Summary
为了满足登革热的紧急诊断需求,我们在此介绍一种集成了智能手机应用程序的登革热NS1纸质分析设备(DEN-NS1-PAD),用于量化临床血清/血液样本中的登革热NS1抗原浓度。这项创新通过帮助各种医疗机构(甚至是资源有限的医疗机构)的临床决策来加强登革热管理。
Abstract
由 伊 蚊传播的登革热病毒(DENV)感染是热带和亚热带国家的主要公共卫生问题。每年约有1000万例病例和20,000-25,000例死亡,特别是在儿童中,迫切需要实用的诊断工具。早期感染期间登革热非结构蛋白 1 (NS1) 的存在与细胞因子释放、血管渗漏和内皮功能障碍有关,使其成为重症登革热的潜在标志物。
基于纸张的免疫测定,如侧向层析测定 (LFA) 和微流体纸质分析设备 (PAD),由于其简单、快速、廉价、特异性和易于解释,作为诊断测试越来越受欢迎。然而,用于登革热 NS1 检测的传统纸质免疫测定通常依赖于目视检查,只能产生定性结果。为了解决这一局限性并提高灵敏度,我们提出了一种高度便携的 NS1 登革热检测方法,即纸质分析设备 (PAD),即 DEN-NS1-PAD,它将智能手机应用程序集成为比色和定量阅读器。该开发系统可直接定量临床样本中的NS1浓度。
利用从患者身上获得的血清和血液样本来证明系统原型的性能。结果立即获得,可用于临床评估,无论是在设备齐全的医疗机构还是资源有限的环境中。这种基于纸张的免疫测定与智能手机应用的创新组合为增强登革热NS1抗原的检测和定量提供了一种很有前途的方法。通过提高肉眼能力之外的灵敏度,该系统在改善登革热管理的临床决策方面具有巨大潜力,特别是在偏远或服务不足的地区。
Introduction
登革热病毒 (DENV) 感染是传播速度最快的蚊媒疾病1,全球每年有超过 3.9 亿人感染,有 9600 万例有症状感染,200 万例重症病例,超过 25,000 人死亡 1,2。根据世界卫生组织 (WHO) 的数据,估计有 39 亿人面临登革热风险;~70% 居住在亚太国家,主要居住在东南亚3.2019年,向世卫组织报告的登革热病例数为420万例,泰国贡献了至少13.6万例登革热病例和144例登革热感染死亡病例4。泰国的登革热疫情发生在4月至12月的雨季,发生在城市和农村地区,特别是在东北部地区。
登革热病毒感染有不同的临床表现,从亚临床症状、轻度登革热 (DF) 到重度登革出血热 (DHF)。严重 DHF 疾病的主要特征是血管通透性增加,其次是休克和器官功能障碍1。了解可能导致血管渗漏的分子途径对于开发有效的登革热治疗方法非常重要。登革热非结构蛋白 1 (NS1) 是早期病毒感染期间分泌的糖蛋白 5,6,可作为病毒 RNA 复制的辅助因子7。NS1 可通过与 toll 样受体 4 (TLR4) 和内皮糖萼 8,9 结合来触发细胞因子释放并导致血管渗漏。体外研究表明,NS1与内皮细胞相互作用并诱导细胞凋亡。这种情况会导致内皮功能障碍和血管渗漏10。与血清白细胞介素 (IL)-10 水平相关的 NS1 抗原水平在重症临床疾病患者中显著升高11。登革热 NS1 还通过诱导 IL-10 和抑制 DENV 特异性 T 细胞反应来促进疾病发病机制12,13。此外,登革热NS1蛋白与严重临床疾病有关,发病前3天NS1浓度>600 ng mL-1与DHF14的发生相关。
登革热NS1抗原在DHF患者中的持续存在可作为重症登革热6的标志物。有几种方法可以检测临床样本中的 NS1,例如酶联免疫吸附测定 (ELISA) 和快速检测15。在临床环境中测量 NS1 蛋白浓度的金标准是 ELISA 方法。然而,ELISA方法价格昂贵,需要熟练的人员和实验室设施16。因此,在床旁检测 (POCT) 中检测和定量 NS1 蛋白的技术仍在开发中。在过去十年中,基于纸张的免疫测定,如侧向层析测定(LFAs)和微流体纸质分析设备(μPAD),因其简单、快速、廉价和特异性而成为诊断测试的流行点17,18,19。在基于纸张的免疫测定中,已使用多种标记来生成信号,例如金纳米颗粒 (AuNPs)20、磁性纳米颗粒21,22、量子点23 和荧光材料24,25。AuNPs是纸质免疫测定中最常用的标记物,因为它们的生产成本低廉、易于制造、稳定性高、读数简单。目前,登革热 NS1 的侧向层析测定 (LFA) 在临床环境中的使用很有名26,27。然而,传统的LFA标签检测通常使用肉眼,只能提供定性结果。
在过去十年中,全球已有超过50亿部智能手机被广泛使用,并且有可能开发便携式检测28,29。智能手机具有内置物理传感器、多核处理器、数码相机、USB 端口、音频端口、无线和应用软件等多功能功能,使其适用于各种生物传感器平台30。此外,无线技术允许快速发送数据,并可用于实时和现场监控31。Mudanyali 等人将纸质免疫测定和智能手机相结合,开发了一种便携式、无需设备、快速、低成本且用户友好的 POCT 平台,用于疟疾、结核病和 HIV32。Ling等人报道了一种侧向层析法与智能手机摄像头相结合,可以定量检测牛奶中的碱性磷酸酶活性33。Hou 等人还开发了一种基于智能手机的双模态成像系统,用于在侧向层析测定中对颜色或荧光发出定量信号34。此外,使用智能手机作为比色和定量阅读器可以提高灵敏度,而肉眼无法自信地报告目标35的存在。
DEN-NS1-PAD 36,37,38(以下简称该设备)在登革热诊断方面取得了突破性进展,提供了一种便携且高效的解决方案。该设备使用蜡印微流控纸技术,通过图像处理以高灵敏度和特异性定量 NS1。为了进一步提高其实用性,我们开发了一款用户友好的智能手机应用程序,用于比色和定量阅读。使用来自泰国医院的患者样本进行临床验证强调了其对实时患者评估的直接影响。我们的创新标志着简化的床旁登革热管理取得了关键性进展,有望彻底改变资源有限的医疗保健领域的诊断。
