Summary
このプロトコルでは、CRISPR-Casを介した多検体合成尿バイオマーカー検査について説明しており、腫瘍関連プロテアーゼ活性のex vivo分析を通じてポイントオブケアがん診断を可能にします。
Abstract
精密診断の開発のための合成バイオマーカーの作成により、従来の生体液測定に使用される経路を超えた経路で疾患を検出できるようになりました。合成バイオマーカーは、一般に、疾患の発生率および進行中の局所疾患微小環境における生化学的変化を反映するために、生体液中に読み取り可能なシグナルを提供するレポーターを利用します。レポーターの薬物動態濃度と疾患シグナルの生化学的増幅は、診断検査で高い感度と特異性を達成するために最も重要です。ここでは、がん診断プラットフォームが、合成バイオマーカーの1つのフォーマット、つまり、腫瘍微小環境における異常なタンパク質分解シグネチャーによって解放される化学的に安定化されたDNAレポーターを運ぶ活性ベースのナノセンサーを使用して構築されています。疾患レポーターとしての合成DNAは、バーコードとして使用することでマルチプレックス化が可能で、複数のタンパク質分解シグネチャーを一度に読み取ることができます。尿中に放出されたDNAレポーターは、CRISPR RNAとのハイブリダイゼーションを介してCRISPRヌクレアーゼを使用して検出され、酵素の活性化時に蛍光または比色シグナルを生成します。このプロトコルでは、DNAバーコード化された活動ベースのナノセンサーが構築され、その応用は転移性結腸直腸癌の前臨床マウスモデルで例証されます。このシステムは、疾患の生物学的特性に応じて高度に修正可能であり、複数の疾患シグナルを同時に生成するため、ナノセンサーの投与、採尿、およびポイントオブケア診断を可能にする紙の検査のみを必要とする低侵襲プロセスを通じて、疾患特性を包括的に理解することができます。
Introduction
脱落したタンパク質やDNAなどの腫瘍バイオマーカーを特定するための多大な努力にもかかわらず、がん診断分野は、それらの存在量が少ないか、循環中で急速に分解されるため、逼迫してきました1。補完的な戦略として、疾患の特徴に選択的に応答して増幅されたシグナルを生成するバイオエンジニアリング合成バイオマーカーは、正確でアクセスしやすい診断への新しい道を示しています2,3。検出を支援するために、これらの合成バイオマーカーは、酵素増幅などの腫瘍依存的な活性化メカニズムを利用して、S/N比が向上した分析種を生成します4。本明細書では、癌関連酵素の一種であるプロテアーゼを利用して、注射可能なナノスケールセンサーを活性化し、血液や尿などの体液から検出可能な疾患レポーターを放出します5,6。腫瘍の不均一性に照らして、プロテアーゼ活性化センサーのパネルを開発することで、さまざまなプロテアーゼ切断イベントを「疾患シグネチャー」に組み合わせて、より特異的で多重化された方法でがんの発生率と進行を評価する多検体検査が可能になります。
プロテアーゼ活性化合成バイオマーカーは、不活性担体の表面に結合したペプチド基質を含む7。in vivoで注射すると、これらのペプチドは腫瘍に運ばれ、腫瘍プロテアーゼによる酵素切断により、レポーターが血液または尿中に放出され、検出されます。プロテアーゼ活性化合成バイオマーカーによるマルチプレックス検出では、カクテル内の各合成バイオマーカーに固有の分子バーコードで標識する必要があります。この目的のために、マスバーコードやリガンドコードレポーター8,9,10など、さまざまなアプローチが開発されてきました。これらのマルチプレックス法は、少数の異なるシグナルの可能性に限定される可能性があり、DNAバーコーディングは、ヒトの疾患状態の高い複雑さと不均一性に応じて、より多くの組み合わせを提供します。合成バイオマーカーのマルチプレックス性を高めるため、センサーは、CRISPR-Casヌクレアーゼを介して検出するための固有のDNA配列で各レポーターを標識し、生体外で生体流体シグナルを増幅することでバーコード化されます。これらの一本鎖DNA(ssDNA)バーコードは、相補的なCRISPRガイドRNA(crRNA)に結合し、CRISPR-Cas12aの標的トリガーコラテラルヌクレアーゼ活性を活性化するように設計されています11。このヌクレアーゼ活性を利用して、蛍光速度論または紙片を用いて検出したレポーターDNA鎖を切断することができます。
