Summary

Двухэтапная стратегия, которая сочетает эпигенетическую модификацию и биомеханические сигналы для создания плюрипотентных клеток млекопитающих

Published: August 29, 2020
doi:

Summary

Здесь мы представляем метод, который сочетает в себе использование химического эпигенетического стирания с сигналами, связанными с механозондированием, для эффективной генерации плюрипотентных клеток млекопитающих без необходимости трансфекции генов или ретровирусных векторов. Таким образом, эта стратегия является многообещающей для трансляционной медицины и представляет собой заметный прогресс в технологии органоидных стволовых клеток.

Abstract

Клеточный фенотип может быть изменен или модифицирован различными методами, с преимуществами и ограничениями, которые специфичны для каждой техники. Здесь мы описываем новую стратегию, которая сочетает в себе использование химического эпигенетического стирания с сигналами, связанными с механозондированием, для создания плюрипотентных клеток млекопитающих. Необходимо сделать два основных шага. На первом этапе взрослые зрелые (терминально дифференцированные) клетки подвергаются воздействию эпигенетического ластика 5-аза-цитидина, чтобы привести их в плюрипотентное состояние. Эта часть протокола была разработана на основе растущего понимания эпигенетических механизмов, контролирующих судьбу и дифференцировку клеток, и включает в себя использование эпигенетического модификатора для стирания дифференцированного состояния клеток, а затем вгоняет в переходное окно высокой пластичности.

На втором этапе стертые клетки инкапсулируют в микробиореакторы политетрафторэтилена (PTFE), также известные как жидкие шарики, для содействия перегруппировке 3D-клеток для расширения и стабильного поддержания приобретенной высокой пластичности. PTFE является нереакционноспособным гидрофобным синтетическим соединением, и его использование позволяет создать клеточную микросреду, которая не может быть достигнута в традиционных системах 2D-культур. Эта система поощряет и повышает поддержание плюрипотентности с помощью сигналов, связанных с биомеханозонированием.

Технические процедуры, описанные здесь, представляют собой простые стратегии, позволяющие индукции и поддерживать состояние высокой пластичности во взрослых соматических клетках. Протокол позволил получить клетки высокой пластичности у всех протестированных видов млекопитающих. Поскольку он не связан с использованием трансфекции генов и свободен от вирусных векторов, он может представлять собой заметный технологический прогресс для применения в трансляционной медицине. Кроме того, система микробиореакторов обеспечивает заметный прогресс в технологии органоидов стволовых клеток путем воссоздания in vitro специфической микросреды, которая позволяет проводить долгосрочную культивирование клеток с высокой пластичностью, а именно в виде ЭСК, иПСК, эпигенетически стертых клеток и МСК.

Introduction

В течение последних десятилетий широко распространенная концепция однонаправленной прогрессии в направлении клеточной приверженности и дифференцировки была полностью пересмотрена. Было продемонстрировано, что спецификация ячейки может быть обращена вспять, и терминально дифференцированная клетка может быть подтолкнута к менее зафиксированному и более высокому разрешительному состоянию, используя различные методы.

Среди нескольких предложенных способов один из наиболее перспективных методов включает использование химических соединений для индуцирования клеток в так называемую химически индуцированную плюрипотентность. Малые молекулы, используемые в этом подходе, способны взаимодействовать и модифицировать эпигенетическую сигнатуру взрослой зрелой клетки, избегая необходимости в любом трансгенном и/или вирусном векторе 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10 . Многочисленные исследования недавно показали, что можно переключать клетки с одного фенотипа на другой, предоставляя специфические биохимические и биологические стимулы, которые индуцируют реактивацию гиперметилированных генов 11,12,13,14,15. Эти события деметилирования позволяют превращать терминально дифференцированные клетки в примитивный предшественник, мультипотентную или высокопластичную/плюрипотентную клетку 1,2,3,4,5,6,7,8,9,10.

Параллельно многие исследования в последнее время сосредоточены на понимании сигналов, связанных с механозондированием, и, более конкретно, на возможности использования механических сил для непосредственного влияния на пластичность и/или дифференцировку клеток 16,17,18,19. Действительно, было ясно продемонстрировано, что внеклеточный матрикс (ECM) играет ключевую роль в контроле судьбы клеток. В частности, биомеханические и биофизические сигналы, производимые ECM, непосредственно регулируют молекулярные механизмы и сигнальные пути, влияя на поведение и функции клеток20,21. Эти последние данные проложили путь к разработке новых систем 3D-культур, которые более точно имитируют микросреду клеток in vivo, воспроизводя механические и физические стимулы, определяющие поведение клеток.

