Summary

הקרנת מבחני עבור הערכה של השפעות על Ca2 +תפוקה בינונית-איתות ותגובה Acrosome זרע אנושי

Published: March 01, 2019
doi:

Summary

הנה, שני מבחני תפוקה בינונית עבור הערכה של השפעות על Ca2 +-התגובה באיתות, acrosome זרע אנושי מתוארים. מבחני אלה יכולים לשמש בקלות ובמהירות מסך כמויות גדולות של תרכובות עבור אפקטים על Ca2 +-התגובה באיתות, acrosome זרע אנושי.

Abstract

Ca2 +-איתות חיונית כדי תפקוד נורמלי תא הזרע ואת פוריות הגבר. באופן דומה, התגובה acrosome חיוני על היכולת של תא זרע אנושי כדי לחדור את pellucida zona להפרות את הביצית. לכן זה עניין רב לבדיקת תרכובות (למשל, כימיקלים סביבתיים או מועמדים סמים) על השפעתם על Ca2 +-התגובה באיתות, acrosome זרע אנושי גם לבחון את ההשפעות השליליות פוטנציאליים על תפקוד תאי זרע אדם או לחקור תפקיד אפשרי כמו מניעה. כאן, מתוארים שני מבחני תפוקה בינונית: 1) מבוסס על-ידי קרינה פלואורסצנטית assay עבור הערכה של השפעות על Ca2 +-איתות זרע אנושי, ואת וזמינותו cytometric 2) על התמונה להערכה של תגובה acrosome זרע אנושי. מבחני אלה יכולים לשמש מסך מספר רב של תרכובות עבור אפקטים על Ca2 +-התגובה באיתות, acrosome זרע אנושי. יתר על כן, מבחני ניתן להשתמש כדי ליצור עקומות מנה-תגובה מאוד ספציפי של תרכובות בודדים, לקבוע additivity/הסינרגטיות פוטנציאליים עבור תרכובות שניים או יותר, וכדי ללמוד את מצב תרופתי של פעולה באמצעות עיכוב תחרותי ניסויים עם מעכבי CatSper.

Introduction

מטרת מבחני שני המתוארים כאן היא לבחון את ההשפעות על Ca2 +-התגובה באיתות, acrosome זרע אנושי, כפי שהוצגה עבור מספר תרכובות מספר פרסומים העסקת אלו מבחני1,2, 3,4,5,6,7. Ca2 +-איתות התגובה acrosome הם פונקציה חיונית לחיי שגרה תא הזרע האנושי והן פוריות הגבר.