プロテアーゼ(in vivo)およびCRISPR-Cas(ex vivo)による分子増幅に加えて、プロテアーゼ活性化合成バイオマーカーのもう1つの重要な設計上の特徴は、ナノ材料の薬物動態を利用して生体液中の診断シグナル濃度を高めることです10。1つのアプローチは、表面結合ペプチド基質の循環時間を長くするためのナノ粒子担体の使用です。ポリエチレングリコール(PEG)デンドリマーは、比較的小さな流体力学的直径と多価性を持つナノキャリアとして選択され、腫瘍への送達を増加させます。PEGキャリアのサイズは、腫瘍送達を促進するのに十分な大きさであるが、腎臓糸球体濾過バリアの~5 nmサイズのカットオフよりも大きいため、腎臓によるサイズ濾過を利用して、切断されたペプチド基質のみが尿中に除去される可能性がある12。このプロトコルでは、前臨床マウスモデルにおけるDNAバーコード付き活性ベースのナノセンサーの合成と応用のための多段階のワークフローが概説されており、CRISPR-Casを介した多分析物合成尿バイオマーカー検査のセットアップを強調しています 複数の癌タイプのマウスモデルの疾患状態を分類するためにこのグループによって採用されています13.汎用性の高い設計原理により、ナノセンサーの3つの機能コンポーネント(ナノキャリア(PEGポリマー)、刺激応答性モジュール(プロテアーゼ活性化基質)、生体流体レポーター(DNAバーコード))すべてをアプリケーション固有のニーズに応じて正確に交換でき、ターゲットと放出の特異性を調整することでモジュール化が可能になります。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Protocol
すべての動物実験は、著者の施設の動物管理および使用委員会(IACUC)によって承認されています。これらの実験を適切に実施するには、飼育室、滅菌フード、麻酔、倫理的エンドポイントの安楽死などの標準的な動物飼育施設が必要です。すべての実験は、施設および国のガイドラインに準拠して実施され、施設の獣医師スタッフによって監督されます。実験に使用した雌のBALB/cマウスは、市販の供給源( 資料表を参照)から入手し、研究開始時の年齢は6〜8週間でした。カスタム合成DNA、crRNA、FRETベースのペプチド基質プローブ、およびセンサーペプチドの配列を 補足表1に示します。
1. プロテアーゼ活性化ペプチド基質の選択
- 以前に公開されたレポート13に従って、健康な肺または腫瘍結節のある肺組織から組織サンプルを収集して準備します。
- 組織を単細胞懸濁液に自動解離するために、組織解離チューブを使用して、事前に冷却したリン酸緩衝生理食塩水(PBS、pH 7.4)(200 mg 組織/mL PBS)で組織をホモジナイズします。
- 遠心分離機は、6,000 x g で4°Cで5分間組織をホモジネートします。 上清を新しいチューブに保持します。
- 上清を14,000 x g で4°Cで25分間遠心分離します。
- ビシンコニン酸(BCA)タンパク質アッセイキット( 材料表を参照)を使用してタンパク質濃度を測定します。
- サンプルにPBSを添加し、0.33 mg/mL溶液を調製します。
- 以下の手順に従ってタンパク質分解活性を評価します。
- 384ウェルプレートで、5 μL、6 μMのFRETベースのペプチド基質プローブを各ウェルに加えます。各プローブについて、3回に分けて反応を行います。
注:FRETベースのペプチド基質プローブには、蛍光色素とクエンチャーのペアで終端された短いペプチド配列(ターゲットプロテアーゼまたはプロテアーゼのグループに特異的に設計された6〜8アミノ酸)が含まれています。2つのFRETプローブを例として補足 表1 に記載する。プローブの完全なライブラリは、Hao et al. にあります。13. - ウェルプレートを室温で180 x g で10秒間遠心分離し、プローブがプレートの底にあることを確認します。
- 25 μL、0.33 mg/mLの組織サンプルまたは40 μMの組換えプロテアーゼ13 を各ウェルに加えます。
注:組織サンプルまたは組換えプロテアーゼの最終濃度は、それらの固有のタンパク質分解活性に応じて最適化する必要がある場合があります。例えば、腸などのタンパク質分解性の高い組織では、初期の酵素切断のモニタリングを可能にするために、より高い希釈係数が必要になる場合があります。 - ウェルプレートを180 x g (室温)で短時間遠心分離し、プローブと組織溶解物を混合します。
- プレートリーダーで37°Cの蛍光を2分ごとに1時間測定し(λ例:485 nm、λem:535 nm)、切断をモニターすることにより、プローブ切断の検出を直ちに開始します。