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Protocol
泰国曼谷Phramongkutklao医院泰国皇家陆军医疗部机构审查委员会伦理委员会(IRBRTA 1218/2562)批准了这一计划。在进行这项研究时,我们遵守了所有必要的道德规范。
1. 纸基免疫测定法的设备制造
注:纸质免疫测定装置是按照先前建立的方法36,37和泰国专利请求号19010081638制造的。
- 设计和图案绘制:在计算机上设计具有 18 个 PAD 蜡图案的纸质分析设备(图 1A、B)。
注意:该设计是特定的,适用于 A5 尺寸的纸张。根据用户的要求,PAD的数量与纸张的大小有关。 - 使用蜡像打印机将设计的图案打印到纤维素纸上(材料表)。
- 将蜡印纸在实验室烘箱中在150°C下熔化75秒。 随后,将其储存在二氧化硅盒中,直到后续步骤需要为止。
- 将 0.5 μL 0.025% 聚-L-赖氨酸 (PLL) 涂覆在测试区域和对照区域。在室温(RT)下在二氧化硅盒中孵育2分钟,然后在65°C的烤箱中加热5分钟。
- 在对照区域施用 0.5 μL 1 μg μL-1 山羊抗小鼠 IgG 抗体,在测试区域施用 0.5 μL 1 μL-1 捕获抗体。让滴剂在室温下在硅胶盒中干燥30分钟。
- 将 2 μL 封闭缓冲液涂加在样品区域,3 μL 涂抹在偶联物区域,2 μL 涂抹在检测区域。让液滴在硅胶盒中以室温干燥30分钟。
- 将 2 μL 金纳米颗粒抗体复合物 (AuNPs-Ab) 溶液涂覆偶联区域,并在室温下在硅胶盒中干燥 30 分钟。
2. 纸质免疫测定法的组装
- 小心地撕下胶胶背卡背面的保护膜,露出胶粘剂。
- 将处理过的纤维素纸与粘性塑料背卡对齐,并将两层牢固地压在一起。
注意: 避免接触亲水区域,以最大程度地降低污染或损坏设备的风险。 - 涂上塑料薄膜在纸上并将它们压在一起。
- 使用剪刀从完全组装好的设备片上剪下所需的设备。
- DEN-NS1-PAD(图1C)现已投入使用。为了长期稳定,请将它们储存在4°C。
3. AuNPs-Ab偶联物的制备
注:AuNPs-Ab 是按照 Prabowo 等人之前描述的 36 制备的。
- 将 10 μL 1 mg mL-1 抗 NS1 抗体在 PBS 中、1 mL 40 nm AuNPs 胶体和 0.1 mL 0.1 M 硼酸盐缓冲液 (pH 8.5) 合并。
- 将混合物以50rpm旋转60分钟,并在室温下孵育。
- 在BBS中加入0.1 mL 10 mg mL-1 BSA,以50rpm旋转,并在室温下孵育15分钟。
- 将溶液在20,187× g 和4°C离心30分钟。
- 小心地移液并将上清液从沉淀的AuNPs-Ab中分离出来。
- 将AuNPs-Ab重悬于500μLBBS中,并使用超声处理将其分散。
- 在20,187× g 和4°C下重复离心30分钟。
注意: 重复分散和离心过程 3 次。 - 向悬浮液中加入 50 μL 偶联缓冲液,使其准备好应用于偶联区域。
4. 移动应用开发
- 图像处理和机器学习开发
- 通过收集 900 多张 DEN-NS1-PAD 的自动对焦图像,捕获各种条件,例如不同的浓度、相机品牌(12-13 百万像素)、旋转(90° 和 180°)和照明设置,为监督图像模型收集数据集。在每种特定条件下拍摄 30 张图像 。
- 通过识别和注释两个感兴趣区域作为所收集图像中的测试和控制区域来标记基本事实,以进行监督学习。
- 设计一种算法来识别背景条带。定位测试区域和对照区域之间的中心线,计算其中点,并在保持相同旋转方向的同时建立与两个主要区域的平均大小成比例的方形区域。
- 使用步骤 4.1.1 和 4.1.2 中的数据集和地面实况标签创建图像分割模型,以训练图像分割模型以识别感兴趣区域。
- 应用算法
- 将经过训练的图像分割模型应用于新图像,以自动定位测试区域、控制区域和背景区域。
- 使用基本的图像处理技术获取三个感兴趣区域(测试、控制和背景)中每个区域的单个强度值。
- 将图像转换为 3D 数组表示(y、x 通道)以访问像素值。
- 通过平均 RGB 值将图像转换为灰度,并使用公式 (255-x) 应用反转。
- 通过减去背景区域值来规范化测试和控制区域的值。
- 使用预先建立的校准曲线计算 NS1 的浓度。
- 根据归一化灰度强度37 得出的截止值 0.1103,将结果分类为正或负。
5. 校准曲线和灵敏度
- 在人血清中制备 NS1 样品,以浓度为 0、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8 和 1.0 μg mL-1 进行校准。
- 将每种浓度的 50 μL 滴入样品区域并一式三份进行测量。
- 让样品完全吸入设备,可能需要 20-30 分钟才能获得结果。
- 孵育 5 分钟后使用数码相机或智能手机拍摄设备的图像。
- 使用 ImageJ 和自定义移动应用程序分析测试和控制区域。
- 根据来自 ImageJ 和移动应用程序的数据构建校准曲线。
- 使用下面的公式 (1-3) 计算空白限 (LOB)、检测限 (LOD) 和定量限 (LOQ):
LOB = 空白数据的平均值 + 1:645* ð(空白数据的标准差) (1)
