Summary

ブタ網膜色素上皮細胞の初代培養

Published: September 23, 2022
doi:

Summary

ここでは、初代ブタ網膜色素上皮細胞を 試験管内で 培養するためのわかりやすい方法が提示されている。

Abstract

網膜色素上皮(RPE)は、網膜の脈絡膜と神経網膜の間に位置する偏光色素上皮細胞の単層です。食作用、栄養素/代謝物輸送、ビタミンA代謝などを含む複数の機能がRPEによって日常的に行われています。RPE細胞は、再生能力がほとんどまたはまったくない最終分化上皮細胞です。RPE細胞の喪失は、加齢黄斑変性症などの視覚障害につながる複数の眼疾患をもたらします。したがって、細胞株よりもin vivoのRPEによく似た初代RPE細胞のin vitro培養モデルの確立は、RPE細胞の特徴的かつ機構的な研究にとって重要です。ヒトの眼球の供給源が限られていることを考慮して、我々は初代ブタRPE細胞を培養するためのプロトコルを作成します。このプロトコルを使用することにより、RPE細胞は成体のブタ眼球から容易に解離することができる。その後、これらの解離した細胞は培養皿/インサートに付着し、増殖してコンフルエントな単層を形成し、in vivoで上皮組織の重要な特徴を2週間以内に迅速に再確立します。qRT-PCRにより、初代ブタRPE細胞は、天然RPE組織と同等のレベルで複数のシグネチャ遺伝子を発現する一方で、ヒトRPE様細胞ARPE-19では、これらの遺伝子のほとんどの発現が失われたり、大幅に減少したりすることが実証されています。さらに、免疫蛍光染色は、培養初代細胞におけるタイトジャンクション、組織極性、細胞骨格タンパク質の分布、およびビタミンA代謝に重要なイソメラーゼであるRPE65の存在を示しています。全体として、高純度でネイティブなRPE機能を備えた初代ブタRPE細胞を培養するためのわかりやすいアプローチを開発し、RPE生理学を理解し、細胞毒性を研究し、薬物スクリーニングを容易にするための優れたモデルとして役立つ可能性があります。

Introduction

網膜色素上皮(RPE)は、網膜1の外層の光受容体と脈絡毛細血管の間に位置し、血液網膜関門の形成、栄養素と網膜代謝物の輸送と交換、正常な視覚サイクルを維持するためのビタミンAのリサイクル、脱落した光受容体外側セグメント(POS)の食作用とクリアランスなど、複数の機能を持っています2,3。.POSは視力を生成するために絶え間ない自己複製を必要とするため、RPE細胞は網膜の恒常性を維持するために剥離したPOSを継続的に飲み込む必要があります4。したがって、RPE機能障害は、加齢黄斑変性症(AMD)4、網膜色素変性症(RP)5、レーバー先天性無力症6、糖尿病性網膜症7など、多くの失明性眼疾患を引き起こします。今まで、これらの病気のほとんどの正確な病因はとらえどころのないままです。その結果、RPE細胞生物学、病理学的変化、およびその根底にあるメカニズムを研究するためにRPE細胞培養が確立されます。

細胞生物学を研究するための最も単純なモデルとして、RPE細胞の培養は早くも1920年代に開始されました8。ARPE-19はRPE細胞として広く用いられているが、色素沈着の喪失、石畳の形態、特にこの細胞株におけるバリア機能は、多くの懸念を引き起こす9。それに比べて、初代ヒトRPE細胞の培養は、生理学的および病理学的研究のためのより現実的なシナリオを提供します9。ただし、可用性が比較的限られているため、使用が制限され、倫理的な問題が常に存在します。さらに、いくつかのグループは、RPE細胞を培養するためにマウスモデルを使用しました。しかし、マウスの目のサイズは小さく、1回の培養には通常多くのマウスが必要であり、これは便利ではありません9。最近、科学者は、ヒト胚性幹細胞または人工多能性幹細胞を使用してRPE細胞を誘導する新しい方法を開発しました。この技術は、遺伝性RPE障害の治療に特に可能性を秘めているが、時間がかかり、通常、成熟RPE細胞を生成するのに数ヶ月を要する10。これらの問題を克服するために、ここでは、実験室で高純度RPE細胞を日常的に分離および培養するためのわかりやすいプロトコルを紹介します。適切な培養条件下では、これらの細胞は典型的なRPE機能を示し、典型的なRPE形態を示すことができます。したがって、この培養法は、RPE生理学を理解し、細胞毒性を研究し、関連する眼疾患の病理学的メカニズムを調査し、薬物スクリーニングを実施するための優れたモデルを提供することができます。

Protocol

実験動物の使用は、視覚眼科学研究協会(ARVO)の規則に準拠し、厦門大学の実験動物管理の倫理委員会によって承認されました。 1. 実験用手術器具、組織消化酵素、細胞培養バッファーの調製 実験用手術器具を準備し、眼球解剖の前日に2組の眼科手術用ハサミ及び鉗子を洗浄及びオートクレーブ処理し、その後、手術器具の入った箱を一般プロトコー…

