Summary

رواية السلبي مسح أساليب للإنتاج السريع للشفافية الضوئية في كامل أنسجة الجهاز العصبي المركزي

Published: May 08, 2018
doi:

Summary

نقدم هنا، منهجيات رواية اثنين وبسباكت و mPACT، لتحقيق أقصى حد من الشفافية الضوئية والتحليل المجهري اللاحقة للمفرج الأنسجة في القوارض سليمة كامل الجهاز العصبي المركزي.

Abstract

منذ وضع الوضوح، بيويليكتروكهيميكال مسح تقنية تسمح لتعيين النمط الظاهري ثلاثية الأبعاد داخل أنسجة شفافة، العديد من منهجيات رواية المقاصة بما في ذلك مكعب (تصوير الدماغ واضحة ودون عائق الكوكتيل والتحليل الحسابي)، ميثاق (تقنية الوضوح السلبي)، وخريطة (تحليل المكبرة البروتين) والتبديل (مراقبة وقت تفاعل المنظومة) وحركية من المواد الكيميائية قد أنشئت مجموعة الأدوات القائمة لتوسيع التحليل المجهري للأنسجة البيولوجية. هذه الدراسة تهدف إلى تحسين بناء وتحسين الإجراء الأصلي للميثاق لمجموعة أنسجة القوارض سليمة، بما في ذلك كامل الجهاز العصبي المركزي (CNS) والكليتين والطحال والأجنة الماوس كله. وصف بسباكت (ميثاق عملية منفصلة) و mPACT (تعديل ميثاق)، توفر هذه التقنيات الجديدة وسيلة فعالة جداً لرسم خرائط الدوائر الخلية وتصور الهياكل سوبسيلولار في الأنسجة العادية والمرضية سليمة. في بروتوكول التالية، ونحن نقدم عرضاً تفصيلاً، خطوة بخطوة حول كيفية تحقيق إزالة الأنسجة القصوى مع الحد الأدنى من غزو سلامتهم الهيكلي عن طريق بسباكت و mPACT.

Introduction

هدفا أساسيا للتحقيق العلمي والسريري ويشمل تحقيق فهم كامل لهيكل الجهاز ووظيفة؛ ومع ذلك، غالباً ما تخدم طبيعة معقدة للغاية لأجهزة الثدييات كحاجز أمام تحقيق هذا الهدف1. يحقق الوضوح (تبادل “الدهن واضحة” تهجين الاكريلاميد جامدة المتوافقة مع تصوير تسسو-hYdrogel)2،3،4، الذي يشمل بناء هجين المائية القائمة على مادة اكريلاميد من أنسجة سليمة، إزالة البصرية لمجموعة متنوعة من الأجهزة، بما في ذلك الدماغ والكبد، والطحال، مع الحفاظ على السلامة الهيكلية على5. وهكذا مكن الوضوح التصور ليس فقط ولكن أيضا الفرصة لتشريح ناعما الشبكات الخلوية المعقدة والأنسجة مورفولوجيس دون الحاجة لتمزيقها.

وبغية تحقيق إزالة الأنسجة، توظف الوضوح أساليب الغرواني الكهربي إزالة المحتوى الدهني للعينة في متناول اليد. بينما قد لوحظ الوضوح لإنتاج هجن المائية الأنسجة استقرارا ماديا، وقد أظهرت الدراسات أن استخدام أساليب المقاصة (إلخ) الأنسجة الغرواني الكهربي يثمر نتائج متغير من حيث نوعية الأنسجة، بما في ذلك براوننج، حانمه الضرر، و فقدان البروتين5،6. لمعالجة هذه القضايا، تم تعديل البروتوكولات مثل ميثاق (تقنية الوضوح السلبي)، الذي يحل محل العلاج إلخ مع تقنية ديليبيديشن استناداً إلى المبنى للمجهول، والمنظفات الأيونية، نمواً7،،من89. على الرغم من تحقيق قدر أكبر من اتساق في النتائج، بيد أن الميثاق يتطلب المزيد من الوقت للحصول على التصريح القصوى. وعلاوة على ذلك، أيا من هذه الأساليب بعد لم تطبق بشكل كامل الجهاز العصبي المركزي، أو في أكبر نماذج القوارض مثل الفئران وخنازير غينيا.

