Summary

ARN<em> In situ</emHibridación> Los embriones en todo el montaje y la histología de células Adaptado para elasmobranquios marinos

Published: April 12, 2013
doi:

Summary

Mediante la combinación de los métodos de montaje de ARN total<em> In situ</emHibridación> y la histología, la expresión génica se puede vincular con las decisiones del destino celular en el embrión en desarrollo. Estos métodos han sido adaptados a los elasmobranquios marinos y facilitar el uso de estos animales como organismos modelo para estudios biomédicos, toxicología y comparativa.

Abstract

Elasmobranquios marinos se valoran los modelos animales para estudios biomédicos y genómicos, ya que son los vertebrados más primitivos para tener inmunidad adaptativa y contar con mecanismos únicos para la osmorregulación 1-3. Como las más primitivas de vida jawed vertebrados con apéndices pares, los elasmobranquios son un modelo evolutivo importante, especialmente para los estudios de evolución y desarrollo. Elasmobranquios marinos también se han utilizado para estudiar toxicología acuática y la fisiología del estrés en relación a 4 sobre el cambio climático. Así, el desarrollo y la adaptación de las metodologías que se necesita para facilitar y ampliar el uso de estos vertebrados primitivos a múltiples disciplinas biológicas. Aquí os presento la exitosa adaptación de montaje ARN total hibridación di situ y técnicas histológicas para el estudio de la expresión génica y la histología de células en los elasmobranquios.

Seguimiento de la expresión de genes es una herramienta de sello de desarrollo biologists, y se utiliza ampliamente para investigar los procesos de desarrollo 5. Montaje ARN toda la hibridación in situ permite la visualización y localización de transcritos de genes específicos en tejidos del embrión en desarrollo. El patrón de expresión del mensaje de un gen puede dar una idea de lo que los procesos de desarrollo y las decisiones de destino celular de un gen puede controlar. Al comparar el patrón de expresión de un gen en diferentes etapas de desarrollo, la visión puede ser adquirida en cómo el papel de algunos cambios genéticos durante el desarrollo.

Mientras que todo el montaje in situ 's proporciona un medio para localizar la expresión de genes a los tejidos, las técnicas histológicas permiten la identificación de tipos de células diferenciadas y tejidos. Tinciones histológicas tienen diversas funciones. Manchas generales se usan para resaltar la morfología celular, por ejemplo hematoxilina y eosina para la tinción general de núcleos y el citoplasma, respectivamente. Otras manchas pueden destacar celda específicatipos. Por ejemplo, el azul Alcian mancha presentado en este artículo es una mancha muy utilizado para identificar mucosaccharides catiónico. La tinción del tracto digestivo con azul alcián puede identificar la distribución de las células caliciformes que producen mucosaccharides. Las variaciones en los componentes mucosaccharide en péptidos cortos distinguir las células caliciformes por su función en el tracto digestivo 6. Mediante el uso de montaje ARN entero en métodos in situ 's e histoquímicas simultáneamente, las decisiones de destino celular puede estar vinculado a genes específicos de expresión.

A pesar de ARN in situ 's e histoquímica son ampliamente utilizados por los investigadores, su adaptación y uso en los elasmobranquios marinos han tenido un éxito limitado y variados. Aquí presento protocolos desarrollados para los elasmobranquios y se utiliza de forma regular en mi laboratorio. Aunque la modificación de los ARN en el método de hibridación in situ 's puede ser necesario para adaptarse a las diferentes especies, los protocolos descritos aquí proveer un sólido punto de partida para los investigadores que deseen adaptar el uso de elasmobranquios marinos para sus investigaciones científicas.