注:特定の蛍光色素とクエンチャーのペアには、適切な励起波長と発光波長を使用してください。この試験では、FAM蛍光色素のパラメータ(λex: 485 nmおよびλem: 535 nm)を設定しています。 - 蛍光測定データを解析するには、Python( 材料表を参照)パッケージを利用して、https://github.com/nharzallah/NNanotech-Kinetic で入手可能な酵素動態解析を行います。このスクリプトは、最初の 8 から 10 個の初期時点の線形近似の傾きを使用して、初期反応速度 (V0) を計算します。
- 384ウェルプレートで、5 μL、6 μMのFRETベースのペプチド基質プローブを各ウェルに加えます。各プローブについて、3回に分けて反応を行います。
2. センサの定式化と特性評価
- DNAとプロテアーゼ活性化ペプチド(PAP)のコンジュゲートを合成します。
- 20 mer のホスホロチオエート化 DNA レポーターを 3'-DBCO 基(1.1 式、 材料表を参照)とアジド末端 PAP と C 末端システイン末端の 100 mM リン酸緩衝液(pH 7.0)中で室温で >4 時間インキュベートします。一晩放置する場合は、4°Cでインキュベートします。
- 生体分子に最適なカラムを備えた高速液体クロマトグラフィー(HPLC)システムで製品を精製します( 材料表を参照)。HPLC グラジエントを 5% A バッファー(0.05% TFA in H2O)から開始し、アイソクラティックを 20 分間保持し、流速 0.3 mL min-1 で 65 分間で 80% B バッファー(0.05% TFA、99.95% アセトニトリル)に達するように設定し、保持時間 ~31 分でコンジュゲート生成物を回収します。
- α-シアノ-4-ヒドロキシ桂皮酸をマトリックス14として使用し、マトリックス支援レーザー脱離/イオン化飛行時間(MALDI-TOF)質量分析により、精製されたコンジュゲートを検証します( 材料表を参照)。
- DNAにコードされた活性ベースのナノセンサーを合成します。
- マレイミド反応性基を含む多価PEG(40 kDa、8アーム、 材料表を参照)2 mgを1 mLの100 mMリン酸緩衝液(pH 7.0)およびフィルター(カットオフ:0.2 μm)に溶解します。
- システイン末端DNA-ペプチド複合体(2式、 材料表を参照)をPEGに添加し、室温で>4時間反応させます。一晩放置する場合は、4°Cでインキュベートします。
- 高速タンパク質液体クロマトグラフィー(FPLC)で市販のデキストラン-アガロース複合マトリックスカラムを用いたサイズ排除クロマトグラフィーを使用して、非標識物質を除去します( 材料表を参照)。PBSでサンプルを分析、DNAの場合は260 nm、ペプチドの場合は280 nmの吸光度をモニターします。
- 合成したナノセンサーを遠心フィルターチューブ(MWCO = 10 kDa)でメーカーの推奨速度に従って濃縮します( 材料表を参照)。
- ssDNAアッセイキット( 材料表を参照)とプレートリーダー(λex:485 nmおよびλem:535 nm)を使用して、DNAの濃度を定量します。ナノセンサーは4°Cで保管してください。
- DNAにコードされた活性ベースのナノセンサーの特性評価
- 動的光散乱(DLS)により、DNAにコードされたナノセンサーの流体力学的粒子径を測定します。
注:ナノセンサーの予想されるサイズ範囲は15〜50nmで、平均サイズは20〜30nmです。限られたサイズ範囲が必要な場合は、FPLC(ステップ2.3)を使用して、分子量の異なるより狭いフラクションを単離できます。 - 遠心フィルターチューブ(MWCO = 10 kDa)でナノセンサーを0.5 mg/mL(DNA濃度)に濃縮し、クライオホルダーに取り付けられた炭素膜コーティングされた銅グリッドにサンプルをロードします。極低温透過型電子顕微鏡(200 kV、倍率10,000-60,000)14を使用して形態を観察します。
- 動的光散乱(DLS)により、DNAにコードされたナノセンサーの流体力学的粒子径を測定します。
3.センサー注入と採尿
- ベースライン測定のために尿を収集します。
- マウスを、96ウェルプレートをベースにしたカスタムハウジングチャンバー( 補足図1を参照)に入れます。
- マウスを拘束し、膀胱に穏やかな圧力をかけて、プレートに残っている尿を排します。.
