Summary

Средне-пропускная способность, отбор проб для оценки воздействия на Ca2 +-сигнализации и Акросома реакции в человеческой спермы

Published: March 01, 2019
doi:

Summary

Здесь, две средних-пропускная способность анализов для оценки воздействия на Ca2 +-описаны сигнализации и Акросома реакции в человеческой спермы. Эти анализы могут использоваться для экрана быстро и легко большое количество соединений для воздействия на Ca2 +-сигнализации и Акросома реакции в человеческой спермы.

Abstract

CA2 +-сигнализации имеет важное значение для функции нормальных клеток спермы и мужской фертильности. Аналогично реакция Акросома имеет жизненно важное значение для способности человека сперматозоид проникает вителлинового и оплодотворить яйцеклетку. Именно поэтому представляет большой интерес для проверки соединений (например, экологические химических веществ или наркотиков кандидатов) за их влияние на Ca2 +-сигнализации и Акросома реакции в человеческой спермы либо для изучения потенциального неблагоприятного воздействия на человека сперматозоид функции или для изучения возможной роли в качестве средства контрацепции. Здесь описаны два анализов средне-пропускная способность: 1) на основе флуоресценции assay для оценки воздействия на Ca2 +-сигнализации в человеческой спермы и 2) изображения гранулярных assay для оценки реакции Акросома в человеческой спермы. Эти анализы могут использоваться для экран большое количество соединений для воздействия на Ca2 +-сигнализации и Акросома реакции в человеческой спермы. Кроме того анализов может использоваться для создания узкоспециализированных доза реакция кривых индивидуальных соединений, определить потенциальные аддитивности/синергизм для соединения двух или более и для изучения режима фармакологических действий путем конкурентного ингибирования эксперименты с ингибиторами CatSper.

Introduction

Цель двух анализов, описанные здесь является изучить воздействие на Ca2 +-сигнализации и Акросома реакции в человеческой спермы, как уже было показано для нескольких соединений в ряде публикаций, используя эти assays1,2, 3,4,5,6,7. CA2 +-сигнализации и Акросома реакции являются жизненно важное значение для нормального человека сперматозоид функцию и плодовитость мужчины.

Общая цель клетки спермы человека заключается в том, чтобы оплодотворить яйцеклетку. Чтобы иметь возможность успешно и естественно оплодотворить яйцеклетку, функции клетки спермы должно регулироваться плотно во время путешествия сперматозоид через женского репродуктивного тракта8,9. Многие из функций клеток спермы регулируются через внутриклеточные Ca2 +-концентрация [Ca2 +]я (например, спермы моторики, хемотаксис и Акросома реакции)10. Кроме того процесс созревания, называется капацитации, который оказывает сперматозоид способен подкормки яйцо, это частично регулируется [Ca2 +],я10. CA2 +-экструзия Ca2 +-АТФазы насосы11 поддерживать приблизительно 20.000 раза Ca2 +-градиента над человеческой спермы клеточной мембраны, с отдыха [Ca2 +]я 50-100 Нм. Если Ca2 + разрешается пересекать клеточной мембраны (например, путем открытия Ca2 +-каналы), значительный приток Ca2 + происходит, что приводит к высоте [Ca2 +]я. Однако, также носит сперматозоид внутриклеточных Ca2 +-магазины, которые могут освободить Ca2 + и, таким образом, также дать подняться над уровнем моря [Ca2 +]я12. Интересно, что все канал опосредованной Ca2 +-приток в клетках человека спермы до настоящего времени были найдены происходят через CatSper (Catионный канал Sperm), который только выражается в сперматозоиды11. В клетках человека спермы, CatSper активируется эндогенные лиганды прогестерона и простагландинов через собственный лигандом привязки сайтов13,14,15, приводит к быстрому Ca2 +-приток в сперматозоид. Два основных источника возле яйца обеспечивают высокий уровень эти эндогенные лиганды. Один является фолликулярная жидкость, которая содержит высокий уровень прогестерона16. Фолликулярная жидкость освобождается от зрелых фолликулов вместе с яйцо в овуляции и смешивается с жидкостью в пределах яйцеводов17. Другим основным источником является кучевые клетки, которые окружают яйцо и освободить высокий уровень прогестерона и простагландинов. Прогестерон индуцированной Ca2 +-приток в клетки спермы было показано посредником хемотаксис к яйцо9,18, контролировать19,подвижности сперматозоидов20 и стимулировать Акросома 21реакция. Срабатывание этих отдельных [Ca2 +]я-регулируемые спермы функций в правильном порядке и в нужное время имеет решающее значение для оплодотворения яйцеклетки8. В соответствии с этим, субоптимальный прогестерон индуцированной Ca2 +-приток был найден ассоциируется с снижением мужской фертильности22,23,24,25,26 ,27,,2829 и функциональных CatSper имеет важное значение для мужской плодовитости26,30,,3132, 33,34,35,36.

