Summary

Vorbereitung der Beschwerde Matrizen zur Quantifizierung von Cellular Kontraktion

Published: December 14, 2010
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Summary

In diesem Video zeigen wir die experimentelle Techniken verwendet, um konform, extrazellulären Matrix (ECM) beschichtete Substrate für Zellkulturen herzustellen, und die durchaus in Zugkraft Mikroskopie und Beobachten Auswirkungen der ECM Steifigkeit auf das Verhalten der Zelle.

Abstract

Die Regulation der zellulären Adhäsion an die extrazelluläre Matrix (ECM) ist von wesentlicher Bedeutung für die Zell-Migration und ECM Umbau. Fokalen Adhäsionen sind makromolekulare Baugruppen, die Kopplung der kontraktilen F-Aktin-Zytoskelett der ECM. Diese Verbindung ermöglicht die Übertragung von intrazellulären mechanischen Kräfte durch die Zellmembran mit dem darunterliegenden Substrat. Neuere Arbeiten haben gezeigt, die mechanischen Eigenschaften der ECM regulieren fokale Adhäsion und F-Aktin-Morphologie sowie zahlreiche physiologische Prozesse, einschließlich der Zelldifferenzierung, Division, Proliferation und Migration. So hat der Einsatz von Zellkultursubstraten zu einem immer vorherrschende Methode zur präzisen Steuerung und modulieren ECM mechanischen Eigenschaften.

Zur Quantifizierung Zugkräfte an fokalen Adhäsionen in einer adhärenten Zelle, entsprechen Substraten in Verbindung mit hochauflösenden Bildgebung und rechnergestützte Techniken in einem Verfahren genannt Traction Force Mikroskopie (TFM) verwendet. Diese Technik beruht auf Messungen der lokalen Größe und Richtung der Substrat Verformungen durch zelluläre Kontraktion induziert. In Kombination mit hochauflösenden Fluoreszenzmikroskopie von fluoreszenzmarkierten Proteinen ist es möglich, Zytoskelett-Organisation und Umbau mit Zugkräften zu korrelieren.

Hier präsentieren wir Ihnen ein ausführliches Versuchsprotokoll für die Herstellung von zweidimensionalen, konforme Matrizen für die Zwecke der Schaffung einer Zellkultur Substrat mit einem gut charakterisierten, abstimmbaren mechanische Steifigkeit, die für die Messung zellulärer Kontraktion ist. Diese Protokolle umfassen die Herstellung von Polyacrylamid-Hydrogele, Beschichtung von ECM-Proteine ​​auf solche Gele, Plattieren Zellen auf Gele und hochauflösenden konfokalen Mikroskopie mit einem Perfusionskammer. Darüber hinaus bieten wir eine repräsentative Stichprobe von Daten, die zeigen Lage und das Ausmaß der zellulären Kräfte mit angeführt TFM-Protokolle.

Protocol

1. Die Aktivierung der Oberfläche Deckglas Deckgläser (# 1.5, 22×40 mm) gereinigt werden mit einer Reihe von Seife und Ethanol wäscht in einem zuvor beschriebenen Protokoll (Waterman-Storer, 1998) zu reinigen und zu entstauben. Legen Sie Deckgläser in einer Edelstahl-Halterung Rack, sind derart, dass Deckgläser beabstandet und berühren sich nicht. In Laborabzug (Nitril-Handschuhe und Schutzbrille empfohlen), verdünnte voller Stärke 3-aminopropyltrimethoxysilan in Isopropanol zu ein…

Discussion

Das hier beschriebene Verfahren für den Aufbau einer Zugkraft-Mikroskopie (TFM) Experiment, zusammen mit der Umsetzung der Computational Tracking-Routinen (Sabass et al., 2008), ermöglicht die Quantifizierung von zellulären Kräfte mit Mikrometer-Skala räumlicher Auflösung. Zur Optimierung der experimentellen Protokoll, ist es entscheidend, eine reine und gleichmäßige Gelsubstrat mit gleichmäßigen Beschichtung von ECM-Liganden zu bilden. Wir diskutieren mögliche Fallstricke unter:

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Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir danken dem Labor von Ulrich Schwarz für Computational Tracking-Software in die Quantifizierung von zellulären Zugkräfte (Sabass et al., 2008) verwendet. Diese Arbeit wurde durch ein Burroughs Wellcome Career Award und NIH Director der Pioneer Award (DP10D00354) zu ML Gardel und Medical Scientist National Research Service Award (5 T32 GM07281) auf SP Winter unterstützt.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
3-aminopropyltrimethyoxysilane   Aldrich 28, 177-8  
40% Acrylamide   BioRad 161-0140  
2% Bis-acrylamide   Fisher BioReagents BP1404  
TEMED   Fisher BioReagents BP 150-20  
Ammonium persulfate   Fisher Scientific BP179  
40nm fluorescent micro-spheres   Invitrogen F8789  
Sulfo-SANPAH   Pierce 22589  
Confocal imaging chamber (RC-30)   Warner Instruments 64-0320  
Coverslip spinner   Home-built NA  
Ultraviolet lamp CL1000   UVP 95-0228-01  
Stainless steel rack   Electron Microscopy Sciences 72239-04  
acryloyl-X, SE (6-((acryloyl)amino)hexanoic acid)   Invitrogen A-20770  
Hydrazine hydrate   Sigma Aldrich 225819  
Sodium meta-periodate   Thermo Scientific 20504  
Isopropanol   Fisher Scientific A416-4  
Fibronectin   Sigma-Aldrich F2006  
Collagen   BD Biosciences 354236  
Coverslips (#1.5)   Corning 2940‐224  
Glutaraldehyde   Electron Microscopy Sciences 16120  
Rain-X   SOPUS Products www.rainx.com  
Acetic Acid   Acros Organics 64-19-7  

References

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Cite This Article
Aratyn-Schaus, Y., Oakes, P. W., Stricker, J., Winter, S. P., Gardel, M. L. Preparation of Complaint Matrices for Quantifying Cellular Contraction. J. Vis. Exp. (46), e2173, doi:10.3791/2173 (2010).

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