- マウスを通常のハウジングに交換した後、96ウェルプレートから採取した尿(~100-200 μL)を1.5 mLチューブにピペットで移します。
- 前臨床マウス腫瘍モデルを確立する。
- 6〜8週齢のBALB/c雌マウスに、ルシフェラーゼ発現MC26-Fluc細胞株(100k細胞/マウス)を静脈内注射で接種します( 資料表参照)。 in vivo 蛍光イメージングシステムを使用して、腫瘍の進行を毎週監視します。
注:発光シグナルによって示される目に見える腫瘍量は、この特定の細胞株の注射の約2週目に発生します。腫瘍の進行中に腫瘍を持つ動物を定期的に注意深くチェックしてください。
- 6〜8週齢のBALB/c雌マウスに、ルシフェラーゼ発現MC26-Fluc細胞株(100k細胞/マウス)を静脈内注射で接種します( 資料表参照)。 in vivo 蛍光イメージングシステムを使用して、腫瘍の進行を毎週監視します。
- 腫瘍移植後のさまざまな時点でナノセンサーを注入します。
- 滅菌PBS中のDNAバーコードにより、1nmolの濃度のナノセンサーを含む注入溶液(最大容量200μL)を調製します。
- PBSに200 μLのセンサー溶液を各実験マウスに静脈内注射します。
- ステップ1.1〜1.3の説明に従って、センサー注入の1時間後に健康な対照マウスおよび腫瘍担持マウスから尿サンプルを採取します。
注:新鮮な尿サンプルは、DNAバーコード分析に直接処理することも、氷上ですぐに凍結することもできます。
4. DNAバーコードのCRISPR検出:蛍光ベース
- 新鮮な尿サンプルを使用するか、凍結したサンプルを氷上で解凍します。尿サンプルを室温で800 x g で5分間遠心分離します。
- 付表2の試薬を合わせ、最後にCas12a酵素(材料表参照)を添加し、ピペッティングで上下させて反応液を静かに混合します。反応液を37°Cで30分間インキュベートします。
- 補足表3に示すように、ステップ2の生成物を用いてレポーター反応を3回に分けて実行する。ステップ2の反応を最後に追加し、プレートリーダーにすばやく持っていきます。
- プレートリーダーで37°Cの蛍光を2分ごとに3時間測定し(λ例:485 nm、λ例:535 nm)、DNAレポーターの切断速度をモニターすることにより、LbaCas12aの活性化を検出します。
- 蛍光測定データを解析するには、https://github.com/nharzallah/NNanotech-Kinetic で入手可能な酵素動態解析用のPythonパッケージを利用します。このスクリプトは、最初の 8 から 10 個の初期時点の線形近似の傾きを使用して、初期反応速度 (V0) を計算します。
5. DNAバーコードのCRISPR検出:紙ベース
- 尿サンプルを室温で800 x g で5分間遠心分離します。
注:蛍光ベースのCRISPR検出と紙ベースのCRISPR検出のために、尿サンプルを並行して分析します。 - 付表2の試薬を併用する。37°Cで30分間インキュベートします。
注:このインキュベーションステップは、蛍光ベースのCRISPR検出のインキュベーションステップと同じです。 - 紙片上でラテラルフローアッセイ用のFAM-ビオチン標識DNAレポーターを使用してレポーター反応を実行します( 材料表を参照)。補足 表4 の試薬をステップ2の生成物を用いて96ウェルプレートに混合する。アルミホイルで覆い、37°Cで1時間インキュベートします。
注:上記の蛍光ベースのCRISPR検出アッセイにおけるリアルタイム動態モニタリングに従って、最適なインキュベーション時間を選択してください。 - 96ウェルプレートのフレッシュウェルに、80 μLのPBSを添加します。ステップ3のサンプル20 μLをこのウェルに加えます。
- 各ウェルにラテラルフローペーパーストリップを1枚ずつ置き、液体がストリップの上部に到達するまで待ちます(<5分)。用紙ストリップ上のコントロールバンドやサンプルバンドの外観を確認します。
- ラテラルフローストリップの画像を撮影し、ImageJ を使用してバンド強度を定量化します。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Representative Results
プロテアーゼ活性化ペプチド基質の指名
組織のタンパク質分解活性の変化を反映するセンサーを設計するために、まずペプチドプローブ13 のライブラリを使用して組織内のプロテアーゼ活性を特徴付けます(図1)。新鮮および凍結組織サンプルは、組織サンプルと基質切断を検出するように設計されたFRETプローブを組み合わせることにより、腫瘍微小環境のタンパク質分解活性に関する実質的な情報を提供することができます。FAM蛍光色素とCPQ-2クエンチャーを備えたFRETプローブのライブラリを組織サンプルとインキュベートします。蛍光分光光度法で測定した、偽組織と腫瘍組織の切断速度の差が最も大きいプローブを、 in vivo ナノセンサーで使用するペプチドリンカーとして選択します(図1A)。腫瘍環境の生理機能をよりよく理解し、プロテアーゼ発現プロファイルと活性プロファイルを効果的に比較するために、FRETプローブを組換えプロテアーゼとインキュベートして、基質切断を特定のプロテアーゼ活性に関連付けることができます( 図1Bの2つのプローブ例で実証)。