LOD = LOB +1:645*ð(最低浓度数据的标准偏差) (2)
LOQ = 空白数据的平均值 + 10*ð(空白数据的标准差) (3)
6. 对临床样本进行纸质免疫测定
- 在住院第一天收集 300 μL 患者的外周血并将其处理到紫色顶部的 EDTA 管中,遵循良好的临床实践。
- 将血液在2,884× g 和4°C离心20分钟。
- 使用移液管将液体成分(等离子体)转移到干净的聚丙烯管中。
- 将血浆立即储存在-20°C的冰箱中,以便后续分析。
- 将 20 μL 等离子体涂抹在设备顶部的样品区域。然后,加入 30 μL 洗涤缓冲液(0.05% v/v Tween 20 在 1x 磷酸盐缓冲盐水中)。
- 让样品完全芯吸到设备中,这可能需要 20-30 分钟才能获得结果。
- 在室温下孵育 5 分钟后,使用数码相机或智能手机捕获设备的图像。
- 使用 ImageJ 和自定义移动应用程序分析测试和控制区域。
7. 使用移动应用程序进行定量
注意:在移动应用程序中分析纸质免疫测定的强度(图2)。
- 在智能手机上打开开发的移动应用程序。
- 选择 “使用相机 ”或 “从图库上传 ”以选择或上传数据源。通过相机捕获或从设备图库中选择图像来执行此操作。
- 导航到分析部分,然后触摸屏幕上的 “分析 ”按钮。
- 等待应用程序分析数据并显示结果。
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Representative Results
选择制造方法对于确保纸质免疫测定设备中可重复的测定性能至关重要。在我们的研究中,我们在展示基于纸张的免疫测定的背景下探索了各种制造工艺和材料。我们选择的方法利用蜡印系统在纸基微流控设备中产生疏水屏障。这种方法因其简单、快速和一致的结果而脱颖而出。值得注意的是,它具有避免使用光刻胶化学品的优点,因为光刻胶化学品有可能干扰蛋白质吸附并增加纤维素纸的疏水性。此外,蜡印可确保流体通道尺寸一致,有助于提高可重复的检测性能。
在形成疏水屏障后,将免疫测定所需的试剂施加到纤维素纸表面。通过静电吸附,PLL通过与胺官能团的正电荷和带负电荷的抗体相互作用来帮助生物分子固定。该步骤有助于抗体的修饰和固定化,以及在制造过程中应用标记抗体偶联物。重要的是,此步骤可以并行进行。纸质免疫测定装置(DEN-NS1-PAD,如 图1A所示)的组装是通过将改性纸堆叠到粘性塑料背衬卡上并用塑料薄膜层压来完成的。
本研究的主要目的是开发一种用户友好的方法,利用智能手机来测量 NS1 浓度。这种方法可用作家庭和临床环境中的即时检测 (POCT) 设备。鉴于患者血清中NS1浓度的范围很广,基于这些实验的结果采用了简单的线性模型。对于每个NS1浓度,准备了一个包含三个测试设备的数据集。这些设备的照片是在标准设置和最佳照明条件下使用智能手机拍摄的,无需黑匣子。PADs的测试区含有小鼠登革热NS1单克隆抗体,而对照区则含有山羊抗小鼠IgG抗体。使用夹心测定形式时,样品中较高的 NS1 浓度对应于测试区域中红色强度的增加。相比之下,控制区的颜色强度保持相对恒定。 图1B 展示了未经处理的智能手机图像,无需专门设备即可提供有利的视觉观察。
使用专用的移动应用程序,我们对血清样本中加标 NS1 浓度的强度进行了归一化并计算了简单的线性模型——从移动应用程序获得的系数相关性 (r2)。从移动应用程序获得的系数相关系数(r2) 为0.92(图3),与预期一致。这种基于智能手机的方法优于肉眼观察,灵敏度显着提高了 178%。此外,还计算了归一化强度的空白限 (LoB)、检测限 (LoD) 和定量限 (LoQ),如 表 1 所示。
利用真实世界的临床样本来证明 DEN-NS1-PAD 在临床环境中的实际功能。基于纸张的免疫测定可在 20-30 分钟内产生定性颜色读数,从而可以目视确定阴性或阳性结果。对疑似登革热患者的血清样本进行检测。 图 4 说明并比较了从该设备和商业快速诊断测试 (RDT) 获得的结果。 表2 总结了视觉阅读和基于智能手机的系统的结果。商业RDT和该设备产生了类似的结果,视觉阅读有7个阳性结果和23个阴性结果。相比之下,专门应用于该设备的基于智能手机的阅读器系统报告了来自临床样本的 9 个阳性结果和 21 个阴性结果。
图 1:设计和制造的 DEN-NS1-PAD 的图像。 (A,B) 在将样品溶液引入指定区域之前和(D,E)之前,在蜡纹疏水屏障中设计并描绘出来自蜡纹疏水屏障的单个通道,并分别显示(D)阴性和(E)阳性结果。样品溶液通过通道吸管(见箭头标记),与关键位置的组分相互作用 - 偶联区的 AuNPs-Ab、测试区的抗 NS1 抗体(指示登革热 NS1 阳性结果)和对照区的抗小鼠 IgG。结果很容易用肉眼观察到,并且可以通过使用平板扫描仪或智能手机相机进行图像处理来量化。缩写:AuNPs-Ab = 金纳米颗粒-抗体偶联物。请点击这里查看此图的较大版本.
图 2:手机应用程序的屏幕截图。 (A) 在手机设备上运行的 Android 应用程序的用户屏幕,(B) 应用程序屏幕的显示,(C) 用户可以选择使用相机或从图库上传图像的应用程序主菜单,(D) 显示用于测试的相关图像,(E) 显示要分析的倒计时时间, (六)显示检测结果,包括检测区和控制区的强度、感染的决定(阳性/阴性)以及样品中NS1的浓度。 请点击这里查看此图的较大版本.
图 3:血清中 NS1 检测的线性校准曲线。 使用该设备并通过基于智能手机数据的应用程序进行处理来解释图像。误差线显示 ±1 个标准差, n = 3。缩写:T = 测试区域;C = 控制区。 请点击这里查看此图的较大版本.