המטרה הכוללת של תא זרע אנושי הוא כדי להפרות את הביצית. כדי להיות מסוגל בהצלחה וישר להפרות את הביצית, הפונקציות של תא הזרע חייב להיות מוסדר בחוזקה במהלך המסע של תא הזרע דרך באיברי הרבייה הנקביים8,9. מהפונקציות תא הזרע מוסדרים באמצעות תאיים Ca2 +-ריכוז [Ca2 +]אני (למשל, זרע תנועתיות כימוטקסיס, acrosome התגובה)10. כמו כן, תהליך התבגרות שנקרא capacitation, אשר הופך את תא הזרע מסוגלים להפרות את הביצית, הוא מוסדר באופן חלקי על ידי [Ca2 +]אני10. Ca2 +-הבלטת ממד Ca2 +-ATPase משאבות11 לשמור על קיפול כ 20.000 Ca2 +-מעבר צבע על פני קרום תאי זרע אדם, עם מנוחה [Ca2 +]אני של 50-100 ננומטר. אם Ca2 + מותר לעבור את קרום התא (למשל, דרך הפתח של Ca2 +-ערוצי), זרם גדולה למדי של Ca2 + מתרחשת, והוליד העלאת [Ca2 +]אני. עם זאת, גם נושאת תא הזרע Ca תאיים2 +-חנויות, אשר יכול לשחרר Ca2 + ו, לכן, גם לתת לעלות העלאת [Ca2 +]אני12. מעניין, כל ערוץ בתיווך Ca2 +-זרם בתאי זרע אדם כה נמצאה להתרחש באמצעות CatSper (חתוליוניים ערוץ של Sperm), אשר מתבטאת רק תאי זרע11. בתאי זרע אנושי, CatSper מופעל על ידי ליגנדים אנדוגני פרוגסטרון פרוסטגלנדינים דרך ליגנד ברורים, מחייב אתרי13,14,15, שמוביל מהיר Ca2 +-זרם לתוך תא הזרע. שני מקורות עיקריים ליד הביצה מספקים רמות גבוהות של אלה ליגנדים אנדוגני. אחד הוא נוזל הזקיקים מכיל רמות גבוהות של פרוגסטרון16. הנוזל הזקיקים הוא שוחרר מן בוגרת זקיקים יחד עם הביצה-ביוץ, mixes עם הנוזל בתוך ה-oviducts17. המקור העיקרי הוא תלולית התאים המקיפים את הביצית ולשחרר רמות גבוהות של פרוגסטרון פרוסטגלנדינים. הפרוגסטרון-induced Ca2 +-זרם בתוך תאי הזרע הוכח לתווך כימוטקסיס לקראת9,ביצה18, לשלוט19,תנועתיות הזרע20 ולעורר את acrosome תגובה21. מפעילה של אלה בודדים [Ca2 +]אני-פונקציות זרע מוסדר בסדר הנכון, בזמן הנכון הוא קריטי עבור הפריה של ביצה8. בקו זה, שיוצרת פרוגסטרון-induced Ca2 +-זרם נמצאה שיש לשייך מופחתת פוריות הגבר22,23,24,25,26 ,27,28,29 ו CatSper תפקודית הוא חיוני עבור פוריות הגבר26,30,31,32, 33,34,35,36.

כמו תאי הזרע להגיע הביצה, רצף אירועים חייב להתבצע לדישון להתרחש: 1) תאי הזרע חייב לחדור את שכבת תאים cumulus שמסביב, 2) לאגד zona pellucida, 3) exocytose את התוכן acrosomal, התגובה acrosome כביכול 37, 4) לחדור את zona pellucida, ו- 5) מיזוג עם קרום ביצה כדי להשלים דישון38. כדי להיות מסוגל לעבור את השלבים, להפרות את הביצית, תא זרע קודם לעבור capacitation11, שמתחיל כמו תאי הזרע לעזוב את נוזל הזרע המכיל גורמים “decapacitating”39 לשחות לתוך הנוזלים של הנקבה באיברי הרבייה עם רמות גבוהות של ביקרבונט, אלבומין37. Capacitation מעבד את תאי הזרע יכול לעבור hyperactivation, צורה של תנועתיות עם מכות נמרצת של שוטון, וכן acrosome תגובה37. תנועתיות Hyperactivated נדרש עבור חדירה של40zona pellucida, acrosome מכיל אנזימים hydrolytic שונים לסייע בתהליך זה חדירה41. בנוסף, התגובה acrosome מעבד את תאי הזרע מסוגלים פיוזינג עם הביצה על ידי חשיפת חלבונים ספציפיים קרום על פני הזרע הכרחי עבור זרע-ביצה פיוז’ן42. כתוצאה מכך, יכולת לעבור התגובה hyperactivation ו- acrosome הם שניהם נדרש להפריה מוצלחת של ביצה40,42. בניגוד מה כבר ראיתי עבור העכבר תאי זרע43,44,45, תאי זרע אנושי רק כי הם acrosome-שלם ניתן לאגד zona pellucida46. כאשר תאי הזרע האנושי מאוגדים את pellucida zona להם לעבור את התגובה acrosome לחדור zona pellucida41 והן לחשוף חלבונים ספציפיים ממברנה הנדרשים עבור המיזוג עם ביצה38. העיתוי של התגובה acrosome זרע אנושי ולכן קריטי להפריה להתרחש.

