Preparazione del dissociato Culture Neuron mouse corticale
Summary
Questo video mostra una procedura per la generazione di culture neuronali dall'embrione fine e l'inizio della corteccia del mouse postnatale. Queste culture possono essere utilizzati per immunocitochimica, biochimica, elettrofisiologia, calcio e sodio di imaging e di fornire una piattaforma per studiare lo sviluppo neuronale di animali transgenici che portano una mutazione genetica postnatale letale.
Abstract
Questo video vi guiderà attraverso il processo per la generazione di neuroni corticali culture dall'embrione fine e l'inizio del cervello di topo postnatale. Queste culture può essere utilizzato per una varietà di applicazioni, tra cui immunocitochimica, biochimica, elettrofisiologia, imaging di calcio e sodio, proteine e / o RNA isolamento. Queste culture anche fornire una piattaforma per studiare lo sviluppo neuronale di animali transgenici che portano una mutazione in ritardo embrionale o postnatale gene letale. La procedura è relativamente semplice, richiede una certa esperienza nelle tecniche di coltura e non dovrebbe richiedere più di due o tre ore se si è adeguatamente preparati. Un'attenta separazione della crosta corticale dal talamo-corticale del tratto di fibra ridurrà il numero degli indesiderati cellule non neuronali. Per aumentare la resa delle cellule neuronali triturare i pezzi del tessuto corticale delicatamente dopo la fase di incubazione dell'enzima. Questo è indispensabile in quanto previene inutili danni alle cellule e la morte prematura delle cellule neuronali. Dato che queste colture sono mantenute in assenza di cellule di alimentazione glia, offrono anche un vantaggio aggiunto di culture crescente arricchito nei neuroni.
Protocol
Divulgazioni
The authors have nothing to disclose.
Materials
| Material Name | Tipo | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| 5-Fluoro-2′-deoxyuridine | Sigma | F0503 | ||
| Sodium Chloride | Sigma | S9625 | ||
| Vibraslicer | Campden Instruments Ltd. | |||
| Potassim Chloride | Sigma | P4504 | ||
| Sodium Phosphate Dibasic | Sigma | S0876 | ||
| Potassium Phosphate Monobasic | Sigma | P5379 | ||
| Hepes | Sigma | H3375 | ||
| D (+)-Glucose | Sigma | G8270 | ||
| Sucrose | Sigma | S0389 | ||
| Poly-D-Lysine | Sigma | P7280 | ||
| B27 Supplement | Invitrogen (Gibco) | 17504-044 | ||
| Neurobasal Media (NBM) | Invirtogen (Gibco) | 21103-049 | ||
| 2-Amino-5-phosphonopentanoic acid | Sigma | A5282 | ||
| Bovine Albumin | Sigma | A7030 | ||
| Trypsin Inhibitor | Sigma | T9253 | ||
| Sodium Hydroxide, 1N solution | Fisher | SS266-1 | ||
| L-Cysteine | Sigma | C7755 | ||
| Bacto Agar | Difco | 0140-01 | ||
| Papain | Worthington | LS 03126 | ||
| Sterile 0.2 µm Syringe Filter | Fisher | DDA02025S0 | ||
| Glass Coverslips, No1, Ø12mm | Bellco Glass Inc. | 1943-00012 | ||
| Minimum Essential Media (MEM) | Invitrogen (Gibco) | 11090-081 | with Earle’s salts without L-glutamine, needed for growing non-neuronal cultures | |
| Penicillin/Streptomycin | Invitrogen (Gibco) | 15070-063 | for non-neuronal culture | |
| Fetal Bovine Serum | Invitrogen (Gibco) | 16140-071 | needed for non-neuronal cultures | |
| Nunclon “Triple Flask” Tissue Culture Bottle | Fisher | 12-565-25 | Use for non-neuronal cultures. these flasks are very convenient when producing “conditioned Neurobasal Media/B27”, but any other tissue culture flasks or dishes can be used instead. | |
| Glass bottom “Imaging dishes” | MatTek Corp. | P35G-1.5-10-C | Glass bottomed, Ø35mm culture dishes ideal for Calcium or Sodium Imaging when using an inverted imaging setup. But expensive! |