Protocol

I. Total RNA montaje hibridación in situ en los elasmobranquios marinos 1. Fijación embrión y Preparación Skate embriones pueden organizarse de acuerdo a Ballard 7. Etapas óptimo para la detección de la expresión génica depende del tejido de interés. Para el seguimiento de la expresión génica en el tracto digestivo del patín, etapas 27-30 son óptimas 7. Diseccionar embriones en PBS, la separación de los embriones desde e…

Representative Results

Ejemplos de tinción con azul Alcian en diferentes regiones de la L. tracto digestivo erinacea se muestra en la Figura 2. Mucina ácida que contiene células globlet son claramente visibles por el azul alcián mancha en todo el tracto digestivo. La distribución de las mucinas ácidas difiere en las diferentes regiones del tracto digestivo, lo que refleja las diferencias en la función. Mucinas ácidas están escasamente produce en el intestino espiral y cloaca, mientras que una alta c…

Discussion

Los protocolos presentados son métodos clásicos para el seguimiento de la expresión génica y la identificación de tipos de células diferenciadas, y se han adaptado para su uso en los elasmobranquios marinos. Las modificaciones adicionales de estos protocolos puede ser necesaria para adaptarse a las diferentes especies de elasmobranquios.

La preocupación más común con respecto montaje ARN total in situ 's es el riesgo de contaminación de ARNasa y de ese modo la degradac…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Me gustaría dar las gracias a los muchos estudiantes universitarios que han trabajado en mi laboratorio y ha contribuido a la evolución de estos protocolos. NAT ha recibido el apoyo de la Red de Skidmore-Union, un proyecto creado con un avance NSF PAGADO subvención.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
10 x transcription buffer Roche 11-465-384-001
DIG-RNA labeling mix Roche 11-277-073-910
RNAse inhibitor Roche 03-335-399-001
RNA polymerase – SP6 Roche 10-810-274-001
DNAseI, RNAse-free Roche 10-776-785-001
Yeast RNA Invitrogen 15401-029
CHAPS EMD-Millipore 220201
heparin Sigma-Aldrich H4784
DEPC (diethyl pyrocarbonate) Research Organics 2106D
Moria Perforated Spoon Fine Science Tools 10370-17
Netwell inserts Electron Microscopy Sciences 64713-00 Netwells for use in 6-well tissue culture dishes
6-well tissue culture plate Corning 3516
Glass scintillation vials with screw-cap lids Weaton Science Products 986540
formamide Fisher BP227500
Proteinase K Invitrogen 59895 (AM2542)
NBT 11585029001
BCIP Roche 11585002001
Hydrogen peroxide, 30% EMD HX0635-1
Sheep serum VWR 101301-478
glutaraldehyde Sigma-Aldrich G5882
tRNA Roche 10-109-541-001
Anti-DIG Fab Fragments Roche 1137-6623
Table 3. Reagents and equipment for RNA whole mount in situ‘s.
1% Alcian Blue 8GS, pH 2.5 Electron Microscopy Sciences 26323-01
Nuclear Fast Red Electron Microscopy Sciences 26078-05
DPX Mountant Electron Microscopy Sciences 13510
Paraffin (Paraplast X-tra) McCormick Scientific 39503002
10% Formalin, NBF VWR 95042-908
Glass scintillation vials with screw-cap lids Weaton Science Products 986540
Stainless steal base molds Tissue-Tek 4161-4165 Multiple sizes available.
Cassettes Tissue-Tek 4170
Slide warmer Fisher-Scientific 12-594Q
Tissue Embedder Leica Microsystems EG1160
Microtome, rotary Leica Microsystems RM2235
Tissue-Tek Slide Staining Set Electron Microscopy Sciences 62540-01
Tissue-Tek 24-Slide Holder Electron Microscopy Sciences 62543-06
Superfrost*Plus slides Fisherbrand 12-550-17
Table 4. Reagents and equipment for Alcian Blue stain.