כמתואר לעיל, Ca2 +-מערכת אזעקה היא חיונית עבור זרע נורמלי תא פונקציה8, זה, לכן, עניין רב כדי שניתן יהיה מסך מספר רב של תרכובות עבור אפקטים על Ca2 +-איתות בתאי זרע אדם. באופן דומה, ככל האנושי היחיד תאי הזרע עוברים acrosome התגובה בבית המקום והזמן הנכון יכול לחדור את pellucida zona לדשן את הביצה46,47, זה גם עניין רב כדי שניתן יהיה לבדוק את תרכובות ביכולתם להשפיע על התגובה acrosome זרע אנושי. לשם כך, מתוארים שני תפוקה בינונית מבחני המיון: 1) assay עבור אפקטים על Ca2 +-איתות תאי זרע אנושי, ואת וזמינותו 2) על היכולת לגרום תגובה acrosome תאי זרע אנושי.

Assay 1 הוא בינוני-תפוקה Ca2 +-איתות וזמינותו. טכניקה המבוססת על הקורא צלחת זו קרינה פלואורסצנטית עוקב אחר שינויים בזריחה כפונקציה של הזמן בו זמנית בבארות מרובים. Ca2 +-רגיש הפלורסנט, Fluo-4 ישד K עבור Ca2 +≈ 335 ננומטר הוא תא-permeant בדמות אסתר AM (acetoxymethyl). באמצעות Fluo-4, זה אפשרי למדוד שינויים [Ca2 +]i לאורך זמן, לאחר התוספת של תרכובות לעניין תאי הזרע. וזמינותו פותחה על ידי המעבדה של טימו Strünker 201113 , מאז שימש במספר מחקרים כדי תרכובות מסך עבור אפקטים על Ca2 +-איתות זרע אנושי1,2,3, 4,5. גם שיטה דומה שימש למסך סמים מספר מועמדים48. בנוסף, וזמינותו זו היא שימושית גם עבור הערכת מצב תרופתי של פעולה1,2,3,4,5, עקומות מנה-תגובה1, 2,3,4,5, עיכוב תחרותי1,2, additivity1,2והסינרגטיות3 של תרכובות של עניין.

Assay 2 הוא assay התגובה תפוקה בינונית acrosome. טכניקה זו מבוססת על cytometer התמונה מודדת את הכמות של קיימא acrosome הגיב תאי זרע מדגם, באמצעות שלושה צבעי פלורסנט: propidium יודיד (PI), מצמידים FITC לקטין של אפון השדה (FITC-PSA) ולאחר Hoechst-33342. וזמינותו היה שונה מכל שיטה דומה מבוססי cytometry זרימה על-ידי Zoppino et al.49 , שימש ב מחקרים מספר6,7. באשר Ca2 +-איתות assay, assay התגובה acrosome הזה יכול לשמש גם כדי להעריך עקומות מנה-תגובה, עיכוב, additivity והסינרגטיות של תרכובות של עניין.

Protocol

איסוף וניתוח של דגימות זרע אנושי של הפרוטוקולים עוקב אחר הקווים המנחים של ועדת האתיקה במחקר של אזור הבירה של דנמרק. כל דגימות זרע הושגו אחרי מדעת מתורמים מתנדבים. לאחר הלידה, הדגימות היו מלא תשוחררנה. על הנוחות שלהם כל תורם קיבל תשלום של 500 DKK (בערך $75 דולר ארה ב) עבור כל דגימה. הדגימות היו נות?…

Representative Results

נציג תוצאות ניסוי בדיקת ההשפעה של תרכובות 4 (A, B, C ו- D) יחד עם חיובי (פרוגסטרון) ושליטה שלילי (מאגר) על [Ca2 +]i זרע אנושי באמצעות של תפוקה בינונית Ca2 +-איתות assay ניתן לראות באיור 4a. ב- איור 4b, עקומת תגובת המינון של פרוגסטרון מוצג, אש…

Discussion

התפוקה בינוני Ca2 + איתות assay מבוסס על מדידות של זריחה של יחיד microwells המכיל תאי זרע וכ-250,000. האות שנתפסו בממוצע של כל תאי זרע בודדים בתוך הבאר. וזמינותו ובכך מספק שמידע מרחבי לגבי איפה בפרט תא הזרע [Ca2 +]אני משתנה, כמה גדול שיעור של תאי הזרע בשינוי [Ca2 +]אני לוקח מקום או …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

המחברים רוצה להכיר את המעבדה של טימו Strünker על הפיקוח של AR, הזוהמה שלכם במהלך השהייה שלהם במעבדה שלו. יתר על כן, ברצוננו להודות עמיתינו המחלקה של גדילה, רבייה, בית החולים האוניברסיטאי קופנהגן, Rigshospitalet לסיוע שלהם עם הגדרת מבחני שני אלה. עבודה זו נתמכה על ידי מענקים מדנמרק חדשנות קרן (גרנט מספרים 005-2010-3 ו- 14-2013-4).

