Summary

Vorbereitung der neuronalen Kulturen aus Midgastrula Bühne Drosophila Embryonen

Published: July 04, 2007
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Summary

Dieses Video zeigt die Herstellung von primären neuronalen Kulturen aus midgastrula Bühne Drosophila-Embryos. Ansichten von lebenden Kulturen zeigen Zellen 1 Stunde nach dem Ausplattieren und differenzierten Neuronen nach 2 Tagen Wachstum in einem Bicarbonat-basierten definiertem Medium. Die Neuronen sind elektrisch erregbar und bilden synaptische Verbindungen.

Abstract

Dieses Video zeigt das Verfahren zur Herstellung von primären neuronalen Kulturen aus midgastrula Bühne Drosophila-Embryos. Die Methoden für die Erhebung Embryonen und ihre dechorionation mit Bleichmittel demonstriert. Mit einer Glaspipette an einem Mund-Saugrohr, illustrieren wir die Entfernung aller Zellen, die aus einzelnen Embryonen. Das Verfahren zum Dispergieren Zellen aus jeder embyro in einen kleinen (5 l) Tropfen Medium auf einer unbeschichteten Deckglas wird demonstriert. Ein Blick durch das Mikroskop bei 1 Stunde nach dem Ausplattieren zeigt die bevorzugte Zelldichte. Die meisten der Zellen, wenn in definierten Medium überleben Neuroblasten, dass ein oder mehrere Male in der Kultur teilen, bevor Erweiterung neuritischen Prozesse durch 12-24 Stunden. Ein Blick durch das Mikroskop zeigt den Grad der Neuritenwachstum und Verzweigung in eine gesunde Kultur in 2 Tage in vitro zu erwarten. Die Kulturen werden in einer einfachen Bicarbonat Basis definiert Medium, in einer 5% CO 2-Inkubator bei 22-24 ° C. Neuritischen Prozesse weiter zu erarbeiten über die erste Woche in der Kultur, und wenn sie in Kontakt mit Neuriten aus dem benachbarten Zellen bilden sie oft funktionelle synaptische Verbindungen. Neuronen in diesen Kulturen auszudrücken spannungsabhängigen Natrium, Kalzium und Kalium-Kanälen und sind elektrisch erregbar. Diese Kultur ist nützlich für die Untersuchung molekularer genetischen und umweltbedingten Faktoren, die neuronale Differenzierung, Erregbarkeit und Synapsenbildung / Funktion zu regulieren.

Protocol

I. Drosophila Embryo-Entnahme Bereiten Eiersammlung Platten Kochen 200 ml dH 2 O mit 8 g Agar Abkühlen auf 50 ° C 2 ml EtOH und 2 ml Essigsäure Gießen Sie in 35 mm Kunststoff-Petrischalen, Tops Cool und speichern in luftdichten Behälter bei 4 ° C Ergibt ca. 80 Teller Bereiten Hefepaste Lösen Sie Fleishmans aktive Backhefe in Wasser zu fügen Mikrowelle für 20-30 Sekunden, um Hefe zu töten (acht…

Discussion

In Drosophila Kulturen aus midgastrula Embryonen bereitete den Neuronen entstehen aus Neuroblasten Vorläufer, von denen viele vor der Differenzierung in vitro zu teilen. Dieses System bietet somit eine einmalige Gelegenheit für die Exploration von genetischen und umweltbedingten Faktoren wichtig in sehr frühen Phasen der neuronalen Entwicklung (Rohrbaugh et al., 2003). Wir haben gezeigt, dass Neurone in einer einfachen Definition-Medium in elektrisch erregbaren Neuronen, bilden auch funktionelle synaptische Verbindungen (O Dowd, 1995; Le…

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde vom NIH NS27501 zu DKOD unterstützt. Zusätzliche Unterstützung für diese Arbeiten von einem HHMI Professor Grant zu DKOD.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Drosophila melanogaster Animal     Fruit flies
Transferrin Reagent Sigma T-1147 100x Stock: 10 mg/ml in water. Filter through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate). Store in 220 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20C.
Insulin   Sigma I-6634 200x Stock: 10 mg/ml in 0.05N HCl. Filter through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate). Store in 120 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20C.
Putrescine   Sigma P-5780 100x Stock: 10 mM in ddH2O. Filter through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate). Store in 220 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20 C
Selenium   Sigma S-5261 100x Stock: 3 uM in ddH2O. Put 0.0051 g Selenium in a 15 ml tube labeled A (3 mM stock). Add 10 ml of sterile water. Take 10 ul from Tube A to Tube B with 10 ml ddH2O (3 uM stock). Filter Tube B through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate). Store in 220 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20C
Progesterone   Sigma P-6149 100x Stock: 2 ug/ml 1. Add 1ml of 100% EtOH to 0.001 g Progesterone bottle 2. Add 49 ml ddH2O 3. Transfer 1 ml of this to second tube with 9 ml ddH2O 4. Filter through 0.2 um syringe filter (cellulose acetate) 5. Store in 220 ul aliquots (for 20 ml DMEM) at -20C
DDM1 Medium     To 10 mls of DMEM add from stocks: 100 ul Transferrin, 100 ul Putrescine, 100 ul Selenium, 100 ul Progesterone, 50 ul Insulin
Petri dishes        
Cover-slips   Bellco Biological Glassware 1943-00012 Low lead glass, autoclaved.
Paper filter   Whatman #1  
10cc syringe Tool      

The cultures made in this media must be maintained in a 5% CO2 incubator at about 22-24°C. We use a standard mammalian tissue culture incubator placed in a cold room and heated to 23°C. Always used autoclaved filtered water and make in containers that are reserved for media and supplements only. Never put a pH meter or stir bar used for other purposes in media.

Referências

  1. Rohrbough, J., O’Dowd, D. K., Baines, R. A., Broadie, K. Cellular bases of behavioral plasticity: Establishing and modifying synaptic circuits in the Drosophila Genetic System. J. Neurobiol. 54, 254-271 (2003).
  2. O’Dowd, D. K. Voltage-gated currents and firing properties of embryonic Drosophila neurons grown in a chemically defined medium. J. Neurobiol. 27, 113-126 (1995).
  3. Lee, D., O’Dowd, D. K. Fast excitatory synaptic transmission mediated by nAChR in cultured Drosophila neurons. J. Neurosci. 19, 5311-5321 (1999).
  4. Lee, D., O’Dowd, D. K. Cyclic-AMP-dependent plasticity at excitatory cholinergic synapses in Drosophila neurons: Alterations in the memory mutant dunce. J. Neurosci. 20, 2104-2111 (2000).
  5. Hodges, D. D., Lee, D., Boswell, K., Preston, C. F., Hall, L. M., O’Dowd, D. K. tipE regulates sodium-dependent repetitive firing in Drosophila neurons. Mol. Cell Neurosci. 19, 402-416 (2002).
  6. Lee, D., Su, H., Dowd, O., K, D. GABA receptors containing Rdl subunits mediate fast inhibitory synaptic transmission in Drosophila neurons. J. Neurosci. 23, 4625-4634 (2003).
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Citar este artigo
Sicaeros, B., O’Dowd, D. K. Preparation of Neuronal Cultures from Midgastrula Stage Drosophila Embryos. J. Vis. Exp. (5), e226, doi:10.3791/226 (2007).

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