes cantidades de células y equipo especializado, se utilizan para el análisis detallado de IPSC pluripotencia 6, 7, 8, 9, 10. Sin embargo, la evaluación de rutina del estado indiferenciado de las células iPS 'efectivamente podría lograrse a través de la propagación limitada de estas células específicamente para inmunocitoquímica (CPI), lo que implica una reducción del tiempo y los recursos.

Los avances recientes permiten el crecimiento de iPSCs en condiciones libres de suero definidos, que es una mejora significativa sobre los sistemas de cultivo convencionales que requieren capas alimentadoras de fibroblastos murinos y medio de suero que contiene. Sin embargo, la literatura actual no incluye protocolos claros que describen paso a paso cómo hacer la transición a partir de células iPS alimentadorcapa a sistemas libres de alimentador.

En este contexto, el presente protocolo detalla sistemáticamente cómo hiPSCs cultivados en ratón irradiado de fibroblastos embrionarios (IMEF) capas de alimentación pueden ser (1) adaptado para propagar en un medio libre de suero, y (2) se cultivaron en una pequeña escala para apoyar específicamente robusta inmuno análisis. En general, esta metodología representa un procedimiento oportuno y rentable para la propagación de iPSCs humanos en condiciones libres de suero para la confirmación de su pluripotencia de forma rutinaria usando inmunocitoquímica.

Protocol

hiPSCs se obtuvieron a partir de fibroblastos dérmicos humanos aislados de 4 mm biopsias por punción de la piel y reprogramadas en casa a través de Sendai reprogramación 11 mediada por virus. La Universidad de Junta de Revisión Institucional de Arizona aprobó todos los procedimientos para la contratación de materia y toma de biopsias. 1. Preparación de la matriz extracelular superficie recubierta de IPSC Cultura Un día antes de la confluen…

Representative Results

Este protocolo proporciona una descripción paso a paso de cómo iPSCs humano puede ser transferido de capa de alimentación al alimentador de libre condiciones, y posteriormente se propagó de manera limitada específicamente habilitar inmunocitoquímica rentable para confirmar el mantenimiento pluripotencia. La figura 1 muestra una representación esquemática de este protocolo. La figura 2A muestra colonias que crecen en hiPSC iMEFs en placas de 6 poc…

Discussion

El protocolo sistemático que aquí se presenta ofrece un ahorro de tiempo y un método rentable, en forma de una técnica de cultivo a escala reducida, diseñado específicamente para apoyar el análisis de pluripotencia efectiva mediante inmunocitoquímica.

Las principales ventajas de la metodología descrita son los siguientes. Tradicionalmente se necesitan más de 3 a 4 pasos a la transición iPSCs de capas de alimentación al alimentador libres de condiciones de cultivo con el fin de el…

Divulgations

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Funding Sources: The University of Arizona, The Jim Himelic Foundation, and the Arizona Center for the Biology of Complex Diseases.

Materials

DMEM-F12/HEPES Life Technologies 11330032
Knockout Serum Replacement Life Technologies 10828028
L-Glutamine Life Technologies 25030081
MEM-NEAA Life Technologies 11140050
2-mercaptoethanol Life Technologies 21985023
Recombinant Human FGF-Basic Cell Sciences CRF001B
Y-27632 ROCK Inhibitor R&D 1254
Collagenase Type IV Life Technologies 17104019
Matrigel hESC-qualified Matrix Corning 354277
mTeSR1 Basal Medium StemCell Technologies 05850
mTeSR1 5X Supplement StemCell Technologies 05850
Gentle Cell Dissociation Buffer StemCell Technologies 07174
0.1M PO4 Buffer In-House n/a
Paraformaldeyde, prill Electron Microscopy Sciences 19202
1X Phoshate Buffered Saline n/a n/a
Normal Goat Serum Life Technologies 16210072
Bovine Serum Albumin Sigma-Aldrich A2153
Triton-X-100 Sigma-Aldrich X100
Oct-4A (C30A3) Rabbit mAb,
Sox2 (D6D9) Rabbit mAb,
SSEA4 (MC813) Mouse mAb,
TRA-1-60(S) (TRA-1-60(S)) Mouse mAb
Cell Signaling
Cell Signaling
Cell Signaling
Cell Signaling
2840
3579
4755
4746
Alternatively, a combination of 6 pluripotency primary antibodies can be purchased together as a kit in Catalog #9656
Goat anti-Ms IgM Alexa Fluor 488 Life Technologies A21042
Goat anti-Ms IgG3 Alexa Fluor 488 Life Technologies A21151
Goat anti-Rb IgG Alexa Fluor 594 Life Technologies A11037
Multiwell Cell Culture Plates Fisher Scientific  0720080/0720081 Available in 6, 12, 24, 48, 96 well sizes
Chamber Slides Fisher Scientific  12 565 21 Available in Glass or Permanox Plastic in 1, 2, 4, 8, 16 well sizes
Coverglass for growth Fisher Scientific  12 545 82 Available in 12, 15, 18, 22 and 25mm sizes

References

  1. Takahashi, K., Yamanaka, S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors. Cell. 126, 663-676 (2006).
  2. Park, I. H., et al. Disease-specific induced pluripotent stem cells. Cell. 134, 877-886 (2008).
  3. Hallett, P. J., et al. Successful function of autologous iPSC-derived dopamine neurons following transplantation in a non-human primate model of Parkinson’s disease. Cell stem cell. 16, 269-274 (2015).
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Citer Cet Article
Corenblum, M. J., Madhavan, L. Small-scale Propagation of Human iPSCs in Serum-free Conditions for Routine Immunocytochemical Characterization. J. Vis. Exp. (120), e55260, doi:10.3791/55260 (2017).

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