Как сперматозоиды достигают яйцо, последовательность событий должны иметь место для оплодотворение происходит: 1 клетки спермы должны проникнуть окружающие отель cumulus слоя клеток, 2) привязки к zona pellucida, 3) exocytose акросомной содержание, так называемый Акросома реакции 37, 4) проникают zona pellucida и 5) предохранитель с яйцо мембраны для завершения оплодотворение38. Чтобы иметь возможность пройти через эти шаги и оплодотворить яйцеклетку, сперматозоид должны сначала пройти капацитации11, которая начинается как клетки спермы оставить семенной жидкости, содержащие «decapacitating» факторов39 и плавать в жидкости самка репродуктивного тракта с высоким уровнем бикарбоната и альбумина37. Капацитации выносит сперматозоиды могут пройти гиперактивацию, форма подвижности с энергичной избиение жгутика, и Акросома реакции37. Гиперактивными подвижности требуется для проникновения в zona pellucida40, и Акросома содержит различные гидролитических ферментов, которые помогают этот процесс проникновения41. Кроме того реакция Акросома отрисовывает клетки спермы, способных слияния с яйцом, подвергая конкретных мембранных белков на поверхности сперматозоидов необходимых для спермы яйцо фьюжн42. Следовательно, возможность пройти гиперактивацию и Акросома реакции, так необходимых для успешного оплодотворения яйцеклетки40,42. Вопреки тому, что видел для мыши сперматозоиды43,,4445только человеческие сперматозоиды, которые сохранились Акросома можно привязать к zona pellucida46. Когда человека клетки спермы привязаны к zona pellucida, они должны пройти Акросома реакции как проникнуть вителлинового41 , так и для предоставления конкретных мембранных белков, которые необходимы для синтеза с яйцо38. Таким образом, время реакции Акросома в человеческой спермы имеет решающее значение для оплодотворение произойти.

Как описано выше, Ca2 +-сигнализации имеет жизненно важное значение для нормальной спермы функция8, и это, следовательно, большой интерес для экрана большого числа соединений для воздействия на Ca2 +-сигнализации в человеческих клеток спермы. Точно так же как только человеческие сперматозоиды, которые проходят Акросома реакции в нужное время и место может проникнуть вителлинового и оплодотворить яйца46,47, это также большой интерес, чтобы иметь возможность проверить соединения на их способность влияет на Акросома реакции в человеческой спермы. С этой целью, описаны два скрининга средне-пропускная способность анализов: 1) assay для воздействия на Ca2 +-сигнализации в человеческие сперматозоиды и 2) assay для получения возможности побудить Акросома реакции в человеческих клеток спермы.

Проба 1 является средне-пропускная способность Ca2 +-сигнализации assay. Этот метод на основе чтения флуоресценции пластины отслеживает изменения в флуоресцировании как функцию от времени одновременно в нескольких скважин. Ca2 +-чувствительных Люминесцентную краску, Fluo-4 имеет Kd для Ca2 +≈ 335 Нм и клеток permeant в форме Эстер AM (acetoxymethyl). С помощью флуоресцентного-4, это можно измерить изменения в [Ca2 +]я со временем и после добавления соединений, представляющих интерес для клеток спермы. Проба была разработана лабораторией Timo Strünker в 201113 и с тех пор был использован в нескольких исследованиях на экране соединений для воздействия на Ca2 +-сигнализации в человеческой спермы1,2,3, 4,5. Также подобный метод использовался для экран несколько наркотиков кандидатов48. Кроме того этот assay также полезна для оценки режима фармакологических действий1,2,3,4,5,, доза реакция кривых1 2,3,4,5, конкурентного ингибирования1,2, аддитивности1,2и3 синергизм соединений, представляющих интерес.

Проба 2 относится средне-пропускная способность Акросома реакции. Этот метод на основе цитометр изображения измеряет количество жизнеспособных отреагировали Акросома сперматозоидов в выборке, используя три Краски люминесцентные, флуоресцентные: пропидий йодидом (PI), FITC-сочетании Лектин Pisum sativum (FITC-PSA) и Hoechst 33342. Проба была изменена от аналогичного метода на основе цитометрии потока Zoppino et al.49 и был использован в нескольких исследованиях6,7. Что касается Ca2 +-сигнализации пробирного, этот assay Акросома реакция может также использоваться для оценки доза реакция кривых, ингибирование, аддитивности и синергизм соединений, представляющих интерес.