Representative Results

初代ブタRPE(pRPE)細胞を10Sを含むDMEM/ベーシック培地で培養し、播種後2日目(図2A)、6日目(図2B)、および10日目(図2C)に光学顕微鏡下で細胞形態を撮影しました。1週間後、石畳の形態を有する色素性pRPE細胞のコンフルエント単層が観察された。 初代pRPE細胞をよりよく特徴付けるために、継代3(P3)18の初代ヒ?…

Discussion

ここでは、ブタ眼球からのRPE細胞の単離、培養、および特性評価のための詳細で最適化されたプロトコルが、RPE細胞のin vitro特性評価およびRPE関連障害研究のための優れたモデルを生成することが記載されている。ヒト、マウス、およびラットの眼からRPEを単離するための方法は、以前に記載されている232425。?…

Divulgazioni

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

著者らは、この研究で細胞に貢献しているすべての動物に感謝と敬意を表したいと思います。この研究の一部は、中国の国家重点研究開発プログラム(2019YFA0111200、Yi Liao & Yuan Gao、およびGrant nos. 2018YFA0107301、Wei Li)からの助成金によって支援されました。著者らは、共焦点イメージングの技術サポートを提供してくれた厦門大学医学部中央研究所のJingru HuangとXiang Youに感謝しています。

Materials

ARPE-19 cells CCTCC GDC0323
Bovine serum albumin Yeasen 36101ES60
Confocal microscopy Zeiss LSM 880 with Airyscan
ChemiDoc Touch Bio-Rad 1708370
Cell scraper Sangon F619301
10 cm culture dish NEST 121621EH01
12-well culture plate NEST 29821075P
DMEM F12 Medium Gibco C11330500BT
DMEM basic Medium Gibco C11995500BT
EVOM2 World Precision Instruments EVOM2 For TER measurement
Fetal bovine serum ExCell Bio FSP500
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Highly Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 488 ThermoFisher Scientific  A-11034
Goat anti-Rabbit IgG (H+L) Cross-Adsorbed Secondary Antibody, Alexa Fluor 594 ThermoFisher Scientific A-11012
Goat anti Mouse IgG (H/L):HRP Bio-Rad 0300-0108P
Goat anti Rabbit IgG (H/L):HRP Bio-Rad 5196-2504
hydrocortisone MCE HY-N0583/CS-2226
Hoechst 33342 solution (20 mM) ThermoFisher Scientific 62249
LightCycler 96 Instrument Roche 5815916001
Liothyronine MCE HY-A0070A/CS-4141
laminin Sigma-Aldrich L2020-1MG
MEM(1X)+GlutaMAX Medium Gibco 10566-016
MEM NEAA(100X) Gibco 11140-050
Millex-GP syringe filter unit Millipore SLGPR33RB
N1 Sigma-Aldrich SLCF4683
NcmECL Ultra New Cell&Molecular Biotech P10300
Non-fat Powdered Milk Solarbio D8340
Nicotinamide SparkJade SJ-MV0061
Na+-K+ ATPase antibody Abcam ab76020 Recognize both human and porcine proteins
PAGE Gel Fast Preparation Kit(10%) Epizyme PG112
primary Human RPE cells  Generous gift from Shoubi Wang lab 
Pierce BCA Protein Assay Kit  ThermoFisher Scientific 23225
Prism GraphPad by Dotmatics version 8.0
Protease Inhibitor Cocktails APExBIO K1024
PRE65 antibody Proteintech 17939-1-AP Recognize both human and porcine proteins
PEDF antibody Santa Cruz Biotechnology sc-390172 Recognize both human and porcine proteins
100 x penicillin/streptomycin  Biological Industries 03-031-1BCS
Phosphate buffered saline (PBS) RARBIO RA-9005
ReverTra Ace qPCR RT Master Mix Toyobo FSQ-201
RIPA buffer ThermoFisher Scientific  89900
15 mL sterile centrifuge tubes NEST 601052
50 mL sterile centrifuge tubes NEST 602052
0.25% Trypsin-EDTA Gibco 25200-056
Taurine Damas-beta 107-35-7
Trizol Thermo-Fisher  15596026 RNA extraction solution
TB Green Fast qPCR Mix Takara RR430A
12-well transwell inserts Labselect 14212
VEGF antibody Proteintech 19003-1-AP Recognize both human and porcine proteins
VEGF ELISA kit Novusbio VAL106
ZO-1 antibody ABclonal A0659 Recognize both human and porcine proteins