センサーの定式化と特性評価
ナノセンサーは、 図2Aに示すように、ポリマーコア、ペプチド、および一本鎖DNAバーコードで構成されています。ポリマーコアは40 kDaのPEGデンドリマーで、最大8個のペプチド-DNAコンジュゲートのキャリアとして機能します(図2B)。ペプチド(~1.4 kDa)は、タンパク質分解活性によって切断されるように設計されたアミノ酸配列でコアとDNAを結合します。一本鎖DNAバーコードは、長さが20塩基対(~6.8 kDa)で、 in vivoでの安定性を向上させるために化学修飾されています。結合後、ペプチド-DNAコンストラクトをHPLC で 精製し、結合成分と遊離成分を分離します(図2C)。質量分析の結果、コンジュゲートの分子量は 8.283 kDa であることが示されており、ペプチドと DNA バーコードの構成分子量がそれぞれ 1.4 kDa と 6.8 kDaであることから、このことが予想されます。ペプチド-DNAコンジュゲートは、さらにPEGデンドリマーに結合します。得られたセンサーをFPLCで精製し、PEG化センサーと比較して保持時間が長い遊離ペプチドDNAを除去します(図2D)。センサーのサイズは、動的光散乱と極低温透過電子顕微鏡 法によって 特徴付けることができ、ペプチドDNAをコアに添加した後、直径が~8 nmから~20 nmに増加したことが示されています(図2B)。粒子径のばらつきは、構成鎖の柔軟性と、各PEGデンドリマーに結合したペプチド-DNAアームの数が変化していることに起因している可能性があります。
前臨床マウス疾患モデル
センサーをテストするためのin vivo作業では、BALB/cマウスの肺に3週間腫瘍を確定し、ナノセンサーを注入し、センサー注入の1時間後に尿を採取します(図3A)。ベースラインの尿サンプルも、疾患誘発後のサンプルと比較するために、腫瘍接種前に採取されます。悪性腫瘍検出におけるセンサーの有効性を評価するために、ルシフェラーゼ発現大腸癌細胞株MC26(MC26-Fluc)を静脈内注射し、in vivo発光イメージングで肺腫瘍結節を可視化します。ヘマトキシリンとエオシン染色13は、図3Bの黒い矢印で示すように、それぞれ担がんマウスと偽対照マウスの肺組織の組織病理学を明らかにし、注射後11日目と21日目に腫瘍形成の証拠を明らかにします。
化学的に安定化されたDNAによるCRISPR活性化
ssDNAバーコードと相補的なcrRNAペア を介して Cas12aの活性化を最適化するために、さまざまなオリゴヌクレオチド配列と長さがテストされています。Cas12aの活性化は、FRET対によるバイスタンダーDNAレポーターのCas12a切断による蛍光の経時的な増加を測定することによって評価されます。切断速度の増加は、代表的なcrRNA/バーコードペアで示されているように、化学的に修飾されたssDNAバーコードの濃度が高いことと関連しています(図4B)。重要なことは、 図4Bに示されているように、濃度と活性化の間に線形関係があることで、尿中のDNAバーコードの存在を反映し、 in vivoでのタンパク質分解活性を間接的に反映することができます。さらに、 補足表1に詳述されているように、複数の異なるcrRNA配列をCas12aの活性化に用いることができ、これはマルチプレックス化を可能にするために重要である。DNAアクチベーターは、アッセイ性能の類似性に基づいて 、in vivo センサーの構築に選択されています。合成バイオマーカーの in vivo 安定性に不可欠な化学修飾されたssDNAは、修飾されていないdsDNAおよびssDNAと比較して、Cas12aの活性化を示しました(図4C)。
化学的に安定化されたDNAバーコードの多重化尿検出
複数のcrRNA修飾一本鎖DNA(ssDNA)アクチベーターペアが、異なる配列間の直交性について検証されています。これにより、 図5Aに示すように、複数のウェルアッセイで同時に読み出すことができます。さらに、 図5Bに示すように、未処理の尿中の修飾DNA分子は、ラテラルフロー紙ストリップの比色読み出しを使用して検出できます。先頭の「サンプルバンド」の存在は、Cas12aが尿中DNAによって引き起こされた後、レポーター切断を介して検出可能なFAMが放出されることを示しています。Cas12aがマウス尿中のDNA活性化因子によって活性化されると、フルオレセイン(FAM)-ビオチン対オリゴヌクレオチドレポーターが切断され、FAM分子が放出され、「サンプルバンド」で検出可能になります。アングレーブされたレポーターは、ビオチンがストレプトアビジンに結合しているため、「コントロールバンド」に捕捉されます。ナノセンサーは 、in vivo 実験用に選択され、プロテアーゼ活性化可能なペプチドと個別のDNAバーコードを使用して構築されます。ペプチドは ex vivo 組織プロファイリング(図1A)によって指名され、DNAバーコードは類似したCas12a活性化に基づいて選択されます(図4B)。