Protocol

Сбор и анализ образцов человеческой спермы в протоколах соответствует руководящим принципам Комитета по этике исследований столицы региона Дании. Все образцы спермы были получены после информированного согласия от безвозмездных доноров. После родов образцы были полностью анонимным…

Representative Results

Представитель результаты эксперимента, тестирование эффект 4 соединений (A, B, C и D) вместе с положительным (Прогестерон) и отрицательной (буфер) управления на [Ca2 +]я в человеческой спермы с использованием средне-пропускная способность Ca2 +-сигнализации п…

Discussion

Средняя пропускная способность Ca2 + сигнализации что проба основана на измерениях флуоресценции от одного microwells содержит около 250.000 клеток спермы. В среднем захваченного сигнала от всех отдельных клеток спермы в колодец. Assay таким образом обеспечивает что никакой пространственно…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Авторы хотели бы признать лаборатории Timo Strünker по надзору за AR и DLE во время их пребывания в его лаборатории. Кроме того мы хотели бы поблагодарить наших коллег в Департаменте рост и размножение, Копенгагенской университетской больницы, Rigshospitalet за их помощь в создании этих двух анализов. Эта работа была поддержана субсидии от Дании инновационный фонд (Грант № 005-2010-3 и 14-2013-4).

Materials

0.2 µm pore filter Thermo Fisher Scientific, USA 296-4545
1 L measuring cylinder Thermo Fisher Scientific, USA 3662-1000
1,4 and 2 mL plastic tubes Eppendorf, Germany 30120086 and 0030120094
12-channel pipette Eppendorf, Germany 4861000813
384 multi-well plates Greiner Bio-One, Germany 781096
15 and 50 mL platic tubes Eppendorf, Germany 0030122151 and 30122178
A2-slide ChemoMetec, Denmark 942-0001
Automatic repeater pipette Eppendorf, Germany 4987000010
CaCl2
Centrifuge
Clean wide-mouthed plastic container for semen sample
Dimethyl sulfoxide (DMSO)
FITC-coupled lectin of Pisum sativum (FITC-PSA) Sigma-Aldrich, Germany L0770
Fluo-4 AM Thermo Fisher Scientific, USA F14201
FLUOstar OMEGA fluorescence microplate reader BMG Labtech, Germany
Glucose anhydrous
HEPES
Hoechst-33342 ChemoMetec, Denmark 910-3015
Human serum albumin (HSA) Irvine Scientific 9988 For addition to HTF+
Immobilizing solution containing 0.6 M NaHCO3 and 0.37% (v/v) formaldehyde in distilled water
Incubator
KCl
KH2PO4
Magnetic stirrer
MgSO4
Na-Lactate
NaCl
NaHCO3
NC-3000 image cytometer ChemoMetec, Denmark 970-3003
Pipettes and piptting tips
propidium iodide (PI) ChemoMetec, Denmark 910-3002
Purified water
Rack for placing 50 mL plastic tubes in 45° angle
S100 buffer ChemoMetec, Denmark 910-0101
SP1-cassette ChemoMetec, Denmark 941-0006
Volumetric flasks of appropriate sizes
Vortexer