Riferimenti

  1. Forester, R., Goldstein, L. Intracellular osmoregulatory role of amino acids and urea in marine elasmobranchs. Am. J. Physiol. 230, 925-931 (1976).
  2. Shuttleworth, T., Shuttleworth, R. . Physiology of elasmobranch fishes. , 171-194 (1988).
  3. Yancey, P. H., Clark, M. E., Hand, S. C., Bowlus, R. D., Somero, G. N. Living with water stress: evolution of osmolyte systems. Science. 217, 1214-1222 (1982).
  4. Ballatori, N., Villalobos, A. Defining the molecular and cellular basis of toxicity using comparative models. Toxicl. Appl. Pharmacol. 183, 207-220 (2002).
  5. Nieto, M. A., Patel, K., Wilkinson, D. G. In situ hybridization analysis of chick embryos in whole mount and tissue sections. Methods Cell Biol. 51, 219-235 (1996).
  6. Jass, J. R., Walsh, M. D. Altered mucin expression in the gastrointestinal tract: a review. J Cell Mol Med. 5, 327-351 (2001).
  7. Ballard, W. W., Mellinger, J., Lechenault, H. A series of normal stages for development of Scyliorhinus canicula, the lesser spotted dogfish (Chondrichthyes; Scyliorhinidae). J. Exp. Zool. 267, 318-336 (1993).
  8. Echelard, Y., et al. Sonic hedgehog, a member of a family of putative signaling molecules, is implicated in the regulation of CNS polarity. Cell. 75, 1417-1430 (1993).
  9. Riddle, R. D., Johnson, R. L., Laufer, E., Tabin, C. Sonic hedgehog mediates the polarizing activity of the ZPA. Cell. 75, 1401-1416 (1993).
  10. Theodosiou, N. A., Hall, D. A., Jowdry, A. L. Comparison of acid mucin goblet cell distribution and Hox13 expression patterns in the developing vertebrate digestive tract. J. Exp. Zool. B. Mol. Dev. Evol. 308, 442-453 (2007).
  11. Sambrook, J., Russell, D. W. Ch. 7. Molecular Cloning; A Laboratory Manual. 1, 7.82 (2001).
  12. Zhang, G., Miyamoto, M. M., Cohn, M. J. Lamprey type II collagen and Sox9 reveal an ancient origin of the vertebrate collagenous skeleton. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 103, 3180-3185 (2006).
  13. Sheehan, D. C., Hrapchak, B. B. . Theory and practice of histotechnology. , (1980).
  14. Theodosiou, N. A., Simeone, A. Evidence of a rudimentary colon in the elasmobranch, Leucoraja erinacea. Dev. Genes Evol. 222, 237-243 (2012).
  15. Filipe, M. I. Mucins in the human gastrointestinal epithelium: a review. Invest. Cell Pathol. 2, 195-216 (1979).
  16. Corfield, A. P., Wagner, S. A., Clamp, J. R., Kriaris, M. S., Hoskins, L. C. Mucin degradation in the human colon: production of sialidase, sialate O-acetylesterase, N-acetylneuraminate lyase, arylesterase, and glycosulfatase activities by strains of fecal bacteria. Infect. Immun. 60, 3971-3978 (1992).
  17. Reid, B. J., et al. Flow-cytometric and histological progression to malignancy in Barrett’s esophagus: prospective endoscopic surveillance of a cohort. Gastroenterology. 102, 1212-1219 (1992).
  18. Mowry, R. Selective staining of pancreatic beta-cell granules. Evolution and present status. Arch. Pathol. Lab Med. 107, 464-468 (1983).
  19. Roberts, D. J., Smith, D. M., Goff, D. J., Tabin, C. J. Epithelial-mesenchymal signaling during the regionalization of the chick gut. Development. 125, 2791-2801 (1998).
check_url/it/50165?article_type=t

Play Video

Citazione di questo articolo
Theodosiou, N. A. RNA In situ Hybridization in Whole Mount Embryos and Cell Histology Adapted for Marine Elasmobranchs. J. Vis. Exp. (74), e50165, doi:10.3791/50165 (2013).

View Video