Summary

Epigenetisk forordning af Cardiac Differentiering af embryonale stamceller og væv

Published: June 03, 2016
doi:

Summary

En finjustering regulering af gen transskription ligger til grund embryonal celle skæbne beslutning. Heri beskriver vi chromatin immunopræcipitationsanalyser anvendt til at undersøge epigenetisk regulering af både hjerte- differentiering af stamceller og kardial udvikling af musefostre.

Abstract

Specifik gentransskription er en vigtig biologisk proces, der ligger til grund celleskæbne beslutning under fosterudviklingen. Den biologiske proces medieres af transkriptionsfaktorer, som binder genomiske regulatoriske regioner, herunder forstærkere og initiativtagere til hjerte-konstitutive gener. DNA er viklet rundt histoner, der udsættes for kemiske modifikationer. Ændringer af histoner føre yderligere til undertrykt, aktiveret eller balancerer gentranskription, hvilket bringer et andet niveau af finjustering regulering af gen transskription. Embryonale stamceller (ES-celler) rekapitulere inden embryoide legemer (dvs. celleaggregater) eller i 2D kultur de tidlige trin i hjerte- udvikling. De giver i princippet nok materiale til kromatin immunofældning (chip), en teknologi bredt anvendt til at identificere regulatoriske regioner gen. Endvidere humane ES-celler repræsenterer en human celle model af cardiogenese. På senere stadier af udvikling, mus embryonale væv tilladerundersøge specifikke epigenetiske landskaber kræves til bestemmelse af celle identitet. Heri beskriver vi protokoller chip, sekventiel chip efterfulgt af PCR eller chip-sekventering ved hjælp ES-celler, embryoide organer og hjerte-specifikke embryonale regioner. Disse protokoller gør det muligt at undersøge epigenetisk regulering af hjerte gentranskription.

Introduction

Hjertet er det første organ, der skal dannes, og at blive funktionelle i embryoet. Hjertet er bygget af mange cellelinier, der opstår fra den første og anden embryonale hjerte felter 1. Fra post-befrugtning blastocyst-stadiet til formede hjerte, har embryonale celler således at gøre mange celle fate beslutninger. Gentransskription reguleres på en tids- og rum-afhængig måde og er en vigtig biologisk proces, der ligger til grund celleskæbne beslutning under fosterudviklingen. En sådan proces medieres af specifikke transkriptionsfaktorer, som binder regulatoriske regioner i genomet, herunder enhancere og promotorer af kardiale konstitutive gener. DNA er viklet rundt histoner, der udsættes for modifikationer, såsom acetylering, methylering, ubiquitinylation, og / eller phosphorylering. Histon modifikation fører til undertrykt, aktiveret eller poised gentransskription afhængigt af hvilken lysinrest af histon modificeres 2.

jove_content "> chromatin immunopræcipitationsassay (chip) er blevet oprettet år siden 3 og er i øjeblikket den mest bredt anvendt teknologi for at identificere mål af enten modificerede histoner eller transkriptionsfaktorer fire. Efter immunopræcipitation af histoner eller transkriptionsfaktorer, kan bindes DNA være enten amplificeret ved polymerasekædereaktion (PCR) eller sekventeret. chip har teknisk overvundet mere udfordrende gel retarderingsassays 5. chip betyder imidlertid ikke, at direkte binding af en transkriptionsfaktor til DNA, en fordel ved gelforsinkelsesassay. på den anden side, ChIP kombineres til DNA-sekventering har åbnet en ny genom-dækkende perspektiv på genregulering.