References

  1. Schiffer, C., et al. Direct action of endocrine disrupting chemicals on human sperm. EMBO reports. , (2014).
  2. Rehfeld, A., Dissing, S., Skakkebæk, N. E. Chemical UV Filters Mimic the Effect of Progesterone on Ca(2+) Signaling in Human Sperm Cells. Endocrinology. 157 (11), 4297-4308 (2016).
  3. Brenker, C., et al. Synergistic activation of CatSper Ca2+ channels in human sperm by oviductal ligands and endocrine disrupting chemicals. Human Reproduction (Oxford, England). 33 (10), 1915-1923 (2018).
  4. Brenker, C., et al. The CatSper channel: a polymodal chemosensor in human sperm. The EMBO Journal. 31 (7), 1654-1665 (2012).
  5. Brenker, C., et al. Action of steroids and plant triterpenoids on CatSper Ca2+ channels in human sperm. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 115 (3), E344-E346 (2018).
  6. Rehfeld, A., et al. Chemical UV filters can affect human sperm function in a progesterone-like manner. Endocrine Connections. , (2017).
  7. Egeberg Palme, D. L., et al. Viable acrosome-intact human spermatozoa in the ejaculate as a marker of semen quality and fertility status. Human Reproduction. , (2018).
  8. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  9. Publicover, S. J., et al. Ca2+ signalling in the control of motility and guidance in mammalian sperm. Frontiers in Bioscience. 13, 5623-5637 (2008).
  10. Publicover, S., Harper, C. V., Barratt, C. [Ca2+]i signalling in sperm–making the most of what you’ve got. Nature Cell Biology. 9 (3), 235-242 (2007).
  11. Lishko, P. V., et al. The control of male fertility by spermatozoan ion channels. Annual Review Of Physiology. 74, 453-475 (2012).
  12. Morris, J., et al. Cell-penetrating peptides, targeting the regulation of store-operated channels, slow decay of the progesterone-induced [Ca2+]i signal in human sperm. Molecular Human Reproduction. 21 (7), 563-570 (2015).
  13. Strünker, T., et al. The CatSper channel mediates progesterone-induced Ca2+ influx in human sperm. Nature. 471 (7338), 382-386 (2011).
  14. Lishko, P. V., Botchkina, I. L., Kirichok, Y. Progesterone activates the principal Ca2+ channel of human sperm. Nature. 471 (7338), 387-391 (2011).
  15. Miller, M. R., et al. Unconventional endocannabinoid signaling governs sperm activation via the sex hormone progesterone. Science (New York, N.Y.). 352 (6285), 555-559 (2016).
  16. Revelli, A., et al. Follicular fluid content and oocyte quality: from single biochemical markers to metabolomics. Reproductive Biology And Endocrinology RB&E. 7, 40 (2009).
  17. Lyons, R. A., Saridogan, E., Djahanbakhch, O. The effect of ovarian follicular fluid and peritoneal fluid on Fallopian tube ciliary beat frequency. Human Reproduction. 21 (1), 52-56 (2006).
  18. Eisenbach, M., Giojalas, L. C. Sperm guidance in mammals – an unpaved road to the egg. Nature reviews. Molecular Cell Biology. 7 (4), 276-285 (2006).
  19. Alasmari, W., et al. The clinical significance of calcium-signalling pathways mediating human sperm hyperactivation. Human Reproduction. 28 (4), 866-876 (2013).
  20. Alasmari, W., et al. Ca2+ signals generated by CatSper and Ca2+ stores regulate different behaviors in human sperm. The Journal of Biological Chemistry. 288 (9), 6248-6258 (2013).
  21. Tamburrino, L., et al. The CatSper calcium channel in human sperm: relation with motility and involvement in progesterone-induced acrosome reaction. Human Reproduction. 29 (3), 418-428 (2014).
  22. Krausz, C., et al. Intracellular calcium increase and acrosome reaction in response to progesterone in human spermatozoa are correlated with in-vitro fertilization. Human Reproduction. 10 (1), 120-124 (1995).
  23. Oehninger, S., et al. Defective calcium influx and acrosome reaction (spontaneous and progesterone-induced) in spermatozoa of infertile men with severe teratozoospermia. Fertility and Sterility. 61 (2), 349-354 (1994).
  24. Shimizu, Y., Nord, E. P., Bronson, R. A. Progesterone-evoked increases in sperm [Ca2+]i correlate with the egg penetrating ability of sperm from fertile but not infertile men. Fertility and Sterility. 60 (3), 526-532 (1993).
  25. Falsetti, C., et al. Decreased responsiveness to progesterone of spermatozoa in oligozoospermic patients. Journal of Andrology. 14 (1), 17-22 (1993).
  26. Williams, H. L., et al. Specific loss of CatSper function is sufficient to compromise fertilizing capacity of human spermatozoa. Human Reproduction. 30 (12), 2737-2746 (2015).
  27. Forti, G., et al. Effects of progesterone on human spermatozoa: clinical implications. Annales d’Endocrinologie. 60 (2), 107-110 (1999).
