Summary

생체내 칼슘 2 + - 허니 비에 강한 학습하는 동안 버섯 바디 뉴런의 영상

Published: August 18, 2009
doi:

Summary

꿀벌은 appetitive 후각 학습 패러다임 (당 시설)에서 시설 수 있습니다. 자극과 같은 냄새를 사용하여, 우리는 동시에 칼슘 이미징이 버섯 신체 뉴런에서 냄새 evoked 활동을 측정하는 데 사용하는 동안 기록되는 행동 방식을 설립<em> 생체내에</em>.

Abstract

생체내반에서 칼슘 이미징에 대한 생체내 준비가 Joerges, Küttner 및 Galizia에 의해 우리가 실험실에서 개발되었습니다의 이상 십년 전, antennal 엽 1 냄새 evoked 활동을 측정합니다. 그때부터, 그것은 지속적으로 세련되었고 비 두뇌에서 다른 neuropiles에 적용. 여기서 우리는 현재 dextran 결합 칼슘에 민감한 염료를 (Fura – 2)를 사용하여 버섯 신체 뉴런의 활동을 측정하기 위하여 실험실에서 사용되는 준비를 설명합니다. 우리는 retrogradely 자신의 axons 또는 소마 지역에 염료를 주입하여 버섯 신체 뉴런을 얼룩. 우리는 에어컨 PER 사용하여 꿀벌을 양성 볼 수 있습니다있는 준비를 달성하기 위해, invasiveness을 줄이는 데 중점을 둡니다. 우리는 PER (M17) 2를 제어하는 근육에서 전자 myograms을 기록하여 행동 반응을 모니터링하고 정할 수 있습니다.

생리 실험 후 몇 군데 구조는 뉴런의 신원을 주소로 공촛점 스캐닝 현미경을 사용하여보다 상세히 조사하고 있습니다.

Protocol

비 준비 및 백 – 채우기 고정을위한 얼음 하이브와 감기에 꿀 비 foragers을 관람해보세요. 플렉시가 실 3 녹화에 탑재합니다. 낮은 융점 하드 왁스로 녹음 챔버 벽에 눈과 흉부을 수정. 일반적으로 전기 생리학 사용으로 유리 모세관을 당겨 및 CA의 팁 직경을 얻는 끝에 휴식. 10μm. 염색 붙여있는 모세관의 끝부분을 커버. 다이 붙여넣기 Fura – 2 dextran과 리신 고칠수 tetram…

Discussion

이 프레 젠 테이션에서 우리는 꿀벌의 생체내 칼슘 신호에 조사하기위한 모든 단계를 통과했습니다. 우리는 버섯 몸의 신경이 기술을 적용하지만, 이미지는 얼룩 기술이 확립 수있는 모든 뉴런에서 할 수 있습니다. 우리는 벌꿀 꿀벌의 후각 경로의 뉴런에 주력했습니다. 실험은 모든 암실에서 수행됩니다. 세트는 최대 꿀벌의 광학 인식 범위 밖으로 거짓과 염료를 자극하지 않는 긴 …

Acknowledgements

이 작품은 DFG에 의해 자금입니다.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
low melting point hard wax Deiberit 502   Dr. Böhme & Schöps Dental GmbH    
FURA-2 dextran potassium salt, 10 000 MW   Invitrogen/Molecular Probes F-3029 Protect from light.
tetramethylrhodamine dextran 10 000 MW   Invitrogen/Molecular Probes D-3312 Protect from light.
n-eicosane   Sigma-Aldrich 21, 927-4  
Kwik Sil Adhesive   WPI KWIK SIL  
Imaging Set-up   TILL Photonics    
CCD camera   Imago    
CED   Texas Instruments    

References

  1. Joerges, J., Küttner, A., Galizia, C. G., Menzel, R. Representations of odors and odor mixtures visualized in the honeybee brain. Nature. 387 (6630), 285-288 (1997).
  2. Rehder, V. Quantification of the honeybee’s proboscis reflex by electromyiographic recordings. J. Insect Physiol. 33, 501-507 (1987).
  3. Galizia, C. G., Vetter, R. S., Christensen, T. A. Optical Methods for Analyzing Odor-Evoked Activity in the Insect Brain. Methods in Insect Sensory Neuroscience. , 345-388 (2004).
  4. Mauelshagen, J. Neural correlates of olfactory learning paradigms in an identified neuron in the honeybee brain. J Neurophysiol. 69 (2), 609-625 (1993).
  5. Kuwabara, M. Bildung des bedingten Reflexes von Pavlovs Typus bei der Honigbiene Apis mellifica, Hokaido Univ. Zool. J. Sci. 13, 458-464 (1957).
  6. Bitterman, M. E., Menzel, R., Fietz, A., Schafer, S. Classical conditioning of proboscis extension in honeybees (Apis mellifera. Journal of Comparative Psychology. 97 (2), 107-119 (1983).
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Cite This Article
Haehnel, M., Froese, A., Menzel, R. In vivo Ca2+– Imaging of Mushroom Body Neurons During Olfactory Learning in the Honey Bee. J. Vis. Exp. (30), e1353, doi:10.3791/1353 (2009).

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