وتسعى الدراسة الحالية لمعالجة هذه القيود باقتراح منهجيات جديدة، بسباكت (ميثاق عملية منفصلة) و mPACT (تعديل ميثاق)، لتسهيل إزالة سريعة لكامل الجهاز العصبي المركزي والأجهزة الداخلية في نماذج الماوس وفار10. على وجه التحديد، بسباكت عمليات الأنسجة في الاكريلاميد 4% و 0.25% خامسا-044 في خطوتين منفصلة أثناء تشكيل المائية؛ mPACT أساسا ينطوي على نفس الخطوات ولكن يكمل الحل القائم على الحزب الديمقراطي الصربي المقاصة مع 0.5% α-ثيوجليسيرول ككاشف رئيسية. كلا أساليب تسخير نظم الدورة الدموية الجهازية واو الذاتية لخفض الوقت اللازم لإنتاج التخليص الضوئية. كدليل على المبدأ، نحن شرح استخدام الفحص المجهري [كنفوكل] لتحليل أنماط الأوعية الدموية في الأنسجة المجازين10.

Protocol

جميع إجراءات أقرتها لجنة أخلاقيات البحوث المناسبة في “كلية الطب في جامعة يونسي”. يتم التضحية بجميع الحيوانات التجريبية وفقا للمبادئ التوجيهية للجنة رعاية الحيوانات المختبرية في “كلية الطب في جامعة يونسي”. 1-إعداد الكواشف تنبيه: بارافورمالدهيد (PFA)، الاكريلاميد…

Representative Results

توليد نموذج شفاف لاستخدام الجهاز العصبي المركزي كله الأمثل تقنيات إزالة المبنى للمجهول سرعة تحقق إزالة البصرية الماوس وفار كامل أنسجة الجهاز العصبي المركزي باستخدام تقنيات مختلفة لإزالة المبنى للمجهول (الشكل 1…

Discussion

في حين استخدمت أساليب الاستخراج سلبية، غير الغرواني الكهربي في ميثاق تحسن كبير في اتساق تحقيقه مع الأنسجة السابقة تطهير الطرق مثل الوضوح2،3،،من47 , 8، التقنية لا تزال تحمل العديد من أوجه القصور، هو الأ…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

وأيد المشروع “الدماغ كوريا 21 زائد” “العلوم الطبية”، جامعة يونسي هذا العمل. وبالإضافة إلى ذلك، كان يؤيد هذا العمل بمنحه من “مؤسسة البحوث الوطنية كوريا” (جبهة الخلاص الوطني-2017R1D1A1B03030315).

Materials

Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) Affymetrix, Inc. 75819 Clearing solution
Nycodenz Axia-Shield 1002424 nRIMS solution
40% Acrylamide Solution Bio Rad Laboratories, Inc. 161-0140 Polymerization (A4P0)
2,2´-Azobis[2-(2-imidazolin-2-yl)propane] Dihydrochloride Wako Pure Chemical Industries, Ltd. 017-19362 Polymerization (VA-044)
1-Thioglycerol Sigma-Aldrich M1753-100ML Clearing solution (mPACT)
Tween-20 Georgiachem 9005-64-5 nRIMS solution
Triton X-100 Sigma-Aldrich T8787-50ML Immuno Staining
Bovine serum albumin (BSA) Bovogen BSA100 Immuno Staining
Heparin Merck Millipore 375095 Perfusion (PBS)
Sodium azide Sigma-Aldrich S2002-25G nRIMS solution
PECAM-CD31 antibody Santa Cruz Biotechnology Inc. sc-28188 Immuno Staining
Goat anti-rabbit-IgG Cy3 fluorescent conjugate Jackson ImmunoResearch Inc. 111-165-003 Immuno Staining
4% Paraformaldehyde Tech & Innovation BPP-9004 Perfusion, Polymerization
20X Phosphate Buffered Saline (pH 7.4) Tech & Innovation BPB-9121 Perfusion, Buffer
10 mL stripette Coatar 4488 Solution transfer
50 mL tube Falcon 352070 Clearing tube
35 mm Cell culture dish SPL 20035 Imaging
Confocal dish SPL 211350 Imaging
1 mL syringe Korea vaccine Co., Ltd 26G 1/2 Anesthetize 
50 mL syringe Korea vaccine Co., Ltd 21G1 1/4 Perfusion
Acrylamide Sigma-Aldrich A3553 Polymerization (A4P0)
Whatman 3MM paper Sigma-Aldrich Z270849 Blotting paper for gel removal
Confocal microscope Zeiss LSM780 Imaging
ZEN lite Software Zeiss ZEN 2012 Imaging
Peristaltic pump Longerpump BT100-1F Perfusion
EasyGel Lifecanvas Technologies EasyGel Tissue gel hybridization system

