Summary

Generierung von stabilen transgenen C. elegans mit Mikroinjektion

Published: August 15, 2008
doi:

Summary

Dieses Video zeigt die Technik der Mikroinjektion in die Gonade von C. elegans, um transgene Tiere zu schaffen.

Abstract

Transgene Caenorhabditis elegans leicht über Mikroinjektion eines DNA-Plasmid-Lösung in die Gonade 1 erstellt werden. Die Plasmid-DNA lagert sich extrachromosomale Konkatamere, die stabil vererbt werden, wenn auch nicht mit der gleichen Effizienz wie tatsächliche Chromosomen 2 zu bilden. Ein Gen von Interesse ist mit einer offensichtlichen phänotypischen Marker, wie rol-6 oder GFP co-injiziert, um die Auswahl von transgenen Tieren unter einem Binokular erlauben. Das exogene Gen kann aus seiner nativen Promotor für zelluläre Lokalisation Studien ausgedrückt werden. Alternativ kann das Transgen von einem anderen Gewebe-spezifischen Promotor, um die Rolle des Genprodukts in der jeweiligen Zelle oder eines Gewebes zu beurteilen gefahren werden. Diese Technik effizient Laufwerke Genexpression in allen Geweben von C. elegans mit Ausnahme der Keimbahn oder frühen Embryo 3. Erstellung von transgenen Tieren ist bekannt für eine Reihe von experimentellen Paradigmen genutzt. Dieses Video zeigt die Mikroinjektion Verfahren zur transgenen Würmern zu generieren. Darüber hinaus ist die Auswahl und Pflege von stabilen transgenen C. elegans Zeilen beschrieben.

Protocol

Expressionsplasmid Construction Zwei Plasmide sind erforderlich: eine für Gewebe-spezifische Expression des Gens von Interesse und eine zweite als wählbare Transformation Marker. Experimentelle Plasmid Wählen Sie einen Promotor, der in dem Gewebe / Zelltyp von Interesse, zum Beispiel, einen Nerv oder Muskel-spezifischen Promotors exprimiert wird. Wenn man mehrere Gene im gleichen Gewebe auszudrücken ist, kann ein Promotorkassette Plasmid in das Gatewa…

Discussion

Wenn Sie dieses Verfahren ist es wichtig, sich daran zu erinnern, um:
– Einfügen direkt in das Zentrum der Gonade
– Nicht spritzen zu viel Flüssigkeit
– Schnell zu arbeiten, um Austrocknung zu verhindern.

Wenn Sie Probleme mit der Nadel, wie es gebrochen ist zu groß ausgeführt wird, ist es am besten Remake eine frische Nadel, anstatt zu versuchen, mit einem weniger als ideal Nadel injiziert.

Die Erzeugung von transgenen Würmer hat viele Anwendungen wie zum Beispiel:
– Identifizierung von muti…

Acknowledgements

Wir wollen den Geist der Zusammenarbeit aller Caldwell Lab Mitglieder anzuerkennen. Bewegungsstörungen Forschung im Labor wurde von der Bachmann-Strauss Dystonie & Parkinson Foundation, Vereinigte Parkinson Foundation, American Parkinson Disease Association, Parkinson Disease Association of Alabama, die Michael J. Fox Foundation for Parkinson Research, und ein Undergraduate Research unterstützt.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Agarose Ultrapure Invitrogen 15510-027  
Halocarbon Oil, Voltalef Hulle 10S elfatochem, France    
Coverglass 18×18 mm   Fisher 12-548-A  
Coverglass 20×30 mm   Fisher 12-548-5A  
Coverglass 22×50 mm   Fisher 12-545-E  
100 ul Capillary   VWR 53432-921  
Glass Capillary for Needles “Kwik-Fil” World Precision Instruments 1B100F-4  
Needle Puller Tool Narishige Model PP-830  
microINJECTOR System   Tritech Research MINJ-1000 Scope, Stage, Manipulator
Dissecting, with Fluorescence Microscope Nikon SMZ800  
Dissecting Microscope Nikon SMZ645  

References

  1. Stinchcomb, D. T., Shaw, J. E., Carr, S. H., Hirsh, D. Extrachromosomal DNA transformation of Caenorhabditis elegans. Mol. Cell. Biol. 5, 3484-3496 (1985).
  2. Mello, C. C., Kramer, J. M., Stinchcomb, D., Ambros, V. Efficient gene transfer in C.elegans: extrachromosomal maintenance and integration of transforming sequences. EMBO J. 10, 3959-3970 (1991).
  3. Kelly, W. G., Xu, S., Montgomery, M. K., Fire, A. Distinct requirements for somatic and germline expression of a generally expressed Caenorhabditis elegans gene. Génétique. 146, 227-238 (1997).
  4. Cao, S., Gelwix, C. C., Caldwell, K. A., Caldwell, G. A. Torsin-mediated neuroprotection from cellular stresses to dopaminergic neurons of C. elegans. J Neurosci. 25, 3801-3812 (2005).
  5. Caldwell, G. . Integrated Genomics: A Discovery-Based Laboratory Course. , (2006).
  6. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. Génétique. 77, 71-94 (1974).
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Citer Cet Article
Berkowitz, L. A., Knight, A. L., Caldwell, G. A., Caldwell, K. A. Generation of Stable Transgenic C. elegans Using Microinjection. J. Vis. Exp. (18), e833, doi:10.3791/833 (2008).

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