図1:大腸癌における調節不全プロテアーゼによって活性化されるペプチド基質の同定によるセンサー構築。 (A)FAM蛍光色素とCPQ-2クエンチャーに挟まれたペプチド配列からなるFRET対ペプチド基質を、組換えタンパク質分解酵素または組織ホモジネートに対してスクリーニングします。(B)FRET対ペプチド基質(プローブ1および2)の代表的なプロテアーゼ切断速度論。図はHao et al.13から引用したものである。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図2:高分子PEGコアを用いたDNAバーコード化活性型ナノセンサーの特性評価。 (A)DNAバーコードナノセンサーは、オリゴヌクレオチドでバーコード化されたプロテアーゼ活性化ペプチドで官能基化されたポリマーナノキャリア(8アームPEG)で構成されています。(B)動的光散乱分析では、粒子径が8.3 nm(PEGコアのみ)から13 nm(官能センサー)に増加していることが示されています。(C)ペプチド-DNA複合体のHPLC精製。コンジュゲートは質量分析で分析され、予想される分子量を示します。(D)センサーのFPLC精製は、官能基化センサーと非有界ペプチド-DNA複合体の分離を示しています。図はHao et al.13から引用したものである。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図3: In vivo 疾患の誘導とセンサーの利用。 (A)腫瘍発生のさまざまな時点でのナノセンサーによる縦断的腫瘍モニタリングのタイムライン。(B)腫瘍接種後11日目および21日目のCRC肺腫瘍を有するBALB/cマウスの組織学的肺染色および生理食塩水注射による偽対照マウス。スケールバー = 200 μm。臓器を固定し、パラフィンに包埋し、ヘマトキシリンとエオシンで染色した。この研究は、ある時点でn = 3匹のマウスで行われ、代表的な動物の画像が示されています。矢印は肺の腫瘍結節を示す。図はHao et al.13から引用したものである。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図4:化学的に安定化されたDNA活性化剤によるCas12aの活性化。 (A)相補的crRNAとの結合による代表的なssDNAバーコードによるCas12aの活性化は、分光光度計による蛍光強度によって測定されるように、用量依存的にバイスタンダーDNAのトランス切断をもたらします。(b)(A)の反応開始時の曲線の傾きから初期反応速度(V0)を求め、プロットしてアッセイ性能の線形範囲を決定する。(C)二本鎖、一本鎖、および化学修飾DNA活性化剤によるCas12a活性化。図はHao et al.13から引用したものである。この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
図5:2つの検出オプションを備えたマルチプレックスCRISPR-Cas12を介したDNAバーコード読み出し。 (A)異なる修飾ssDNAアクチベーター-crRNAペアの活性化時のCas12aの トランス切断速度は、Cas12a蛍光切断アッセイで決定されます。アッセイは、1 nmolの修飾されたssDNAアクチベーターを注入したマウスから採取した尿サンプルを用いて、1時間の静脈内投与後に実施します。図はHao et al.13から引用したものである。(B)比色変化を伴う尿サンプル活性化Cas12aの読み出しは、紙片のさまざまな場所に現れます。上のバンドは切断されたFAM DNAレポーターに由来し、下のバンドは未切断のFAM-ビオチンレポーターからのものです。 この図の拡大版をご覧になるには、ここをクリックしてください。
補足図1:96ウェルプレートの上に置く採尿チャンバー。 マウスを一時的にシリンダー内に置き、96ウェルプレートに排尿します。 このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
補足表1:センサー製剤およびCRISPRアッセイのためのオリゴおよびペプチド配列。このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
付表2:蛍光ベースおよび紙ベースのCas12aおよび尿サンプル反応用の試薬。このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