  28. Krausz, C., et al. Two functional assays of sperm responsiveness to progesterone and their predictive values in in-vitro fertilization. Human Reproduction. 11 (8), 1661-1667 (1996).
  29. Kelly, M. C., et al. Single-cell analysis of [Ca2+]i signalling in sub-fertile men: characteristics and relation to fertilization outcome. Human Reproduction. 33 (6), 1023-1033 (2018).
  30. Brown, S. G., et al. Homozygous in-frame deletion in CATSPERE in a man producing spermatozoa with loss of CatSper function and compromised fertilizing capacity. Human Reproduction. 33 (10), 1812-1816 (2018).
  31. Avenarius, M. R., et al. Human male infertility caused by mutations in the CATSPER1 channel protein. American Journal of Human Genetics. 84 (4), 505-510 (2009).
  32. Smith, J. F., et al. Disruption of the principal, progesterone-activated sperm Ca2+ channel in a CatSper2-deficient infertile patient. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (17), 6823-6828 (2013).
  33. Hildebrand, M. S., et al. Genetic male infertility and mutation of CATSPER ion channels. European Journal of Human Genetics. 18 (11), 1178-1184 (2010).
  34. Avidan, N., et al. CATSPER2, a human autosomal nonsyndromic male infertility gene. European Journal of Human Genetic. 11 (7), 497-502 (2003).
  35. Zhang, Y., et al. Sensorineural deafness and male infertility: a contiguous gene deletion syndrome. BMJ Case Reports. 2009, (2009).
  36. Jaiswal, D., Singh, V., Dwivedi, U. S., Trivedi, S., Singh, K. Chromosome microarray analysis: a case report of infertile brothers with CATSPER gene deletion. Gene. 542 (2), 263-265 (2014).
  37. Visconti, P. E., Krapf, D., de la Vega-Beltrán, J. L., Acevedo, J. J., Darszon, A. Ion channels, phosphorylation and mammalian sperm capacitation. Asian Journal of Andrology. 13 (3), 395-405 (2011).
  38. Wassarman, P. M., Jovine, L., Litscher, E. S. A profile of fertilization in mammals. Nature Cell Biology. 3 (2), E59-E64 (2001).
  39. Leahy, T., Gadella, B. M. Sperm surface changes and physiological consequences induced by sperm handling and storage. Reproduction. 142 (6), 759-778 (2011).
  40. Suarez, S. S. Control of hyperactivation in sperm. Human Reproduction Update. 14 (6), 647-657 (2008).
  41. Liu, D. Y., Baker, H. W. Inhibition of acrosin activity with a trypsin inhibitor blocks human sperm penetration of the zona pellucida. Biology of Reproduction. 48 (2), 340-348 (1993).
  42. Okabe, M. The cell biology of mammalian fertilization. Development. 140 (22), 4471-4479 (2013).
  43. Inoue, N., Satouh, Y., Ikawa, M., Okabe, M., Yanagimachi, R. Acrosome-reacted mouse spermatozoa recovered from the perivitelline space can fertilize other eggs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (50), 20008-20011 (2011).
  44. Jin, M., et al. Most fertilizing mouse spermatozoa begin their acrosome reaction before contact with the zona pellucida during in vitro fertilization. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (12), 4892-4896 (2011).
  45. Hirohashi, N., Yanagimachi, R. Sperm acrosome reaction: its site and role in fertilization. Biology of Reproduction. 99 (1), 127-133 (2018).
  46. Liu, D. Y., Garrett, C., Baker, H. W. G. Acrosome-reacted human sperm in insemination medium do not bind to the zona pellucida of human oocytes. International Journal of Andrology. 29 (4), 475-481 (2006).
  47. Overstreet, J. W., Hembree, W. C. Penetration of the zona pellucida of nonliving human oocytes by human spermatozoa in vitro. Fertility and Sterility. 27 (7), 815-831 (1976).
  48. Martins da Silva, S. J., et al. Drug discovery for male subfertility using high-throughput screening: a new approach to an unsolved problem. Human Reproduction. , 1-11 (2017).
  49. Zoppino, F. C. M., Halón, N. D., Bustos, M. A., Pavarotti, M. A., Mayorga, L. S. Recording and sorting live human sperm undergoing acrosome reaction. Fertility and Sterility. 97 (6), 1309-1315 (2012).
  50. Mata-Martínez, E., et al. Measuring intracellular Ca2+ changes in human sperm using four techniques: conventional fluorometry, stopped flow fluorometry, flow cytometry and single cell imaging. Journal of Visualized Experiments. (75), e50344 (2013).
  51. Egeberg, D. L., et al. Image cytometer method for automated assessment of human spermatozoa concentration. Andrology. 1 (4), 615-623 (2013).
  52. Nash, K., et al. Techniques for imaging Ca2+ signaling in human sperm. Journal of Visualized Experiments. (40), (2010).

Play Video

Cite This Article
Rehfeld, A., Egeberg Palme, D. L., Almstrup, K., Juul, A., Skakkebaek, N. E. Medium-throughput Screening Assays for Assessment of Effects on Ca2+-Signaling and Acrosome Reaction in Human Sperm. J. Vis. Exp. (145), e59212, doi:10.3791/59212 (2019).

View Video