Riferimenti

  1. Tan, L. X., Germer, C. J., La Cunza, N., Lakkaraju, A. Complement activation, lipid metabolism, and mitochondrial injury: Converging pathways in age-related macular degeneration. Redox Biology. 37, 101781 (2020).
  2. Caceres, P. S., Rodriguez-Boulan, E. Retinal pigment epithelium polarity in health and blinding diseases. Current Opinion in Cell Biology. 62, 37-45 (2020).
  3. Lakkaraju, A., et al. The cell biology of the retinal pigment epithelium. Progress in Retinal and Eye Research. 78, 100846 (2020).
  4. Somasundaran, S., Constable, I. J., Mellough, C. B., Carvalho, L. S. Retinal pigment epithelium and age-related macular degeneration: A review of major disease mechanisms. Clinical & Experimental Ophthalmology. 48 (8), 1043-1056 (2020).
  5. Ducloyer, J. B., Le Meur, G., Cronin, T., Adjali, O., Weber, M. Gene therapy for retinitis pigmentosa. Medecine Sciences. 36 (6-7), 607-615 (2020).
  6. den Hollander, A. I., Roepman, R., Koenekoop, R. K., Cremers, F. P. Leber congenital amaurosis: genes, proteins and disease mechanisms. Progress in Retinal and Eye Research. 27 (4), 391-419 (2008).
  7. Samuels, I. S., Bell, B. A., Pereira, A., Saxon, J., Peachey, N. S. Early retinal pigment epithelium dysfunction is concomitant with hyperglycemia in mouse models of type 1 and type 2 diabetes. Journal of Neurophysiology. 113 (4), 1085-1099 (2015).
  8. Smith, D. T. Melanin pigment in the pigmented epithelium of the retina of the embryo chick eye studied in vivo and in vino. The Anatomical Record. 18, 260-261 (1920).
  9. Schnichels, S., et al. Retina in a dish: Cell cultures, retinal explants and animal models for common diseases of the retina. Progress in Retinal and Eye Research. 81, 100880 (2021).
  10. D’Antonio-Chronowska, A., D’Antonio, M., Frazer, K. A. In vitro differentiation of human iPSC-derived retinal pigment epithelium cells (iPSC-RPE). Bio-Protocol. 9 (24), 3469 (2019).
  11. Hazim, R. A., Volland, S., Yen, A., Burgess, B. L., Williams, D. S. Rapid differentiation of the human RPE cell line, ARPE-19, induced by nicotinamide. Experimental Eye Research. 179, 18-24 (2019).
  12. Dunn, K. C., Aotaki-Keen, A. E., Putkey, F. R., Hjelmeland, L. M. ARPE-19, a human retinal pigment epithelial cell line with differentiated properties. Experimental Eye Research. 62 (2), 155-169 (1996).
  13. . Scientific, T Available from: https://www.thermofisher.cn/document-connect/document (2022)
  14. . Toyota Available from: https://www.toyoboglobal.com/seihin/xr/likescience/support/manual/FSQ-201.pdf (2022)
  15. . Abcam Available from: https://www.abcam.cn/protocols/immunocytochemistry-immunofluorescence-protocol (2022)
  16. . Zeiss Available from: https://www.zeiss.com/microscopy/en/products/software/zeiss-zen-lite.html#manuals (2022)
  17. . Cell Signal Technology Available from: https://www.cellsignal.cn/learn-and-support/protocols/protocol-western (2022)
  18. Wang, S., et al. Reversed senescence of retinal pigment epithelial cell by coculture with embryonic stem cell via the TGFbeta and PI3K pathways. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 8, 588050 (2020).
  19. Pfeffer, B. A., Philp, N. J. Cell culture of retinal pigment epithelium: Special Issue. Experimental Eye Research. 126, 1-4 (2014).
  20. Lehmann, G. L., Benedicto, I., Philp, N. J., Rodriguez-Boulan, E. Plasma membrane protein polarity and trafficking in RPE cells: past, present and future. Experimental Eye Research. 126, 5-15 (2014).
  21. Anderson, J. M., Van Itallie, C. M. Physiology and function of the tight junction. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 1 (2), 002584 (2009).
  22. Nita, M., Strzalka-Mrozik, B., Grzybowski, A., Mazurek, U., Romaniuk, W. Age-related macular degeneration and changes in the extracellular matrix. Medical Science Monitor. 20, 1003-1016 (2014).
  23. Fernandez-Godino, R., Garland, D. L., Pierce, E. A. Isolation, culture and characterization of primary mouse RPE cells. Nature Protocols. 11 (7), 1206-1218 (2016).
  24. Langenfeld, A., Julien, S., Schraermeyer, U. An improved method for the isolation and culture of retinal pigment epithelial cells from adult rats. Graefe’s Archive for Clinical and Experimental Ophthalmology. 253 (9), 1493-1502 (2015).
  25. Sonoda, S. A protocol for the culture and differentiation of highly polarized human retinal pigment epithelial cells. Nature Protocols. 4 (5), 662-673 (2009).

Play Video

Citazione di questo articolo
Wen, F., Wang, Y., He, D., Liao, C., Ouyang, W., Liu, Z., Li, W., Liao, Y. Primary Culture of Porcine Retinal Pigment Epithelial Cells. J. Vis. Exp. (187), e64244, doi:10.3791/64244 (2022).

View Video