付表3:蛍光ベースのCRISPR検出のためのレポーター反応試薬。このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
付表4:紙ベースのCRISPR検出のためのレポーター反応試薬。このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Discussion
ここでは、低侵襲注射センサーを使用して疾患に関連するタンパク質分解活性を評価するポータブル尿検査を備えたマルチプレックスがん検出のための高度にカスタマイズ可能なプラットフォームを紹介します。腫瘍プロテアーゼによって活性化されると、ペプチド基質の切断は、DNAバーコードが尿中に放出 されることによって 増幅されます。尿サンプル中の合成DNAレポーターは、蛍光検出または簡単な紙ベースの検査を使用した二次CRISPR-Casを介した酵素増幅によって読み取ることができます。DNAバーコーディングは、合成バイオマーカーを標識してマルチプレックスを実現するための魅力的な方法です。ナノセンサーの安定性を 生体内で維持するには、化学修飾によるDNAバーコードの安定性の向上が不可欠です。具体的には、CRISPR-Cas12a による DNAバーコード検出は、安定化された骨格を持つ完全ホスホロチオエート修飾DNAバーコードを使用して活性化できます。しかし、化学修飾により、CRISPR-Cas12aの活性化速度は、安定性が高まるため、天然のDNAと比較して低下します。さらに、crRNAに末端修飾を挿入したり、DNAバーコード中の異なる修飾オリゴヌクレオチドを試験したりすることは、CRISPR媒介DNAバーコード検出15の感度をさらに高め、それによって癌診断の検出限界(LOD)を改善することができる。
分子増幅に加えて、がんの早期発見に必要なLODを達成するためのもう一つの重要な戦略は、腎臓によるサイズろ過を利用して、合成DNAレポーターを尿中に濃縮することです。そのためには、DNAバーコードのサイズを最適化することが重要です。20 mer の crRNA 相補的 DNA は、尿サンプルから最適な CRISPR-Cas12a 媒介 DNA バーコード読み取りを示しました。この最適な長さは、異なるCRISPRヌクレアーゼまたは前臨床動物モデルに適用すると異なる場合があります。
この検出システムの再現性を維持するには、注入可能なナノセンサーの徹底的な特性評価を行い、バッチ間のばらつきを最小限に抑えることが重要です。コアあたりのペプチド-DNA複合体の数にばらつきがあると、尿中に放出されるDNAバーコードの量が変化するため、最終的な読み出しに影響します。同様に、センサーを静脈内に慎重に注入することで、センサーの投与を一貫して行うことができます。ある時点で各動物から少なくとも50μLの尿量を適切に採取するためには、担がん動物の水分補給を維持することが重要です。これは、マウスを非湿潤水ゲル上に置いておくか、採尿の1時間前にPBSを皮下注射することによって裏付けることができる16。
採尿のタイミングとCRISPR-Casを介したDNAバーコード読み出しの期間は、アッセイの一貫性にとって重要な要素です。流通中のバーコードは、静脈内注射および血液からのサイズ依存的な腎濾過後に特徴的な指数関数的濃度減衰を受け、マウスモデル13では投与後1時間でピークに達します。この時点は、動物モデルによって異なる場合があります。CRISPR-Cas活性化アッセイの2つの読み出しフォーマット(蛍光アッセイ と紙ベースのラテラルフローアッセイ)では、ラテラルフローの前に蛍光ベースの動態を追跡し、CRISPR-Cas切断産物を読み取るための最適なエンドポイントを確保することが重要です。
このアプローチは、タンパク質分解とCRISPR-Casを介した酵素活性化からのデュアルシグナル増幅ステップの組み込みと、疾患の複雑さを捉えるためのマルチプレックス機能により有利です。センサーの多重性を高めるには、携帯性と使いやすさを維持するために読み出しのスループットを拡張するだけでなく、慎重な材料投与が必要になります。この戦略では、複数のモデルにおけるプロテアーゼ活性の徹底的な特性評価と、特定の疾患または疾患ステージに対するタンパク質分解プロファイルの特異性が必要です。さらに、センサー注射は生検などの多くの診断方法よりも侵襲性が低いですが、静脈内注射はセンサーの投与を訓練を受けた瀉血医に頼る場合があり、臨床現場での初期発見ではなく、疾患のモニタリングにユースケースが限定される可能性があります。全身注射に加えて、DNAバーコード付きナノセンサーは、非侵襲的な経口、吸入、局所送達を介して適用できる製剤でさらに設計することができ、携帯型の疾患検出と疾患の進行と治療評価の簡単な自己モニタリングを可能にします。
Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.