图 4:来自临床样品测定的 DEN-NS1-PAD 图像。 血清 (50 μL) 用于纸质免疫测定。(A) 阴性结果示例,(B) 阳性结果,(C) RDT 与纸质免疫测定的总体结果和比较。缩写:RDT = 快速诊断测试;Pos = 正;负 = 负数。 请点击这里查看此图的较大版本.
参数 | 肉眼 | 移动应用 |
空白限值 (LoB) | - | 43.15 纳克毫升-1 |
检测限 (LoD) | 200 纳克毫升-1 | 112.19纳克毫升-1 |
定量限 (LoQ) | - | 373.58纳克毫升-1 |
表 1:来自 ImageJ 和移动应用程序的 LoB、LoD 和 LoQ 在血清中的数据校准标准 NS1。 缩写:LoB = 空白限制;LoD = 检测限;LoQ = 定量限。
患者编号 | 裸眼 | 智能手机应用程序 | 图片J | |
RDT技术 | 纸质免疫测定 | |||
1 | - | - | - | - |
2 | - | - | - | - |
3 | - | - | - | - |
4 | - | - | - | - |
5 | - | - | - | - |
6 | - | - | - | - |
7 | - | - | - | - |
8 | - | - | - | - |
9 | + | + | + | + |
10 | - | - | + | + |
11 | - | - | - | - |
12 | + | + | + | + |
13 | - | - | - | - |
14 | - | - | - | - |
15 | - | - | - | - |
16 | + | + | + | + |
17 | + | + | + | + |
18 | - | - | - | - |
19 | - | - | - | - |
20 | - | - | - | - |
21 | + | + | + | + |
22 | + | + | + | + |
23 | - | - | - | - |
24 | + | + | + | + |
25 | - | - | - | - |
26 | - | - | - | - |
27 | - | - | - | - |
28 | - | - | - | - |
29 | - | - | - | - |
30 | - | - | + | + |
表2:血清样本的视觉读取和基于智能手机的读取器系统结果的比较。 (+) 和 (-) 分别表示对结果的正面和负面解释。
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Discussion
基于智能手机的阅读器系统的重要设计参数之一是能够对样品进行可重复的成像处理。在这项研究中,为了简单和方便起见,这些图像是从三个不同的智能手机品牌拍摄的,配备 12-13 MP 摄像头,而无需使用成像盒或配件。图像采集的可变条件(例如相机的分辨率、图像捕获时间、照明条件和环境)可能会影响设备上测试和控制点的颜色强度。通过使用归一化信号强度,将不同图像捕获时间对PAD照明和干燥对设备信号强度的影响降至最低,该信号强度在不同时间捕获的图像中保持一致36。背景信号减法作为一种提高颜色强度测量准确性的策略出现,有效地减轻了照明条件的影响。我们的发现与之前的研究一致,该研究强调了基线或背景减法技术在最大限度地减少环境影响方面的功效39,40。
围绕使用成像盒或无附件方法的优越性的持续争论对图像处理有影响39,41。成像盒可以通过最小化成像条件的变化来增强成像处理结果的鲁棒性41,42,43。在这项研究中,我们利用基于云机器学习的移动应用程序进行图像处理。这种方法利用基于云的平台中的机器学习来自动分类、提取和丰富图像数据。该应用程序有效地识别和处理了图像中的感兴趣区域,包括背景、测试和控制区域。这一步对于区分这些区域至关重要 38.先前的研究表明,涉及机器学习的图像处理在对照样本和测试样本的结果之间产生了更好的分类43,44,45。在这项研究中,采用固定位置和背景减法从纤维素μPADs产生一致的背景信号,增强了移动应用程序提供的读数的一致性和分类准确性40,43。
关于在展示基于纸张的免疫测定的一致性能方面,制备方法起着重要作用。在之前的研究36中,研究了DEN-NS1-PAD设计和制造方法的几种优化条件,如PLL、封闭物质和NS1抗体的浓度。该设备在缓冲液、细胞培养物和人血清中成功测试了 NS1 的定性和定量。
在检测血清样品时,血清成分产生的基质效应会干扰设备的检测限。然而,结果表明,开发的免疫测定法可以成功检测血清样本中的NS1浓度,产生与商业RDT相当的结果(表2)。使用目视检查和移动应用程序(图4)观察到明显的结果,强调了该检测对血清检测的有效性。虽然血清的较高粘度可能会影响分析时间,但并不妨碍结果解释36。使用移动应用程序可以为样品检测提供更积极的结果,因为使用移动应用程序可以显著提高样品检测的灵敏度46。值得注意的是,需要与登革热 NS1 的 RT-PCR15、47、48 等分子检测进一步比较,以确定潜在的假阳性或假阴性结果。