Materials

0.2 µm pore filter Thermo Fisher Scientific, USA 296-4545
1 L measuring cylinder Thermo Fisher Scientific, USA 3662-1000
1,4 and 2 mL plastic tubes Eppendorf, Germany 30120086 and 0030120094
12-channel pipette Eppendorf, Germany 4861000813
384 multi-well plates Greiner Bio-One, Germany 781096
15 and 50 mL platic tubes Eppendorf, Germany 0030122151 and 30122178
A2-slide ChemoMetec, Denmark 942-0001
Automatic repeater pipette Eppendorf, Germany 4987000010
CaCl2
Centrifuge
Clean wide-mouthed plastic container for semen sample
Dimethyl sulfoxide (DMSO)
FITC-coupled lectin of Pisum sativum (FITC-PSA) Sigma-Aldrich, Germany L0770
Fluo-4 AM Thermo Fisher Scientific, USA F14201
FLUOstar OMEGA fluorescence microplate reader BMG Labtech, Germany
Glucose anhydrous
HEPES
Hoechst-33342 ChemoMetec, Denmark 910-3015
Human serum albumin (HSA) Irvine Scientific 9988 For addition to HTF+
Immobilizing solution containing 0.6 M NaHCO3 and 0.37% (v/v) formaldehyde in distilled water
Incubator
KCl
KH2PO4
Magnetic stirrer
MgSO4
Na-Lactate
NaCl
NaHCO3
NC-3000 image cytometer ChemoMetec, Denmark 970-3003
Pipettes and piptting tips
propidium iodide (PI) ChemoMetec, Denmark 910-3002
Purified water
Rack for placing 50 mL plastic tubes in 45° angle
S100 buffer ChemoMetec, Denmark 910-0101
SP1-cassette ChemoMetec, Denmark 941-0006
Volumetric flasks of appropriate sizes
Vortexer