ES-celler (ES-celler) rekapitulere inden embryoide legemer (dvs.., Celleaggregater) eller i 2D kultur de tidlige trin i hjerte- udvikling 6 og tilvejebringer i princippet tilstrækkeligt materiale til chip. Endvidere humane ES-celler repræsenterer en human celle model af cardiogenesis selvom deres kardiogent potentiale afhænger af deres epigenetisk signatur 7. På senere stadier af udvikling, mus embryonale væv mulighed for at undersøge specifikke epigenetiske landskaber kræves til bestemmelse af celle identitet. Imidlertid er genomet transkriberes i en tids- og celletype-specifik måde 8. Epigenetisk regulering af gentranskription der skal læses inden lokaliserede regioner. Heri beskriver vi protokoller chip, sekventiel chip efterfulgt af PCR eller sekventering ved hjælp ES-celler, embryoide organer og hjerte-specifikke embryonale regioner. Disse protokoller gør det muligt at undersøge epigenetisk regulering af hjerte gentranskription.

Protocol

1. DNA-protein Tværbinding Fix i 15 ml rør høstet-ES-celler (2 x 10 6 celler til regelmæssig chip, 2 x 10 5 celler til mikrochip), embryoide organer (EBS), der genereres fra ES-celler og embryonale hjerte væv dissekeret fra E9.5 musefostre (AV kanalen, udstrømning tarmkanalen og ventrikel) under anvendelse af 1% formaldehyd i PBS i celler eller i permeabilisering PB2 buffer for embryonale væv. Anbring glassene på orbitalryster ved en hastighed på 60 rpm ved stuetemperatur i nøj…

Representative Results

Figur 1A viser først fremstillingen af DNA-bindende perler og kvalitetskontrol under anvendelse af DNA fra forskellige størrelser (1 kb stige). 0ne, 2 og 2,5 voluminer (1 til 3) af perler blev tilsat til et volumen af ​​prøven til oprensning med høj og lav molekylær størrelse DNA-fragmenter. Figurerne 1 B, C, D er typiske eksempler på DNA-geler fra hele sonikeret DNA ekstraheret fra…

Discussion

Epigenetik er blevet et vigtigt forskningsområde i udviklingsmæssige biologi. Hvordan et genetisk program aktiveres i embryonale celler for at give cellerne erhverve særlige identitet i en embryonal slægt har været i lang tid et centralt spørgsmål for udviklingsmæssige biologer.

Chip har været bredt anvendt inden for de sidste år, og kombineres til DNA-sekventering efter forbedring i opløsning på sekventering. Dette er blevet en kraftfuld teknik for at undersøge i et genom bred …

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors acknowledge funding agencies, the IMI StemBANCC European community programme, the leducq Foundation (SHAPEHEART) and the Agence Nationale de la Recherche (Genopath)

Materials

Formaldehyde  Sigma F8775 Cell Fixation 
Glycine Sigma G8898 Cross-link stop
Aprotinin Fluka 10820 Proteases inhibitor
Leupeptin hemisulfate Sigma L2882 Proteases inhibitor
PMSF Sigma P7626 Proteases inhibitor
Protein A magnetic beads  Life technologies 10001D Immunoprecipitation
SPRI magnetic beads Thermo Scientific 15002-01 DNA purification
Proteinase K Life technologies 25530-015 Protein digestion 
DNA BR standard  Life technologies Q32850 Calibration range 
Syber green Molecular Probes S-11484 DNA quantification
TE buffer  Invitrogen P7589 DNA quantification
PBX 1X Life technologies 14190-094 Washing
DNase RNase free water Life technologies 10977-035 Dilution
Axygen tube Axygen MCT-175-C ChIP purifiction
Antibody  Company Reference ChIP concentration
H3K27ac Abcam ab4729 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K4me1 Diagenode C15410194 (pAb-194-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K36me3 Diagenode C15410058 (pAb-058-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K9me2 Diagenode C15410060 (pAb-060-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K4me3 Diagenode C15410030 (pAb-030-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues
H3K27me3 Diagenode C15410069 (pAb-069-050) 3 µg for ESC and EBs, 1 µg for tissues

