Summary

Взятии крови у крыс путем подкожной вены и пункции сердца

Published: August 23, 2007
doi:

Summary

Крови привлекает необходимы в большом количестве исследований, например для изучения фармакокинетики профиля соединения. Здесь мы показываем, как рисовать крови у крыс с помощью двух методов: кровь извлечь из подкожной вены или пункции сердца.

Abstract

Рисование крови от грызунов необходимо для большого числа как в пробирке и в естественных исследованиях. Сайты крови привлекает множество у грызунов: ретро-орбитальной пазухи, яремной вены, верхнечелюстной вены, подкожной вены, сердце. Каждый метод имеет свои преимущества и недостатки, а некоторые из них не одобрен уже не в некоторых странах (например, ретро-орбитальной привлекает в Голландии). Обсуждение различных методов для рисования крови имеются 1-3. Здесь мы приведем два способа забора крови у крыс, каждый со своими специфическими приложениями.

Кровь извлечь из подкожной вены, если это сделано должным образом, вызывает минимальное бедствие у животных и не требует анестезии. Эта техника позволяет повторять привлекает небольших количеств крови, например, сколько необходимо для фармакокинетических исследований 4,5, определяющих плазмохимии, или анализ крови 6.

Сердечная пункция позволяет собирать большое количество крови от одного животного (до 10 мл крови можно сделать из 150 крыс г). Этот метод, следовательно, очень полезны в качестве терминала процедуры при взятии крови из подкожной не обеспечит достаточно большой выборке. Мы используем пункции сердца, когда нам нужно достаточное количество сыворотки от конкретного штамма крыс расти Т-лимфоцитов в пробирке линиями 4-9.

Protocol

Взятии крови у крыс путем подкожной вены и пункции сердца Примечание: Все процедуры должны быть одобрены животного ваш институт по уходу и использованию комитета. 1. Кровь извлечь из подкожной вены Эта процедура проводится без анестезии и требуе…

Discussion

Рисование крови из подкожной вены является удобным способом получить небольшое количество крови без наркоза. Если повторный отбор требуется, проверьте правила, чтобы обеспечить Вам не привлекают слишком много крови из одной крысы.

Рисование крови пункции сердца является удобный способ полу…

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Needle 20G 1/2 Tool Becton Dickinson 305176 For puncturing the saphenous vein
Microvette 300 Tool Sarstedt 20.1308.100 To collect blood from the saphenous vein
Electric trimmer Tool Braintree CLP-32130  
Needle 23 G 1 Tool Becton Dickinson 305145 For cardiac puncture
5 ml plastic syringe, slip tip Tool Fisher 14-826-12 For cardiac puncture

References

  1. Van Herck, H., Baumans, V., Brandt, C. J. W. M., Boere, H. A. G., Hesp, A. P. M., Van Lith, H. A., Schurink, M., Beynen, A. C. Blood sampling from the retro-orbital plexus, the saphenous vein and the tail vein in rats: comparative effects on selected behavioural and blood variables. Laboratory Animals. 35, 131-139 (2001).
  2. Luzzi, M., Skoumbourdis, E., Baumans, V., Conte, A., Sherwin, C., Kerwin, A., Lang, T., Morton, D., Barley, J., Moreau, E., Weilenmann, R. F., Reinhardt, V. Collecting blood from rodents: a discussion by the laboratory animal refinement and enrichment forum. Animal Technology and Welfare. 4, 99-102 (2005).
  3. Angelow, O., Schroer, R. A., Heft, S., James, V. C., Noble, J. A comparison of two methods of bleeding rats: the venous plexus of the eye versus the vena sublingualis. Jounal of Applied Toxicology. 4, 258-260 (2006).
  4. Beeton, C., Wulff, H., Barbaria, J., Clot-Faybesse, O., Pennington, M., Bernard, D., Cahalan, M. D., Chandy, K. G., Beraud, E. Selective blockade of T lymphocyte K+ channels ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis, a model for multiple sclerosis. Proc. Natl. Acad. , 13942-13947 (2001).
  5. Beeton, C., Pennington, M. W., Wulff, H., Singh, S., Nugent, D., Crossley, G., Khaytin, I., Chen, C. Y., Calabresi, P. A., Chandy, K. G. Targeting effector memory T cells with a selective peptide inhibitor of Kv1.3 channels for therapy of autoimmune diseases. Mol. Pharmacol. , 1369-1381 (2005).
  6. Beeton, C., Wulff, H., Standifer, N. E., Azam, P., Mullen, K. M., Pennington, M. W., Kolski-Andreaco, A., Wei, E., Grino, A., Counts, D. R., Wang, P. H., LeeHealey, C. J., Andrews, B. S., Sankaranarayanan, A., Homerick, D., Roeck, W. W., Tehranzadeh, J., Stanhope, K. L., Zimin, P., Havel, P. J., Griffey, S., Knaus, H. G., Nepom, G. T., Gutman, G. A., Calabresi, P. A., Chandy, K. G. Kv1.3 channels are a therapeutic target for T cell mediated autoimmune diseases. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. , 17414-17419 (2006).
  7. Beeton, C., Barbaria, J., Devaux, J., Benoliel, A. -. M., Gola, M., Sabatier, J. -. M., Bernard, D., Crest, M., Beraud, E. Selective blocking of voltage-gated K+ channels treats experimental autoimmune encephalomyelitis and inhibits T-cell activation. J. Immunol. , 936-944 (2001).
  8. Devaux, J., Forni, C., Beeton, C., Barbaria, J., Beraud, E., Gola, M., Crest, M. Myelin basic protein-reactive T cells induce conduction failure in vivo but not in vitro. Neuroreport. , 317-320 (2003).
  9. Beeton, C., Chandy, K. G. Induction and monitoring of adoptive delayed type hypersensitivity in rats. Journal of Visualized Experiments. 8, (2007).
check_url/kr/266?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Beeton, C., Garcia, A., Chandy, K. G. Drawing Blood from Rats through the Saphenous Vein and by Cardiac Puncture. J. Vis. Exp. (7), e266, doi:10.3791/266 (2007).

View Video