Summary

Métodos eletrofisiológicos de gravação Potenciais Synaptic do MNJ de larvas de Drosophila

Published: February 06, 2009
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Summary

Aqui nós descrevemos métodos eletrofisiológicos para medir a transmissão sináptica na junção neuromuscular de larva Drosophila. Liberação evocada é iniciado artificialmente estimulando os axônios do neurônio motor ea transmissão através do MNJ pode ser medida pela resposta pós-sináptica evocado no músculo.

Abstract

Neste vídeo, descrevemos os métodos eletrofisiológicos para a gravação da transmissão sináptica na junção neuromuscular (MNJ) da larva Drosophila. O sistema neuromuscular é uma sinapse larval modelo para o estudo da fisiologia sináptica e neurotransmissão, e é um valioso instrumento de pesquisa que definiu a genética e é acessível à manipulação experimental. As larvas podem ser dissecado para expor o corpo musculatura da parede, sistema nervoso central, e os nervos periféricos. Os músculos de Drosophila e seu padrão de inervação estão bem caracterizadas e os músculos são de fácil acesso para gravação intracelular. Músculos individuais podem ser identificados por sua localização e orientação dentro do 8 segmentos abdominais, cada um com 30 músculos dispostos em um padrão que se repete em segmentos A2 – A7. Dissecados larvas de drosófila são músculos finos e individuais e feixes de axônios do neurônio motor pode ser visualizado por transiluminação<sup> 1</sup>. Construções de transgênicos pode ser usado para rotular as células-alvo para a identificação visual ou para a manipulação de produtos de genes em tecidos específicos. Em larvas, potenciais de junção excitatórios (EJPs) são gerados em resposta a liberação vesicular de glutamato do motoneurônios na sinapse. Em larvas dissecadas, o EJP pode ser gravado no músculo com um eletrodo intracelular. Potenciais de ação podem ser artificialmente evocado nos neurônios motores que foram cortados posterior ao gânglio ventral, atraído para uma pipeta de vidro por sucção suave e estimulado com um eletrodo. Estes neurônios motores têm distintas limiar de disparo quando estimulados, e quando eles atiram simultaneamente, geram uma resposta no músculo. Sinais transmitidos através da sinapse MNJ podem ser gravadas nos músculos que os neurônios motores inervam. O EJPs e miniatura potenciais de junção excitatórios (mEJPs) são vistas como mudanças no potencial de membrana. Respostas eletrofisiológicas são registrados a temperatura ambiente em solução de hemolinfa modificadas-como o mínimo<sup> 2</sup> (HL3) que contém 5 Mg mM<sup> 2 +</sup> E 1,5 mM Ca<sup> 2 +</sup>. Mudanças na amplitude de EJPs evocado pode indicar diferenças na função sináptica e estrutura. Gravações digitalizadas são analisadas para EJP amplitude, mEJP freqüência e amplitude e conteúdo quântica.

Protocol

Antes de iniciar preparar: Wandering yhird instar as larvas Drosophila HL3.1 solução (Modificado hemolinfa-like) Placas Sylgard (borracha de silicone transparente) dissecção preparado em pequena (35 x 10 mm) pratos de plástico petri usando métodos descritos por Brent e McCabe (2008) 3. Cortar pinos dissecção curta Estimulando pipetas eletrodo Afiada pipetas de gravação HL3 Solução: Durante as…

Discussion

Os métodos descritos aqui oferecem uma maneira relativamente rápida e ampla para detectar mudanças na função sináptica no MNJ. A capacidade de realizar gravações eletrofisiológicas usando animais intactos in vivo, e executar manipulações genéticas ou farmacológicas, fazer Drosophila um modelo animal ideal para investigar os aspectos fisiológicos e genéticos da neurotransmissão.

Como as células musculares são muito grandes, alguns podem preferir adicionar um passo adicional …

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Small Petri dishes (35 x 10 mm)   Becton Dickinson 1008  
SYLGARD 182 Silicone Elastomer Kit   Dow Corning Corporation 3097366-1004  
Dissecting microscope   Carl Zeiss 475002-9902  
Light for microscope   Schott KLI500  
Dissection pins   Fine Science Tools 26002-10  
pClamp 9 software   Axon CNS, Molecular Devices PCLAMP 9 STANDARD  
Dissection scissors: 3mm Vannas Spring Scissors   Fine Science Tools 15000-0  
Dumont SS Forceps   Fine Science Tools 11200-33  
Dumont #5 Forceps   Fine Science Tools 11252-20  
Thin-walled borosilicate glass capillaries, with filament (1.0 mm, 4 in)   World Precision Instruments, Inc. TW100F-4  
Borosilicate glass capillaries, with filament (1.2 mm, 4 in)   World Precision Instruments, Inc. 1B120F-4  
Sutter P-2000 Laser Based Micropipette Puller   Sutter Instruments Model P-2000  
Pipette polisher   Narishiga MF-83  
Axon HS-2A head stage   Axon CNS, Molecular Devices Model HS-2A  
Micromanipulators   Sutter Instruments MP-85  
Axoclamp 2B amplifier   Axon CNS, Molecular Devices AXOCLAMP 2B  
Clampex Software   Axon CNS, Molecular Devices v 8.2.0.235  
Mini analysis software. v 6.0.3   Synaptosoft    
Brownlee Precision Amplifier   Brownlee Model 410  
NaCl   Baker 4058-01  
KCl   Sigma p-9333  
NaHCO3   Sigma s6297-1kg  
Trelahose   Sigma TO167  
Sucrose   Fisher bp220-212  
HEPES   Sigma h-3375  
MgCl-6H2O   Sigma m2670-1kg  
CaCl2   Fisher c79-500  
Master-8 Pulse Generator   A.M.P.I    
Vibration table for electrophysiology set up   Technical manufacturing corporation    
Faraday Cage        

References

  1. Atwood, H. L., Govind, C. K., Wu, C. F. Differential ultrastructure of synaptic terminals on ventral longitudinal abdominal muscles in Drosophila larvae. J. Neurobiol. 24 (8), 1008-1024 (1993).
  2. Feng, Y., Ueda, A., Wu, C. F. A modified minimal hemolymph-like solution, HL3.1, for physiological recordings at the neuromuscular junctions of normal and mutant Drosophila larvae. J Neurogenet. 18 (2), 377-402 (2004).
  3. Estes, P. S., Roos, J., van der Bliek, A., Kelly, R. B., Krishnan, K. S., Ramaswami, M. Traffic of dynamin within individual Drosophila synaptic boutons relative to compartment-specific markers. J Neurosci. 16, 5443-5456 (1996).
  4. Brent, J. R., Werner, K. M., McCabe, B. D. Protocol for dissection of Drosophila larvae. J Vis Exp. , (2008).
  5. Jan, L. Y., Jan, Y. N. Properties of the larval neuromuscular junction in Drosophila melanogaster. J Physiol (Lond). 262, 189-214 (1976).
  6. Katz, L. C., Shatz, C. J. Synaptic activity and the construction of cortical circuits. Science. 274, 1133-1138 (1996).
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Cite This Article
Imlach, W., McCabe, B. D. Electrophysiological Methods for Recording Synaptic Potentials from the NMJ of Drosophila Larvae. J. Vis. Exp. (24), e1109, doi:10.3791/1109 (2009).

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