当考虑更复杂的样品基质(如血液)时,本研究的一个显着局限性出现了。血液中存在的成分确实会干扰设备的检测限。在这种情况下,采用额外的吸收垫来增强电泳缓冲液的吸收是一种潜在的解决方案。这种修饰可以帮助血液凝固,通过影响血小板来利用纤维素的血止特性49。另一种方法是将 4% (w/v) 生理盐水滴在样品垫上以增强血液凝固。先前的研究表明,氯化钙和氯化钠等盐可诱导红细胞 (RBC) 凝血50,51。Na+可以通过抑制红细胞表面的双电层和减少红细胞之间的电排斥来破坏红细胞在血液中的悬浮液。此外,高浓度的盐也诱导血液聚集52。此外,Na+的反离子化合价电荷抑制了带电双层红细胞的厚度,导致放气的红细胞聚集。加入 4% (w/v) 盐水溶液 (NaCl) 有助于纤维素纸51 上的血浆分离。然而,必须仔细优化盐水浓度,以避免对血液聚集和金纳米颗粒聚集产生不良影响53,54。
商用蜡像打印机提供了成本和原型制作简单性的理想组合。由于这些打印机在 2016 年停产,因此需要替代制造方法,例如喷墨打印55、丝网印刷56 和光刻57。办公碳粉打印机是制造μPAD的良好候选者。碳粉中的聚酯树脂在200°C下以各种设计产生疏水图案60分钟58。
本研究使用了公司指定的抗体 NS1 血清型 2。然而,我们发现该抗体也与所有血清型相互作用 36,37。与其他血清型相比,DENV-4 的检测敏感性较低 (87.5%)。DENV-1 和 DENV-2 的灵敏度约为 88.89%,DENV-3 的灵敏度为 100%37。这些发现与早期的研究一致,该研究还报告了与其他血清型相比,RDT 对 DENV-4 的敏感性较低59。该装置的总体灵敏度为~88.89%,特异性约为86.67%。值得注意的是,DEN-NS1-PAD的实际灵敏度可能超过商业RDT。然而,RDT 的阳性预测值 (PPV) 为 84.62%,准确率为 87.67%。值得注意的是,DEN-NS1-PAD 在前 5-6 天内检测登革热感染方面表现更好,而 RDT 仅在前 5 天有效37。
总之,将便携式纸质免疫测定 (DEN-NS1-PAD) 与智能手机应用相结合,为登革热 NS1 测量带来了巨大的希望。与肉眼观察相比,该移动应用程序显著提高了血清样本中 NS1 定量的灵敏度和效率。该移动应用程序的优势包括减少分析时间、用户友好性以及与各种智能手机设备、位置和照明条件的兼容性。但是,需要进一步增强以提高灵敏度和性能。同时,有必要对纸质免疫测定法进行修改,以提高其处理血液样本时的性能。此外,需要对 DEN-NS1-PAD 进行全面评估,以使用更多数量的原发性感染血清型和从各种患者(儿童和成人)收集的精选样本来检测登革热。
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Disclosures
作者没有需要披露的利益冲突。
Acknowledgments
MHP非常感谢印度尼西亚伊斯兰大学(UII)的奖学金研究基金。作者感谢 Nutchanon Ninyawee 先生在移动应用程序开发过程中提供的宝贵专业知识和帮助,以及他对手稿的贡献。此外,作者感谢泰国科学研究与创新 (TSRI) 基础研究基金:2023 财年(项目编号FRB660073/0164)在吞武里王科技大学的智能医疗保健计划下。
Materials
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Materials | |||
0.1 M phosphate-buffered saline (PBS, pH 7.2) | |||
BBS containing 0.1% Tween 20, 10% sucrose, and 1% casein | the conjugate area treatment and blocking buffer | ||
Borate buffered saline (BBS) (25 mM sodium borate and 150 mM sodium chloride at pH 8.2) supplemented with 1% BSA | the washing buffer during the conjugation process AuNPs with the antibody | ||
Boric acid | Merck | 10043-35-3 | |
Bovine serum albumin fraction V (BSA) | PAA Lab GmbH (Germany) | K41-001 | |
Casein | Merck | 9005-46-3 | |
Chromatography paper Grade 2 | GE Healthcare | 3002-911 | |
Clear laminate film | 3M (Stationery shops) | ||
Disodium hydrogen phosphate | Merck | 7558-79-4 | |
Double tape side | Stationery shops | ||
Goat anti-mouse IgG antibody | MyBiosource (USA) | MBS435013 | |
Gold nanoparticles (40 nm) | Serve Science Co., Ltd. (Thailand) | ||
Human IgG polyclonal antibody | Merck | AG711-M | |
Mouse dengue NS1 monoclonal antibody | MyBiosource (USA) | MBS834415 | |
Mouse dengue NS1 monoclonal antibody | MyBiosource (USA) | MBS834236 | |