Riferimenti

  1. Buckingham, M., Meilhac, S., Zaffran, S. Building the mammalian heart from two sources of myocardial cells. Nat Rev Genet. 6, 826-835 (2005).
  2. Chen, T., Dent, S. Y. Chromatin modifiers and remodellers: regulators of cellular differentiation. Nat Rev Genet. 15, 93-106 (2014).
  3. Collas, P. The current state of chromatin immunoprecipitation. Mol Biotechnol. 45, 87-100 (2010).
  4. Gade, P., Kalvakolanu, D. V. Chromatin immunoprecipitation assay as a tool for analyzing transcription factor activity. Methods Mol Biol. 809, 85-104 (2012).
  5. Scott, V., Clark, A. R., Docherty, K. The gel retardation assay. Methods Mol Biol. 31, 339-347 (1994).
  6. Van Vliet, P., Wu, S. M., Zaffran, S., Puceat, M. Early cardiac development: a view from stem cells to embryos. Cardiovasc Res. 96, 352-362 (2012).
  7. Leschik, J., Caron, L., Yang, H., Cowan, C., Puceat, M. A view of bivalent epigenetic marks in two human embryonic stem cell lines reveals a different cardiogenic potential. Stem Cells Dev. 24, 384-392 (2015).
  8. Bonn, S., Zinzen, R. P., Girardot, C., Gustafson, E. H., Perez-Gonzalez, A., Delhomme, N., Ghavi-Helm, Y., Wilczynski, B., Riddell, A., Furlong, E. E. Tissue-specific analysis of chromatin state identifies temporal signatures of enhancer activity during embryonic development. Nat Genet. 44, 148-156 (2012).
  9. Kim, T. K., Shiekhattar, R. Architectural and Functional Commonalities between Enhancers and Promoters. Cell. 162, 948-959 (2015).
  10. Abboud, N., Moore-Morris, T., Hiriart, E., Yang, H., Bezerra, H., Gualazzi, M. G., Stefanovic, S., Guenantin, A. C., Evans, S. M., Puceat, M. A cohesin-OCT4 complex mediates Sox enhancers to prime an early embryonic lineage. Nat Commun. 6, 6749 (2015).
  11. Dahl, J. A., Collas, P. Q2ChIP, a quick and quantitative chromatin immunoprecipitation assay, unravels epigenetic dynamics of developmentally regulated genes in human carcinoma cells. Stem Cells. 25, 1037-1046 (2007).
  12. Bernstein, B. E., Mikkelsen, T. S., Xie, X., Kamal, M., Huebert, D. J., Cuff, J., Fry, B., Meissner, A., Wernig, M., Plath, K., et al. A bivalent chromatin structure marks key developmental genes in embryonic stem cells. Cell. 125, 315-326 (2006).
  13. Wamstad, J. A., Alexander, J. M., Truty, R. M., Shrikumar, A., Li, F., Eilertson, K. E., Ding, H., Wylie, J. N., Pico, A. R., Capra, J. A., et al. Dynamic and coordinated epigenetic regulation of developmental transitions in the cardiac lineage. Cell. 151, 206-220 (2012).
  14. Stergachis, A. B., Neph, S., Reynolds, A., Humbert, R., Miller, B., Paige, S. L., Vernot, B., Cheng, J. B., Thurman, R. E., Sandstrom, R., et al. Developmental fate and cellular maturity encoded in human regulatory DNA landscapes. Cell. 154, 888-903 (2013).
  15. Brind’Amour, J., Liu, S., Hudson, M., Chen, C., Karimi, M. M., Lorincz, M. C. An ultra-low-input native ChIP-seq protocol for genome-wide profiling of rare cell populations. Nat Commun. 6, 6033 (2015).

Play Video

Citazione di questo articolo
Jebeniani, I., Leschik, J., Puceat, M. Epigenetic Regulation of Cardiac Differentiation of Embryonic Stem Cells and Tissues. J. Vis. Exp. (112), e53874, doi:10.3791/53874 (2016).

View Video