References

  1. Zhu, X., Xia, Y., Wang, X., Si, K., Gong, W. Optical brain imaging: A powerful tool for neuroscience. Neurosci Bull. 33 (1), 95-102 (2017).
  2. Chung, K., et al. Structural and molecular interrogation of intact biological systems. Nature. 497 (7449), 332-337 (2013).
  3. Tomer, R., Ye, L., Hsueh, B., Deisseroth, K. Advanced CLARITY for rapid and high-resolution imaging of intact tissues. Nat Protoc. 9 (7), 1682-1697 (2014).
  4. Feng, Y., et al. CLARITY reveals dynamics of ovarian follicular architecture and vasculature in three-dimensions. Sci Rep. 7, 44810 (2017).
  5. Lee, H., Park, J. H., Seo, I., Park, S. H., Kim, S. Improved application of the electrophoretic tissue clearing technology, CLARITY, to intact solid organs including brain, pancreas, liver, kidney, lung, and intestine. BMC Dev Biol. 14, 48 (2014).
  6. Jensen, K. H. R., Berg, R. W. Advances and perspectives in tissue clearing using CLARITY. J Chem Neuroanat. 86, 19-34 (2017).
  7. Treweek, J. B., et al. Whole-body tissue stabilization and selective extractions via tissue-hydrogel hybrids for high-resolution intact circuit mapping and phenotyping. Nat Protoc. 10 (11), 1860-1896 (2015).
  8. Yang, B., et al. Single-cell phenotyping within transparent intact tissue through whole-body clearing. Cell. 158 (4), 945-958 (2014).
  9. Neckel, P. H., Mattheus, U., Hirt, B., Just, L., Mack, A. F. Large-scale tissue clearing (PACT): Technical evaluation and new perspectives in immunofluorescence, histology, and ultrastructure. Sci Rep. 6, 34331 (2016).
  10. Woo, J., Lee, M., Seo, J. M., Park, H. S., Cho, Y. E. Optimization of the optical transparency of rodent tissues by modified PACT-based passive clearing. Exp Mol Med. 48 (12), 274 (2016).
  11. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), (2012).
  12. Roberts, D. G., Johnsonbaugh, H. B., Spence, R. D., MacKenzie-Graham, A. Optical clearing of the mouse central nervous system using passive CLARITY. J Vis Exp. (112), (2016).
  13. Ke, M. T., Fujimoto, S., Imai, T. SeeDB: A simple and morphology-preserving optical clearing agent for neuronal circuit reconstruction. Nat Neurosci. 16 (8), 1154-1161 (2013).
  14. Choi, B. R., et al. Increased expression of the receptor for advanced glycation end products in neurons and astrocytes in a triple transgenic mouse model of Alzheimer’s disease. Exp Mol Med. 46, 75 (2014).
  15. Chang, D. J., et al. Contralaterally transplanted human embryonic stem cell-derived neural precursor cells (ENStem-A) migrate and improve brain functions in stroke-damaged rats. Exp Mol Med. 45, 53 (2013).
  16. Kim, T. K., et al. Analysis of differential plaque depositions in the brains of Tg2576 and Tg-APPswe/PS1dE9 transgenic mouse models of Alzheimer disease. Exp Mol Med. 44 (8), 492-502 (2012).
  17. Kinameri, E., et al. Prdm proto-oncogene transcription factor family expression and interaction with the Notch-Hes pathway in mouse neurogenesis. PLoS One. 3 (12), e3859 (2008).
check_url/kr/57123?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Woo, J., Lee, E. Y., Park, H., Park, J. Y., Cho, Y. E. Novel Passive Clearing Methods for the Rapid Production of Optical Transparency in Whole CNS Tissue. J. Vis. Exp. (135), e57123, doi:10.3791/57123 (2018).

View Video