NS1 serotype 2 antigens | MyBiosource (USA) | MBS 568697 | |
PBS 1X containing 0.1% Tween 20 was used as t | elution buffer | ||
Plastic backing card 10x30 cm | Pacific Biotech Co., Ltd. (Thailand) | ||
Poly-L-lysine (PLL) | Sigma Aldrich | P4832 | |
Potassium Chloride | Merck | 104936 | |
Potassium monophosphate | Merck | 104877 | |
Sodium Chloride | Merck | 7647-14-5 | |
Sodium tetraborate | Sigma Aldrich | 1303-96-4 | |
Sucrose | Merck | 57-50-1 | |
Tween 20 | Sigma Aldrich | 9005-64-5 | |
Instruments | |||
CytationTM 5 multimode reader | BioTek | ||
Mobile phones | Huawei Y7, iPhone 11, Samsung a20 | ||
Photo scanner | Epson Perfection V30 | ||
Oven | Memmert | ||
Wax printer | Xerox ColorQube 8880-PS | ||
Software | |||
Could AutoML Vision Object Detection documentation | Google Cloud | ||
ImageJ | National Institute of Health, Bethesda, MD, USA | ||
Inkscape 0.91 Software |
References
- Cattarino, L., Rodriguez-Barraquer, I., Imai, N., Cummings, D. A. T., Ferguson, N. M. Mapping global variation in dengue transmission intensity. Science Translational Medicine. 12 (528), 1-11 (2020).
- World Health Organization (WHO). Treatment, prevention and control global strategy for dengue prevention and control. , WHO, Geneva. 1-34 (2012).
- WHO Dengue and severe dengue. , https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/dengue-and-severe-dengue (2020).
- Department of Disease Control Ministry of Health Thailand. Weekly Disease Forecast Dengue. , (2020).
- Malavige, G. N., Ogg, G. S. Pathogenesis of vascular leak in dengue virus infection. Immunology. 151 (3), 261-269 (2017).
- Paranavitane, S. A., et al. Dengue NS1 antigen as a marker of severe clinical disease. BMC Infectious Diseases. 14 (1), 570 (2014).
- Muller, D. A., Young, P. R. The flavivirus NS1 protein: Molecular and structural biology, immunology, role in pathogenesis and application as a diagnostic biomarker. Antiviral Research. 98 (2), 192-208 (2013).
- Modhiran, N., et al. Dengue virus NS1 protein activates cells via Toll-like receptor 4 and disrupts endothelial cell monolayer integrity. Science Translational Medicine. 7 (304), 304ra102 (2015).
- Glasner, D. R., et al. Dengue virus NS1 cytokine-independent vascular leak is dependent on endothelial glycocalyx components. PLOS Pathogens. 13 (11), e1006673 (2017).