Здесь мы описываем двухэтапный протокол, который сочетает в себе использование химического эпигенетического стирания с сигналами, связанными с механозондированием, для генерации плюрипотентных клеток млекопитающих. На первом этапе клетки инкубируют с деметилирующей молекулой 5-аза-цитидин (5-аза-CR). Этот агент способен индуцировать значительное глобальное деметилирование ДНК посредством комбинированного эффекта прямого действия 8,10, опосредованного транслокацией 2 (TET2) и косвенного ингибирования ДНК-метилтрансфераз (DNMT)22,23. Этот этап индуцирует удаление эпигенетических блоков с последующей реактивацией экспрессии генов, связанных с плюрипотентностью, и, следовательно, генерацию клеток высокой пластичности 1,2,3,8,10, далее именуемых «эпигенетически стертыми клетками». На втором этапе клетки инкапсулируются в систему 3D-культуры. С этой целью в качестве микробиореактора используется нереакционноспособное гидрофобное синтетическое соединение политетрафторэтилен (PTFE; с размером частиц 1 мкм), что позволяет создать клеточную микросреду, недостижимую с помощью традиционных 2D-культуральных систем10. Частицы порошка PTFE прилипают к поверхности капли жидкости, в которой клетки повторно суспендируются, и изолируют жидкое ядро от опорной поверхности, обеспечивая при этом газообмен между внутренней жидкостью и окружающей средой24. Полученный таким образом «микробиореактор PTFE», также известный как «Жидкий мрамор», побуждает клетки свободно взаимодействовать друг с другом, способствуя 3D-перегруппировке клеток 25,26,27, а также расширяет и стабильно поддерживает приобретенное состояние высокой пластичности через биомеханозондирующие сигналы 10.

Protocol

Все исследования были рассмотрены и одобрены Этическим комитетом Миланского университета. Все эксперименты на животных проводились в соответствии с Руководством по уходу и использованию лабораторных животных, опубликованным Национальными институтами здравоохранения США (NIH). Изоля?…

Representative Results

Настоящий протокол описывает все этапы, которые должны быть выполнены для генерации и стабильного поддержания плюрипотентных клеток млекопитающих из взрослых соматических клеток. Этот метод был успешным с фибробластами, выделенными из различных видов млекопитающих, а именно мыши, св…

Discussion

В течение последних десятилетий несколько исследований были сосредоточены на разработке стратегий возврата терминально дифференцированной клетки к менее приверженному и более высокому разрешительному состоянию. Описанный здесь протокол позволяет генерировать и длительно поддерж?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа финансировалась Фондом Каррарези и MiND FoodS Hub ID: 1176436. Все авторы являются членами COST Action CA16119 In vitro 3-D общее руководство клетками и фитнес (CellFit).