References

  1. Schiffer, C., et al. Direct action of endocrine disrupting chemicals on human sperm. EMBO reports. , (2014).
  2. Rehfeld, A., Dissing, S., Skakkebæk, N. E. Chemical UV Filters Mimic the Effect of Progesterone on Ca(2+) Signaling in Human Sperm Cells. Endocrinology. 157 (11), 4297-4308 (2016).
  3. Brenker, C., et al. Synergistic activation of CatSper Ca2+ channels in human sperm by oviductal ligands and endocrine disrupting chemicals. Human Reproduction (Oxford, England). 33 (10), 1915-1923 (2018).
  4. Brenker, C., et al. The CatSper channel: a polymodal chemosensor in human sperm. The EMBO Journal. 31 (7), 1654-1665 (2012).
  5. Brenker, C., et al. Action of steroids and plant triterpenoids on CatSper Ca2+ channels in human sperm. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (3), E344-E346 (2018).
  6. Rehfeld, A., et al. Chemical UV filters can affect human sperm function in a progesterone-like manner. Endocrine Connections. , (2017).
  7. Egeberg Palme, D. L., et al. Viable acrosome-intact human spermatozoa in the ejaculate as a marker of semen quality and fertility status. Human Reproduction. , (2018).
  8. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  9. Publicover, S. J., et al. Ca2+ signalling in the control of motility and guidance in mammalian sperm. Frontiers in Bioscience. 13, 5623-5637 (2008).
  10. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  11. Lishko, P. V., et al. The control of male fertility by spermatozoan ion channels. Annual Review Of Physiology. 74, 453-475 (2012).
  12. Morris, J., et al. Cell-penetrating peptides, targeting the regulation of store-operated channels, slow decay of the progesterone-induced [Ca2+]i signal in human sperm. Molecular Human Reproduction. 21 (7), 563-570 (2015).
  13. Strünker, T., et al. The CatSper channel mediates progesterone-induced Ca2+ influx in human sperm. Nature. 471 (7338), 382-386 (2011).
  14. Lishko, P. V., Botchkina, I. L., Kirichok, Y. Progesterone activates the principal Ca2+ channel of human sperm. Nature. 471 (7338), 387-391 (2011).
  15. Miller, M. R., et al. Unconventional endocannabinoid signaling governs sperm activation via the sex hormone progesterone. Science (New York, N.Y.). 352 (6285), 555-559 (2016).
  16. Revelli, A., et al. Follicular fluid content and oocyte quality: from single biochemical markers to metabolomics. Reproductive Biology And Endocrinology RB&E. 7, 40 (2009).
  17. Lyons, R. A., Saridogan, E., Djahanbakhch, O. The effect of ovarian follicular fluid and peritoneal fluid on Fallopian tube ciliary beat frequency. Human Reproduction. 21 (1), 52-56 (2006).
  18. Eisenbach, M., Giojalas, L. C. Sperm guidance in mammals – an unpaved road to the egg. Nature reviews. Molecular Cell Biology. 7 (4), 276-285 (2006).
  19. Alasmari, W., et al. The clinical significance of calcium-signalling pathways mediating human sperm hyperactivation. Human Reproduction. 28 (4), 866-876 (2013).
  20. Alasmari, W., et al. Ca2+ signals generated by CatSper and Ca2+ stores regulate different behaviors in human sperm. The Journal of Biological Chemistry. 288 (9), 6248-6258 (2013).
  21. Tamburrino, L., et al. The CatSper calcium channel in human sperm: relation with motility and involvement in progesterone-induced acrosome reaction. Human Reproduction. 29 (3), 418-428 (2014).
  22. Krausz, C., et al. Intracellular calcium increase and acrosome reaction in response to progesterone in human spermatozoa are correlated with in-vitro fertilization. Human Reproduction. 10 (1), 120-124 (1995).
  23. Oehninger, S., et al. Defective calcium influx and acrosome reaction (spontaneous and progesterone-induced) in spermatozoa of infertile men with severe teratozoospermia. Fertility and Sterility. 61 (2), 349-354 (1994).
  24. Shimizu, Y., Nord, E. P., Bronson, R. A. Progesterone-evoked increases in sperm [Ca2+]i correlate with the egg penetrating ability of sperm from fertile but not infertile men. Fertility and Sterility. 60 (3), 526-532 (1993).
  25. Falsetti, C., et al. Decreased responsiveness to progesterone of spermatozoa in oligozoospermic patients. Journal of Andrology. 14 (1), 17-22 (1993).
  26. Williams, H. L., et al. Specific loss of CatSper function is sufficient to compromise fertilizing capacity of human spermatozoa. Human Reproduction. 30 (12), 2737-2746 (2015).
  27. Forti, G., et al. Effects of progesterone on human spermatozoa: clinical implications. Annales d’Endocrinologie. 60 (2), 107-110 (1999).
  28. Krausz, C., et al. Two functional assays of sperm responsiveness to progesterone and their predictive values in in-vitro fertilization. Human Reproduction. 11 (8), 1661-1667 (1996).