- Lin, C. -F., et al. Antibodies from dengue patient sera cross-react with endothelial cells and induce damage. Journal of Medical Virology. 69 (1), 82-90 (2003).
- Adikari, T. N., et al. Dengue NS1 antigen contributes to disease severity by inducing interleukin (IL)-10 by monocytes. Clinical and Experimental Immunology. 184 (1), 90-100 (2016).
- Malavige, G. N., et al. Suppression of virus specific immune responses by IL-10 in acute dengue infection. PLoS Neglected Tropical Diseases. 7 (9), e2409 (2013).
- Malavige, G. N., et al. Serum IL-10 as a marker of severe dengue infection. BMC Infectious Diseases. 13 (1), 341 (2013).
- Libraty, D. H., et al. High circulating levels of the dengue virus nonstructural protein NS1 early in dengue illness correlate with the development of dengue hemorrhagic fever. The Journal of Infectious Diseases. 186 (8), 1165-1168 (2002).
- World Health Organization (WHO) and the Special Programme for Research and Tropical Diseases (TDR). Dengue: guidelines for diagnosis, treatment, prevention and control -- New edition. , https://www.who.int/publications-detail-redirect/9789241547871 (2009).
- Axelrod, T., Eltzov, E., Marks, R. S. Capture-layer lateral flow immunoassay: a new platform validated in the detection and quantification of dengue NS1. ACS Omega. 5 (18), 10433-10440 (2020).
- Kim, S. -W., Cho, I. -H., Lim, G. -S., Park, G. -N., Paek, S. -H. Biochemical-immunological hybrid biosensor based on two-dimensional chromatography for on-site sepsis diagnosis. Biosensors and Bioelectronics. 98, 7-14 (2017).
- Fu, Q., et al. Development of a novel dual-functional lateral-flow sensor for on-site detection of small molecule analytes. Sensors and Actuators B: Chemical. 203, 683-689 (2014).
- Dzantiev, B. B., Byzova, N. A., Urusov, A. E., Zherdev, A. V.
Immunochromatographic methods in food analysis. TrAC Trends in Analytical Chemistry. 55, 81-93 (2014). - Hu, J., et al.
Advances in paper-based point-of-care diagnostics. Biosensors and Bioelectronics. 54 (4), 585-597 (2014). - Zhong, Y., et al. Gold nanoparticles based lateral flow immunoassay with largely amplified sensitivity for rapid melamine screening. Microchimica Acta. 183 (6), 1989-1994 (2016).
- Figueredo, F., Garcia, P. T., Cortón, E., Coltro, W. K. T. Enhanced analytical performance of paper microfluidic devices by using Fe 3 O 4 nanoparticles, MWCNT, and graphene oxide. ACS Applied Materials & Interfaces. 8 (1), 11-15 (2016).
- Bahadır, E. B., Sezgintürk, M. K. Lateral flow assays: Principles, designs and labels. TrAC - Trends in Analytical Chemistry. 82, 286-306 (2016).
- He, M., Liu, Z. Paper-based micro fluidic device with upconversion fluorescence assay. Analytical Chemistry. 85, 11691-11694 (2013).
- Derikvand, F., Yin, D. L. T., Barrett, R., Brumer, H. Cellulose-based biosensors for esterase detection. Analytical Chemistry. 88 (6), 2989-2993 (2016).
- Kumar, S., Bhushan, P., Krishna, V., Bhattacharya, S. Tapered lateral flow immunoassay-based point-of-care diagnostic device for ultrasensitive colorimetric detection of dengue NS1. Biomicrofluidics. 12 (3), 034104 (2018).
- Sinawang, P. D., Rai, V., Ionescu, R. E., Marks, R. S. Electrochemical lateral flow immunosensor for detection and quantification of dengue NS1 protein. Biosensors and Bioelectronics. 77, 400-408 (2016).
- Zhang, D., Liu, Q. Biosensors and bioelectronics on smartphone for portable biochemical detection. Biosensors and Bioelectronics. 75, 273-284 (2016).
- Preechaburana, P., Suska, A., Filippini, D.
Biosensing with cell phones. Trends in Biotechnology. 32 (7), 351-355 (2014). - Laksanasopin, T., et al. A smartphone dongle for diagnosis of infectious diseases at the point of care. Science Translational Medicine. 7 (273), 273re1 (2015).
- Kim, J., et al. Noninvasive alcohol monitoring using a wearable tattoo-based iontophoretic-biosensing system. ACS Sensors. 1 (8), 1011-1019 (2016).
- Mudanyali, O., et al. Integrated rapid-diagnostic-test reader platform on a cellphone. Lab on a Chip. 12 (15), 2678 (2012).
- Yu, L., Shi, Z., Fang, C., Zhang, Y., Liu, Y., Li, C. Disposable lateral flow-through strip for smartphone-camera to quantitatively detect alkaline phosphatase activity in milk. Biosensors and Bioelectronics. 69, 307-315 (2015).
- Hou, Y., et al. Smartphone-based dual-modality imaging system for quantitative detection of color or fluorescent lateral flow immunochromatographic strips. Nanoscale Research Letters. 12 (1), 291 (2017).
