Summary

Microinjection을 사용하여 안정적인 트렌스​​ 제닉 C. 엘레간스의 생성

Published: August 15, 2008
doi:

Summary

이 동영상은 유전자 변형 동물을 만들 C. 엘레간스의 생식선에 microinjection의 기법을 보여줍니다.

Abstract

유전자 변형 Caenorhabditis의 엘레간스는 즉시 생식선 하나에 DNA 플라스미드 솔루션의 microinjection을 통해 만들 수 있습니다. 플라스미드 DNA는 염색체 안정 실제이 같은 효율성과 함께하지만,하지 상속됩니다 extrachromosomal concatamers을 형성 다시 배열. 관심 유전자는 해부 현미경으로 유전자 변형 동물의 선택을 허용하는 등 rol – 6 GFP와 같은 명백한 phenotypic 마커와 공동 주입이다. 외인성 유전자는 세포의 현지화 연구에 대한 기본 발기인의 표현 수 있습니다. 또는, transgene은 그 특정 세포 또는 조직에있는 유전자 산물의 역할을 평가하는 다른 조직에 특정한 모터에 의해 구동 수 있습니다. 이 기술은 효율적으로 germline 또는 초기 배아 3 제외한 C. 엘레간스의 모든 조직에서 유전자 발현을시킵니다. 유전자 변형 동물의 창조는 광범위하게 실험 패러다임의 다양한 활용합니다. 이 동영상은 유전자 변형 벌레를 생성하는 microinjection 절차를 보여줍니다. 또한, 안정적인 형질 C. 엘레간스 라인의 선정 및 유지 보수가 설명되어 있습니다.

Protocol

표현 플라스미드 건설 두 plasmids이 필요합니다 : 조직 특정 관심의 유전자의 표현과 선택 전환 표시로 두 번째 한. 실험 플라스미드 예를 들어 관심의 조직 / 세포 유형, 신경이나 근육 특정 발기인 표현하는 발기인을 선택합니다. 하나는 같은 조직 내에서 여러 개의 유전자를 표현하는 경우, 게이트웨이 시스템 (Invitrogen)에 플라스미드 발기인 카세?…

Discussion

이 절차를 수행할 때, 그것은 기억하는 것이 중요합니다 :
– 생식선의 중심에 직접 주입
– 너무 많은 액체를 주입하지
– dessication을 방지하기 위해 신속하게 작동합니다.

당신이 너무 큰 고장 등 바늘과 문제에 실행하는 경우, 그것은 오히려 이상적인 바늘보다 적은 비용으로 주입하는 것보다, 신선한 바늘을 리메이크하는 것이 좋습니다.

유전자 변형 벌레의 생성과 같은 다양한 애플 리…

Acknowledgements

우리 모두는 콜드 웰 연구소 회원의 협력 정신을 인정하고 싶습니다. 연구실에 운동 장애 연구는 바흐만 – 스트라우스 Dystonia & 파킨슨병 재단, 미국 파킨슨병 재단, 미국 파킨슨 질병 협회, 앨라배마 파킨슨병 협회, 파킨슨병 연구에 대한 마이클 J. 폭스 재단과 대학 연​​구소에 의해 지원되었습니다.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Agarose Ultrapure Invitrogen 15510-027  
Halocarbon Oil, Voltalef Hulle 10S elfatochem, France    
Coverglass 18×18 mm   Fisher 12-548-A  
Coverglass 20×30 mm   Fisher 12-548-5A  
Coverglass 22×50 mm   Fisher 12-545-E  
100 ul Capillary   VWR 53432-921  
Glass Capillary for Needles “Kwik-Fil” World Precision Instruments 1B100F-4  
Needle Puller Tool Narishige Model PP-830  
microINJECTOR System   Tritech Research MINJ-1000 Scope, Stage, Manipulator
Dissecting, with Fluorescence Microscope Nikon SMZ800  
Dissecting Microscope Nikon SMZ645  

References

  1. Stinchcomb, D. T., Shaw, J. E., Carr, S. H., Hirsh, D. Extrachromosomal DNA transformation of Caenorhabditis elegans. Mol. Cell. Biol. 5, 3484-3496 (1985).
  2. Mello, C. C., Kramer, J. M., Stinchcomb, D., Ambros, V. Efficient gene transfer in C.elegans: extrachromosomal maintenance and integration of transforming sequences. EMBO J. 10, 3959-3970 (1991).
  3. Kelly, W. G., Xu, S., Montgomery, M. K., Fire, A. Distinct requirements for somatic and germline expression of a generally expressed Caenorhabditis elegans gene. Génétique. 146, 227-238 (1997).
  4. Cao, S., Gelwix, C. C., Caldwell, K. A., Caldwell, G. A. Torsin-mediated neuroprotection from cellular stresses to dopaminergic neurons of C. elegans. J Neurosci. 25, 3801-3812 (2005).
  5. Caldwell, G. . Integrated Genomics: A Discovery-Based Laboratory Course. , (2006).
  6. Brenner, S. The genetics of Caenorhabditis elegans. Génétique. 77, 71-94 (1974).
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Citer Cet Article
Berkowitz, L. A., Knight, A. L., Caldwell, G. A., Caldwell, K. A. Generation of Stable Transgenic C. elegans Using Microinjection. J. Vis. Exp. (18), e833, doi:10.3791/833 (2008).

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