  29. Kelly, M. C., et al. Single-cell analysis of [Ca2+]i signalling in sub-fertile men: characteristics and relation to fertilization outcome. Human Reproduction. 33 (6), 1023-1033 (2018).
  30. Brown, S. G., et al. Homozygous in-frame deletion in CATSPERE in a man producing spermatozoa with loss of CatSper function and compromised fertilizing capacity. Human Reproduction. 33 (10), 1812-1816 (2018).
  31. Avenarius, M. R., et al. Human male infertility caused by mutations in the CATSPER1 channel protein. American Journal of Human Genetics. 84 (4), 505-510 (2009).
  32. Smith, J. F., et al. Disruption of the principal, progesterone-activated sperm Ca2+ channel in a CatSper2-deficient infertile patient. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (17), 6823-6828 (2013).
  33. Hildebrand, M. S., et al. Genetic male infertility and mutation of CATSPER ion channels. European Journal of Human Genetics. 18 (11), 1178-1184 (2010).
  34. Avidan, N., et al. CATSPER2, a human autosomal nonsyndromic male infertility gene. European Journal of Human Genetic. 11 (7), 497-502 (2003).
  35. Zhang, Y., et al. Sensorineural deafness and male infertility: a contiguous gene deletion syndrome. BMJ Case Reports. 2009, (2009).
  36. Jaiswal, D., Singh, V., Dwivedi, U. S., Trivedi, S., Singh, K. Chromosome microarray analysis: a case report of infertile brothers with CATSPER gene deletion. Gene. 542 (2), 263-265 (2014).
  37. Visconti, P. E., Krapf, D., de la Vega-Beltrán, J. L., Acevedo, J. J., Darszon, A. Ion channels, phosphorylation and mammalian sperm capacitation. Asian Journal of Andrology. 13 (3), 395-405 (2011).
  38. Wassarman, P. M., Jovine, L., Litscher, E. S. A profile of fertilization in mammals. Nature Cell Biology. 3 (2), E59-E64 (2001).
  39. Leahy, T., Gadella, B. M. Sperm surface changes and physiological consequences induced by sperm handling and storage. Reproduction. 142 (6), 759-778 (2011).
  40. Suarez, S. S. Control of hyperactivation in sperm. Human Reproduction Update. 14 (6), 647-657 (2008).
  41. Liu, D. Y., Baker, H. W. Inhibition of acrosin activity with a trypsin inhibitor blocks human sperm penetration of the zona pellucida. Biology of Reproduction. 48 (2), 340-348 (1993).
  42. Okabe, M. The cell biology of mammalian fertilization. Development. 140 (22), 4471-4479 (2013).
  43. Inoue, N., Satouh, Y., Ikawa, M., Okabe, M., Yanagimachi, R. Acrosome-reacted mouse spermatozoa recovered from the perivitelline space can fertilize other eggs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (50), 20008-20011 (2011).
  44. Jin, M., et al. Most fertilizing mouse spermatozoa begin their acrosome reaction before contact with the zona pellucida during in vitro fertilization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (12), 4892-4896 (2011).
  45. Hirohashi, N., Yanagimachi, R. Sperm acrosome reaction: its site and role in fertilization. Biology of Reproduction. 99 (1), 127-133 (2018).
  46. Liu, D. Y., Garrett, C., Baker, H. W. G. Acrosome-reacted human sperm in insemination medium do not bind to the zona pellucida of human oocytes. International Journal of Andrology. 29 (4), 475-481 (2006).
  47. Overstreet, J. W., Hembree, W. C. Penetration of the zona pellucida of nonliving human oocytes by human spermatozoa in vitro. Fertility and Sterility. 27 (7), 815-831 (1976).
  48. Martins da Silva, S. J., et al. Drug discovery for male subfertility using high-throughput screening: a new approach to an unsolved problem. Human Reproduction. , 1-11 (2017).
  49. Zoppino, F. C. M., Halón, N. D., Bustos, M. A., Pavarotti, M. A., Mayorga, L. S. Recording and sorting live human sperm undergoing acrosome reaction. Fertility and Sterility. 97 (6), 1309-1315 (2012).
  50. Mata-Martínez, E., et al. Measuring intracellular Ca2+ changes in human sperm using four techniques: conventional fluorometry, stopped flow fluorometry, flow cytometry and single cell imaging. Journal of Visualized Experiments. (75), e50344 (2013).
  51. Egeberg, D. L., et al. Image cytometer method for automated assessment of human spermatozoa concentration. Andrology. 1 (4), 615-623 (2013).
  52. Nash, K., et al. Techniques for imaging Ca2+ signaling in human sperm. Journal of Visualized Experiments. (40), (2010).

Play Video

Cite This Article
Rehfeld, A., Egeberg Palme, D. L., Almstrup, K., Juul, A., Skakkebaek, N. E. Medium-throughput Screening Assays for Assessment of Effects on Ca2+-Signaling and Acrosome Reaction in Human Sperm. J. Vis. Exp. (145), e59212, doi:10.3791/59212 (2019).

View Video