- You, D. J., Park, T. S., Yoon, J. -Y. Cell-phone-based measurement of TSH using Mie scatter optimized lateral flow assays. Biosensors and Bioelectronics. 40 (1), 180-185 (2013).
- Prabowo, M. H., Chatchen, S., Rijiravanich, P. Dengue NS1 detection in pediatric serum using microfluidic paper-based analytical devices. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 412, 2915-2925 (2020).
- Prabowo, M. H., et al. Clinical evaluation of a developed paper-based Dengue NS1 rapid diagnostic test for febrile illness patients. International Journal of Infectious Diseases. 107, 271-277 (2021).
- Preparation and detection method for the diagnostic device of dengue NS1 detection in serum, cell medium, and buffer. Thai Patent. Prabowo, M. H., et al. , 1901000816 (2019).
- Kong, T., et al. Accessory-free quantitative smartphone imaging of colorimetric paper-based assays. Lab on a Chip. 19 (11), 1991-1999 (2019).
- Jung, Y., Heo, Y., Lee, J. J., Deering, A., Bae, E. Smartphone-based lateral flow imaging system for detection of food-borne bacteria E. coli O157:H7. Journal of Microbiological Methods. 168, 105800 (2020).
- Chen, G., et al. Improved analytical performance of smartphone-based colorimetric analysis by using a power-free imaging box. Sensors and Actuators B: Chemical. 281, 253-261 (2019).
- Kim, H., et al. Smartphone-based low light detection for bioluminescence application. Scientific Reports. 7 (1), 40203 (2017).
- Kim, H., Awofeso, O., Choi, S., Jung, Y., Bae, E. Colorimetric analysis of saliva-alcohol test strips by smartphone-based instruments using machine-learning algorithms. Applied Optics. 56 (1), 84 (2017).
- Qin, Q., et al. Algorithms for immunochromatographic assay: review and impact on future application. The Analyst. 144 (19), 5659-5676 (2019).
- Yan, W., et al. Machine learning approach to enhance the performance of MNP-labeled lateral flow immunoassay. Nano-Micro Letters. 11 (1), 7 (2019).
- Srisa-Art, M., Boehle, K. E., Geiss, B. J., Henry, C. S. Highly sensitive detection of Salmonella typhimurium using a colorimetric paper-based analytical device coupled with immunomagnetic separation. Analytical Chemistry. 90 (1), 1035-1043 (2018).
- Santiago, G. A., et al. Performance of the Trioplex real-time RT-PCR assay for detection of Zika, dengue, and chikungunya viruses. Nature Communications. 9 (1), 1391 (2018).
- Lanciotti, R. S., Calisher, C. H., Gubler, D. J., Chang, G. J., Vorndam, A. V. Rapid detection and typing of dengue viruses from clinical samples by using reverse transcriptase-polymerase chain reaction. Journal of Clinical Microbiology. 30 (3), 545-551 (1992).
- Yang, X., et al. Design and development of polysaccharide hemostatic materials and their hemostatic mechanism. Biomaterials Science. 5 (12), 2357-2368 (2017).
- Li, H., Han, D., Pauletti, G. M., Steckl, A. J. Blood coagulation screening using a paper-based microfluidic lateral flow device. Lab Chip. 14 (20), 4035-4041 (2014).
- Nilghaz, A., Shen, W. Low-cost blood plasma separation method using salt functionalized paper. RSC Advances. 5 (66), 53172-53179 (2015).
- Ataullakhanov, F. I., Pohilko, A. V., Sinauridze, E. I., Volkova, R. I. Calcium threshold in human plasma clotting kinetics. Thrombosis Research. 75 (4), 383-394 (1994).
- Pamies, R., et al. Aggregation behaviour of gold nanoparticles in saline aqueous media. Journal of Nanoparticle Research. 16 (4), 2376 (2014).
- Christau, S., Moeller, T., Genzer, J., Koehler, R., Von Klitzing, R. Salt-induced aggregation of negatively charged gold nanoparticles confined in a polymer brush matrix. Macromolecules. 50 (18), 7333-7343 (2017).
- Abe, K., Kotera, K., Suzuki, K., Citterio, D. Inkjet-printed paperfluidic immuno-chemical sensing device. Analytical and Bioanalytical Chemistry. 398 (2), 885-893 (2010).
- Sameenoi, Y., Nongkai, P. N., Nouanthavong, S., Henry, C. S., Nacapricha, D. One-step polymer screen-printing for microfluidic paper-based analytical device (µPAD) fabrication. The Analyst. 139 (24), 6580-6588 (2014).
- Mora, M. F., et al. Patterning and modeling three-dimensional microfluidic devices fabricated on a single sheet of paper. Analytical Chemistry. 91 (13), 8298-8303 (2019).
- Ng, J. S., Hashimoto, M. Fabrication of paper microfluidic devices using a toner laser printer. RSC Advances. 10 (50), 29797-29807 (2020).
- Pal, S., et al. Multicountry prospective clinical evaluation of two enzyme-linked immunosorbent assays and two rapid diagnostic tests for diagnosing dengue fever. Journal of Clinical Microbiology. 53 (4), 1092-1102 (2015).