Summary

Vorbereitung von dissoziierten Maus kortikale Neuron Kulturen

Published: December 19, 2007
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Summary

Dieses Video zeigt ein Verfahren zur Erzeugung von neuronalen Kulturen vom späten Embryo und frühen postnatalen Maus Kortex. Diese Kulturen können für Immunzytochemie, Biochemie, Elektrophysiologie, Calcium und Natrium Bildgebung verwendet werden und bieten eine Plattform, um die neuronale Entwicklung von transgenen Tieren, die ein postnatale tödlichen Gen-Mutation tragen zu studieren.

Abstract

Dieses Video wird Sie durch den Prozess zur Erzeugung von kortikalen neuronalen Kulturen vom späten Embryo und frühen postnatalen Gehirn der Maus. Diese Kulturen können für eine Vielzahl von Anwendungen, einschließlich Immunzytochemie, Biochemie, Elektrophysiologie, Calcium und Natrium Imaging-, Protein-und / oder RNA-Isolierung verwendet werden. Diese Kulturen auch eine Plattform, um die neuronale Entwicklung von transgenen Tieren, die ein Ende der embryonalen oder postnatale tödlichen Gen-Mutation tragen zu studieren. Das Verfahren ist relativ einfach, erfordert eine gewisse Erfahrung in der Gewebekultur Technik und sollten nicht länger als zwei Minuten vor drei Stunden, wenn Sie richtig vorbereitet sind. Eine sorgfältige Trennung der kortikalen Rinde von den thalamo-kortikalen Fasern Trakt verringert sich die Anzahl der unerwünschten nicht-neuronalen Zellen. Zur Erhöhung der Erträge von neuronalen Zellen verreiben die Stücke des kortikalen Gewebes sanft nach der Enzyminkubation Schritt. Dies ist zwingend notwendig, da es unnötige Verletzungen verhindert, Zellen und vorzeitigem Zelltod. Da diese Kulturen in der Abwesenheit von Gliazellen Feeder-Zellen gehalten werden, sie bieten auch einen zusätzlichen Vorteil der wachsenden Kulturen in Neuronen angereichert.

Protocol

Vorbereitungen vor dem Tag der Kultivierung: Bereiten Sie sterile Sezieren Lösung (DS). Bereiten NBM/B27 (Neurobasal Mediom mit B27-Ergänzungsmittel). Autoclave ddH 2 O und sterilisieren Glas coversilps, wenn nötig. Coat Gewebekulturschalen oder Deckgläser mit Poly-D-Lysin. Poly-D-Lysin-Beschichtung: Bereiten Sie den Tag vor Kultivierung unter sterilen Bedingungen. Thaw Aliquot 10X PDL und auf…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
5-Fluoro-2′-deoxyuridine   Sigma F0503  
Sodium Chloride   Sigma S9625  
Vibraslicer   Campden Instruments Ltd.    
Potassim Chloride   Sigma P4504  
Sodium Phosphate Dibasic   Sigma S0876  
Potassium Phosphate Monobasic   Sigma P5379  
Hepes   Sigma H3375  
D (+)-Glucose   Sigma G8270  
Sucrose   Sigma S0389  
Poly-D-Lysine   Sigma P7280  
B27 Supplement   Invitrogen (Gibco) 17504-044  
Neurobasal Media (NBM)   Invirtogen (Gibco) 21103-049  
2-Amino-5-phosphonopentanoic acid   Sigma A5282  
Bovine Albumin   Sigma A7030  
Trypsin Inhibitor   Sigma T9253  
Sodium Hydroxide, 1N solution   Fisher SS266-1  
L-Cysteine   Sigma C7755  
Bacto Agar   Difco 0140-01  
Papain   Worthington LS 03126  
Sterile 0.2 µm Syringe Filter   Fisher DDA02025S0  
Glass Coverslips, No1, Ø12mm   Bellco Glass Inc. 1943-00012  
Minimum Essential Media (MEM)   Invitrogen (Gibco) 11090-081 with Earle’s salts without L-glutamine, needed for growing non-neuronal cultures
Penicillin/Streptomycin   Invitrogen (Gibco) 15070-063 for non-neuronal culture
Fetal Bovine Serum   Invitrogen (Gibco) 16140-071 needed for non-neuronal cultures
Nunclon “Triple Flask” Tissue Culture Bottle   Fisher 12-565-25 Use for non-neuronal cultures. these flasks are very convenient when producing “conditioned Neurobasal Media/B27”, but any other tissue culture flasks or dishes can be used instead.
Glass bottom “Imaging dishes”   MatTek Corp. P35G-1.5-10-C Glass bottomed, Ø35mm culture dishes ideal for Calcium or Sodium Imaging when using an inverted imaging setup. But expensive!
check_url/it/562?article_type=t

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Citazione di questo articolo
Hilgenberg, L. G. W., Smith, M. A. Preparation of Dissociated Mouse Cortical Neuron Cultures. J. Vis. Exp. (10), e562, doi:10.3791/562 (2007).

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