Summary

放射性トレーサーで植物にミネラル栄養素や毒性物質のフラックスを測定する

Published: August 22, 2014
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Summary

In planta measurement of nutrient and toxicant fluxes is essential to the study of plant nutrition and toxicity. Here, we cover radiotracer protocols for influx and efflux determination in intact plant roots, using potassium (K+) and ammonia/ammonium (NH3/NH4+) fluxes as examples. Advantages and limitations of such techniques are discussed.

Abstract

Unidirectional influx and efflux of nutrients and toxicants, and their resultant net fluxes, are central to the nutrition and toxicology of plants. Radioisotope tracing is a major technique used to measure such fluxes, both within plants, and between plants and their environments. Flux data obtained with radiotracer protocols can help elucidate the capacity, mechanism, regulation, and energetics of transport systems for specific mineral nutrients or toxicants, and can provide insight into compartmentation and turnover rates of subcellular mineral and metabolite pools. Here, we describe two major radioisotope protocols used in plant biology: direct influx (DI) and compartmental analysis by tracer efflux (CATE). We focus on flux measurement of potassium (K+) as a nutrient, and ammonia/ammonium (NH3/NH4+) as a toxicant, in intact seedlings of the model species barley (Hordeum vulgare L.). These protocols can be readily adapted to other experimental systems (e.g., different species, excised plant material, and other nutrients/toxicants). Advantages and limitations of these protocols are discussed.

Introduction

栄養素や毒物の取り込みと分布が強く、植物の成長に影響を与える。したがって、基本的な輸送プロセスの研究は、特に栄養の最適化と環境ストレス( 例えば 、塩ストレス、アンモニウム毒性)の文脈で、植物生物学や農学1,2の研究の主要な領域を構成している。植物中のフラックスを測定するための方法の中で最高経営責任者は、1950年代に大幅に開発された放射性同位体トレーサーを使用することである( 例えば 、3を参照)、今日広く使用され続けています。そのような根培地および/または組織への蓄積から栄養枯渇の測定などMIFE(微小電極イオン磁束推定)とSIET(イオン選択性電極法をスキャン)のようなイオン選択性振動マイクロ電極の使用、の使用などの他の方法は、イオン選択性蛍光色素は、広く適用されるが、正味のインフルエンザを検出する能力が制限されているXES( すなわち 、流入と流出の差)。放射性同位体の使用は、一方で、研究者は動力学的パラメーターを解決するために使用することができる一方向性フラックスを分離し、定量化するユニークな能力を可能にする( 例えば 、K MおよびV max)は 、容量への洞察を提供し、エネルギー論、交通システムのメカニズム、および規制、。放射性トレーサーで作られた単方向フラックス測定は反対方向に磁束が高く、細胞内プールの代謝回転が急速4である条件の下で特に有用である。トレースされた同位体は、同じ要素の別の同位体を背景に観察されているため、また、放射性トレーサーの方法は、(以下に、「ディスカッション」を参照)の測定は、多くの他の技術とは異なり、かなり高い基質濃度下で行うことを可能にする。

ここでは、単方向であり、nの放射性同位体を測定するための詳細な手順を提供完全な植物ミネラル栄養素や毒物のらフラックス。重点が存在する場合、高濃度( 例えば 、1〜において、カリウム(K +)のフラックス測定に有毒植物主要栄養素5、アンモニア/アンモニア(NH 3 / NH 4 +)、しかし、別の主要栄養素を説明する10ミリモル)2。私たちは、モデル系の大麦( オオムギ L 無傷の苗に、それぞれ、NH 4 +(T 1/2 = 9.98分)の放射性同位元素42 K +(T 1/2 = 12.36時間)と13 NH 3月 13日を使用します。)、2主要プロトコルの説明において:トレーサー流出(CATE)による直接流入(DI)とコンパートメント解析。私たちは、この記事は、単純に各プロトコルを実行するために必要な手順を説明し、最初から注意してください。計算と理論の適切な、簡潔な説明が提供される場合、各技術の詳細な博覧会の背景と理論は対象4,6-9上のいくつかの重要な論文に記載されています。重要なことは、これらのプロトコルは他の栄養素/毒物の分析をフラックスに広く譲渡する( 例えば 、24のNa +、22 Na +、86のRb +、13 NO 3 – )および他の植物種に、いくつかの注意事項ではあるが(下記参照) 。また、放射性物質を扱うすべての研究者が機関の電離放射線安全·レギュレータを介して配置されたライセンスの下で働かなければならない重要性を強調。

Protocol

1工場の文化と準備 (詳細は、10を参照)、気候制御された成長チャンバー内で7日間の大麦苗の水耕を育てる。 注:それは栄養の要件は年齢とともに変化するように、発達段階の多様で植物を調べて検討することが重要です。 実験前のある日、一つの複製(DI用のバンドルにつき3工場、CATE用のバンドルにつき6工場)を作るために一緒にいくつかの苗をバンド…

Representative Results

図1は 、高で成長した無傷の大麦の苗の根に、NH 3の流入のために(13をN)DI技術を使用して見つかった等温線を示している(10 mM)を、NH 4 +、およびいずれか(0.02 mM)の低または高(5 mMの)K +。 (;溶液のpH 13の変化によって調整する[NH 3] EXT)NH 3のフラックスは、外部のNH 3濃度の関数としてプロットされた場合?…

Discussion

上記の例で示したように、放射性トレーサー法が植物体に栄養素や毒性物質の単方向のフラックスを測定する強力な手段である。 図1は 、NH 3流入は225マイクロモルgの-1時間-1、おそらくあるの過剰に達することができることを示していますこれまでプラントシステム13に報告された最高善意の膜貫通フラックスが、唯一のネットフラ?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work was supported by the Natural Sciences and Engineering Council of Canada (NSERC), the Canada Research Chair (CRC) program, and the Canadian Foundation for Innovation (CFI).

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Gamma counter Perkin Elmer Model: Wallac 1480 Wizard 3"
Geiger-Müller counter Ludlum Measurements Inc. Model 3 survey meter
400-mL glass beakers VWR 89000-206 For pre-absorption, absorption, and desorption solutions
Glass funnel VWR 89000-466 For efflux funnel
Large tubing VWR 529297 For efflux funnel
Medium tubing VWR 684783 For bundling
Small tubing VWR 63013-541 For aeration
Aeration manifold Penn Plax Air Tech vat 5.5 To control/distribute pressurized air into solutions
Glass scintillation vials VWR 66022-128 For gamma counting
Glass centrifuge tubes VWR 47729-576 For spin-drying root samples
Kimwipes VWR 470173-504 For spin-drying root samples
Dissecting scissors VWR 470001-828
Forceps VWR 470005-496
Low-speed clinical centrifuge International Equipment Co. 76466M-4 For spin-drying root samples
1-mL pipette Gilson F144493
10-mL pipette Gilson F144494
1-mL pipette tips VWR 89079-470
10-mL pipette tips VWR 89087-532
Analytical balance Mettler toledo PB403-S/FACT

Riferimenti

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check_url/it/51877?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Coskun, D., Britto, D. T., Hamam, A. M., Kronzucker, H. J. Measuring Fluxes of Mineral Nutrients and Toxicants in Plants with Radioactive Tracers. J. Vis. Exp. (90), e51877, doi:10.3791/51877 (2014).

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