Materials

2-Mercaptoethanol Sigma-Aldrich M7522 Component of ESC medium
5-Azacytidine Sigma-Aldrich A2385 5-aza-CR, for fibroblast epigenetic erasing
Adenosine Sigma-Aldrich A4036 Component of nucleoside mix for ESC medium
Antibiotic Antimycotic Solution (100×) Sigma-Aldrich A5955 Component of fibroblast and ESC media
CFX96 Real-Time PCR Bio-Rad Laboratories NA Thermal cycler for quantitative PCR
Cytidine Sigma-Aldrich C4654 Component of nucleoside mix for ESC medium
DMEM, high glucose, pyruvate Thermo Fisher Scientific 41966052 For fibroblast isolation and culture medium
DMEM, low glucose, pyruvate Thermo Fisher Scientific 31885023 For ESC medium
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline Sigma-Aldrich D5652 PBS; for biopsy and cell wash and for solution preparation
Dynabeads mRNA DIRECT Micro Purification Kit Thermo Fisher Scientific 61021 mRNA estraction
ESGRO Recombinant Mouse LIF Protein Sigma-Aldrich ESG1106 Component of ESC medium
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated Thermo Fisher Scientific 10500064 Component of fibroblast and ESC media
FGF-Basic (AA10-155) Recombinant Human Protein Thermo Fisher Scientific PHG0024 Component of ESC medium
Gelatin from porcine skin Sigma-Aldrich G1890 For dish coating
GeneAmp PCR System 2700 Applied Biosystems NA Thermal cycler for qualitative PCR
Global DNA Methylation ELISA Kit CELL BIOLABS STA-380 Methylation study
GoTaq G2 Flexi DNA Polymerase Promega M7801 Qualitative PCR
Guanosine Sigma-Aldrich G6264 Component of nucleoside mix for ESC medium
Ham's F-10 Nutrient Mix Thermo Fisher Scientific 31550031 For ESC medium
KnockOut Serum Replacement Thermo Fisher Scientific 10828028 Component of ESC medium
KOVA glasstic slide 10 with grids Hycor Biomedical 87144 For cell counting
Leica MZ APO Stereo Microscope Leica NA For organoid observation
L-Glutamine solution Sigma-Aldrich G7513 Component of fibroblast and ESC media
MEM Non-Essential Amino Acids Solution (100X) Thermo Fisher Scientific 11140035 Component of ESC medium
Millex-GS 0.22 µm pore filters Millipore SLGS033SB For solution sterilization
M-MLV Reverse Transcriptase, RNase H Minus, Point Mutant Promega M3681 mRNA reverse transcription
Multiskan FC Microplate Photometer Thermo Fisher Scientific 51119000 For ELISA plate reading
Nikon Eclipse TE300 Inverted Phase Contrast Microscope Nikon NA For cell observation
Perkin Elmer Thermal Cycler 480 Perkin Elmer NA Thermal cycler for reverse transcription
Poly(tetrafluoroethylene) 1 μm particle size Sigma-Aldrich 430935 For generating micro-bioreactor
PureLink Genomic DNA Mini Kit Thermo Fisher Scientific K182001 Genomic DNA estraction
TaqMan Gene Expression Cells-to-CT Kit Thermo Fisher Scientific AM1728 Quantitative PCR
Thymidine Sigma-Aldrich T1895 Component of nucleoside mix for ESC medium
Tissue Culture Dish 100X20 mm, Standard Sarstedt 833902 For fibroblast isolation
Tissue Culture Dish 35X10 mm, Standard Sarstedt 833900 For Fibroblast isolation
Tissue Culture Dish 35X10 mm, Suspension Sarstedt 833900500 Bacteriology petri dish for liquid marble culture
Tissue Culture Plate 96 Well,Standard,F Sarstedt 833924005 For liquid marble culture
Trypsin-EDTA solution Sigma-Aldrich T3924 For fibroblast dissociation
Tube 15ml, 120x17mm, PS Sarstedt 62553041 For cell suspension centrifugation
Uridine Sigma-Aldrich U3003 Component of nucleoside mix for ESC medium