Disclosures
S.N.B.、L.H.、R.T.Z.は、本作品の内容に関する特許出願において発明者として記載されている。S.N.B.は、Glympse Bio、Satellite Bio、Lisata Therapeutics、Port Therapeutics、Intergalactic Therapeutics、Matrisome Bioの株式を保有し、Vertexの取締役を務めています。モデルナのコンサルティングを行い、ジョンソン・エンド・ジョンソン、Revitope、Owlstoneから資金提供を受けた研究資金を受け取る。
Acknowledgments
Materials
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
| 10x NEB Buffer 2.1 | New England Biolabs | B6002SVIAL | |
| 20-mer phosphorothioated DNA reporters with 3’-DBCO group | IDT | Custom DNA | |
| Agilent 1100 High Performance Liquid Chromatography system with Vydac 214TP510 C4 column | Agilent | HPLC | |
| ÄKTA fast protein liquid chromatography (FPLC) | GE Healthcare | FPLC | |
| Amicon ultracentrifuge tubes (MWCO = 10 kDa) | EMD millipore | Various volumes available | |
| Azide-terminated PAPs with C-terminus cysteine | CPC Scientific | Custom peptide | |
| crRNAs | IDT | See Supplementary Table 1 | |
| Cryogenic transmission electron microscopy | JEM-2100F | JEOL | cyroTEM |
| Cysteine terminated DNA-peptide conjugates | CPC Scientific | Custom peptide | |
| Dynamic light scattering (DLS) | DLS | ||
| EnGen LbaCas12a (Cpf1), 100 µM | New England Biolabs | M0653T | |
| Experimental animals | Taconic Biosciences | BALB/cAnNTac | 6–8 weeks of age |
| gentleMACS C tubes | Miltenyi Biotec | 130-093-237 | tissue homogenization |
| HybriDetect Universal Lateral Flow Assay Kit | Miltenyi Biotec | MGHD 1 | |
| Matrix-assisted laser desorption/ionization–time of flight (MALDI–TOF) mass spectrometry | Bruker | Microflex MALDI–TOF | |
| MC26-Fluc cell line | Kenneth K. Tanabe Laboratory, Massachusetts General Hospital | ||
| multivalent PEG (40 kDA, 8-arm) with maleimide-reactive group | JenKem | A10020-1 / 8ARM(TP)-MAL-40K,1 g | |
| Python, Version 3.9 | https://www.python.org/ | ||
| Quant-iT OliGreen ssDNA Assay Kit and Quant-iT OliGreen ssDNA Reagent | Invitrogen | O11492 | ssDNA assay kit |
| ssDNA FAM-T10-Quencher and FAM-T10-Biotin reporter substrates | IDT | Custom DNA | |
| Superdex 200 Increase 10/300 GL column | GE Healthcare | GE28-9909-44 | For FPLC |
| Tecan Infinite Pro M200 plate reader | Tecan | ||
| ThermoFisher Pierce BCA Protein Assay Kit | ThermoFisher Scientific | 23225 |
References
- Soleimany, A. P., Bhatia, S. N. Activity-based diagnostics: an emerging paradigm for disease detection and monitoring. Trends Mol Med. 26 (5), 450-468 (2020).
- Muir, R. K., Guerra, M., Bogyo, M. M. Activity-based diagnostics: recent advances in the development of probes for use with diverse detection modalities. ACS Chem Biol. 17 (2), 281-291 (2022).
- Heitzer, E., Haque, I. S., Roberts, C. E. S., Speicher, M. R. Current and future perspectives of liquid biopsies in genomics-driven oncology. Nat Rev Genet. 20 (2), 71-88 (2019).
- Dudani, J. S., Warren, A. D., Bhatia, S. N. Harnessing protease activity to improve cancer care. Annu Rev Canc Biol. 2, 353-376 (2018).
- Hanahan, D.
- Quail, D. F., Joyce, J. A. Microenvironmental regulation of tumor progression and metastasis. Nat Med. 19 (11), 1423-1437 (2013).
- Kwong, G. A., et al. Synthetic biomarkers: a twenty-first century path to early cancer detection. Nat Rev Cancer. 21 (10), 655-668 (2021).
- Kirkpatrick, J. D., et al. Urinary detection of lung cancer in mice via noninvasive pulmonary protease profiling. Sci Transl Med. 12 (537), eaaw0262 (2020).
- Warren, A. D., et al. Disease detection by ultrasensitive quantification of microdosed synthetic urinary biomarkers. J Am Chem Soc. 136 (39), 13709-13714 (2014).
- Kwong, G. A., et al. Mass-encoded synthetic biomarkers for multiplexed urinary monitoring of disease. Nat Biotechnol. 31 (1), 63-70 (2013).
- Chen, J. S., et al. CRISPR-Cas12a target binding unleashes indiscriminate single-stranded DNase activity. Science. 360 (6387), 436-439 (2018).
- Choi, H. S., et al.
- Hao, L., et al. CRISPR-Cas-amplified urinary biomarkers for multiplexed and portable cancer diagnostics. Nat Nanotechnol. 18 (7), 798-807 (2023).
- Hao, L., et al.
- Ghanta, K. S., et al. 5'-Modifications improve potency and efficacy of DNA donors for precision genome editing. Elife. 10, e72216 (2021).
- Bekkevold, C. M., Robertson, K. L., Reinhard, M. K., Battles, A. H., Rowland, N. E. Dehydration parameters and standards for laboratory mice. J Am Assoc Lab Anim Sci. 52 (3), 233-239 (2013).