Referências

  1. Pennarossa, G., et al. Brief demethylation step allows the conversion of adult human skin fibroblasts into insulin-secreting cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110 (22), 8948-8953 (2013).
  2. Pennarossa, G., et al. Reprogramming of pig dermal fibroblast into insulin secreting cells by a brief exposure to 5-aza-cytidine. Stem Cell Reviews and Reports. 10 (1), 31-43 (2014).
  3. Brevini, T. A. L., et al. Morphological and molecular changes of human granulosa cells exposed to 5-azacytidine and addressed toward muscular differentiation. Stem Cell Reviews and Reports. 10 (5), 633-642 (2014).
  4. Mirakhori, F., Zeynali, B., Kiani, S., Baharvand, H. Brief azacytidine step allows the conversion of suspension human fibroblasts into neural progenitor-like cells. Cell Journal. 17 (1), 153-158 (2015).
  5. Tan, S. J., et al. Muscle tissue engineering and regeneration through epigenetic reprogramming and scaffold manipulation. Scientific Reports. 5, 16333 (2015).
  6. Brevini, T. A. L., Pennarossa, G., Acocella, F., Brizzola, S., Zenobi, A., Gandolfi, F. Epigenetic conversion of adult dog skin fibroblasts into insulin-secreting cells. Veterinary Journal. 211, 52-56 (2016).
  7. Chandrakanthan, V., et al. PDGF-AB and 5-Azacytidine induce conversion of somatic cells into tissue-regenerative multipotent stem cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (16), 2306-2315 (2016).
  8. Manzoni, E. F. M., et al. 5-azacytidine affects TET2 and histone transcription and reshapes morphology of human skin fibroblasts. Scientific Reports. 6, 37017 (2016).
  9. Pennarossa, G., et al. Epigenetic erasing and pancreatic differentiation of dermal fibroblasts into insulin-producing cells are boosted by the use of low-stiffness substrate. Stem Cell reviews and reports. 14 (3), 398-411 (2018).
  10. Pennarossa, G., et al. Use of a PTFE micro-bioreactor to promote 3D cell rearrangement and maintain high plasticity in epigenetically erased fibroblasts. Stem Cell Reviews and Reports. 15 (1), 82-92 (2019).
  11. Constantinides, P. G., Jones, P. A., Gevers, W. Functional striated muscle cells from non-myoblast precursors following 5-azacytidine treatment. Nature. 267 (5609), 364-366 (1977).
  12. Taylor, S. M., Jones, P. A. Multiple new phenotypes induced in 10T1/2 and 3T3 cells treated with 5-azacytidine. Cell. 17 (4), 771-779 (1979).
  13. Taylor, S. M., Constantinides, P. A., Jones, P. A. 5-Azacytidine, DNA methylation, and differentiation. Current Topics in Microbiology and Immunology. 108, 115-127 (1984).
  14. Jones, P. A. Effects of 5-azacytidine and its 2′-deoxyderivative on cell differentiation and DNA methylation. Pharmacology & Therapeutics. 28 (1), 17-27 (1985).
  15. Palii, S. S., Van Emburgh, B. O., Sankpal, U. T., Brown, K. D., Robertson, K. D. DNA methylation inhibitor 5-Aza-2′-deoxycytidine induces reversible genome-wide DNA damage that is distinctly influenced by DNA methyltransferases 1 and 3B. Molecular and Cellular Biology. 28 (2), 752-771 (2008).
  16. Vining, K. H., Mooney, D. J. Mechanical forces direct stem cell behaviour in development and regeneration. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 18 (12), 728 (2017).
  17. Matamoro-Vidal, A., Levayer, R. Multiple influences of mechanical forces on cell competition. Current Biology. 29 (15), 762-774 (2019).
  18. Yim, E. K., Sheetz, M. P. Force-dependent cell signaling in stem cell differentiation. Stem Cell Research & Therapy. 3 (5), 41 (2012).
  19. Kumar, A., Placone, J. K., Engler, A. J. Understanding the extracellular forces that determine cell fate and maintenance. Development. 144 (23), 4261-4270 (2017).
  20. Bissell, M. J., Rizki, A., Mian, I. S. Tissue architecture: the ultimate regulator of breast epithelial function. Current Opinion in Cell Biology. 15 (6), 753-762 (2003).
  21. Streuli, C. H., et al. Laminin mediates tissue-specific gene expression in mammary epithelia. The Journal of Cell Biology. 129 (3), 591-603 (1995).
  22. Christman, J. K. 5-Azacytidine and 5-aza-2[prime]-deoxycytidine as inhibitors of DNA methylation: mechanistic studies and their implications for cancer therapy. Oncogene. 21, 5483-5495 (2002).
  23. Stresemann, C., Lyko, F. Modes of action of the DNA methyltransferase inhibitors azacytidine and decitabine. International Journal of Cancer. 123 (1), 8-13 (2008).
  24. Ledda, S., Idda, A., Kelly, J., Ariu, F., Bogliolo, L., Bebbere, D. A novel technique for in vitro maturation of sheep oocytes in a liquid marble microbioreactor. Journal of Assisted Reproduction and Genetics. 33 (4), 513-518 (2016).
  25. Vadivelu, R. K., et al. Generation of three-dimensional multiple spheroid model of olfactory ensheathing cells using floating liquid marbles. Scientific Reports. 5, 15083 (2015).
  26. Vadivelu, R. K., Kamble, H., Munaz, A., Nguyen, N. T. Liquid Marble as bioreactor for engineering three-dimensional toroid tissues. Scientific Reports. 7 (1), 12388 (2017).
  27. Vadivelu, R. K., Kamble, H., Munaz, A., Nguyen, N. T. Liquid Marbles as bioreactors for the study of three-dimensional cell interactions. Biomedical Microdevices. 19 (2), 31 (2017).
  28. Varelas, X., et al. TAZ controls Smad nucleocytoplasmic shuttling and regulates human embryonic stem-cell self-renewal. Nature Cell Biology. 10 (7), 837-848 (2008).
  29. Panciera, T., et al. Induction of Expandable Tissue-Specific Stem/Progenitor Cells through Transient Expression of YAP/TAZ. Cell Stem Cell. 19 (6), 725-737 (2016).
  30. Pennarossa, G., Paffoni, A., Ragni, G., Gandolfi, F., Brevini, T. A. L. Rho signaling-directed YAP/TAZ regulation encourages 3D spheroid colony formation and boosts plasticity of parthenogenetic stem cells. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1237, 49-60 (2020).
check_url/pt/61655?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Pennarossa, G., Ledda, S., Arcuri, S., Gandolfi, F., Brevini, T. A. L. A Two-Step Strategy that Combines Epigenetic Modification and Biomechanical Cues to Generate Mammalian Pluripotent Cells. J. Vis. Exp. (162), e61655, doi:10.3791/61655 (2020).

View Video