Summary

Vorbereitung von Gehirngewebe der Maus für Immunelektronenmikroskopie

Published: July 20, 2010
doi:

Summary

Wir beschreiben ein Protokoll für transcardiac Perfusion von Mäusen, die Entfernung und Schnitte des Gehirns sowie Immunperoxidasefärbung, Harz eingebettet, und ultradünne Schnitte des Gehirns Abschnitten. Nach Abschluss dieser Verfahren ist die immungefärbt Material bereit zur Untersuchung mit der Transmissionselektronenmikroskopie.

Abstract

Die Transmissionselektronenmikroskopie (TEM) ist äußerst nützlich für die Visualisierung von Mikrogliazellen, oligodendrocytic, Astrozyten und Neuronen subzellulären Kompartimenten (Dendriten, dendritischen Dorn, Axon, Axonterminal, Perikaryon), sowie deren intrazellulären Organellen und Zytoskelett, in das zentrale Nervensystem an hoher räumlicher Auflösung. Kombiniert mit TEM ermöglicht Pre-Embedding Immunzytochemie die Diskriminierung von zellulären Elemente mit wenigen Besonderheiten und Identifikation Kriterien (zB Mikroglia Perikarya und Prozesse, bei Verwendung eines Antikörpers gegen die Mikroglia-Marker Iba1 (ionisiertes Kalzium bindenden Adapter molecule 1; wie dargestellt hier)), die Identifizierung des Neurotransmitters Inhalte der zellulären Elemente (zB Serotonin) und deren ultrastrukturelle Lokalisierung von löslichen oder Membran-gebundenen Proteine ​​(zB 5 HT1A und EphA4-Rezeptoren). Hier beschreiben wir ein Protokoll für transcardiac Perfusion von Mäusen mit Acrolein Fixativ, das Entfernen und Schneiden des Gehirns sowie Immunperoxidase-Diaminobenzidin (DAB)-Färbung, Harz eingebettet, und ultradünne Schnitte der Hirnschnitten. Nach Abschluss dieser Verfahren ist die immungefärbt Material bereit zur Untersuchung mit TEM. Wenn konsequent durchgeführt wird, bietet diese Technik einen hervorragenden Kompromiss zwischen optimaler ultrastrukturelle Konservierung und immunzytochemische Detektion.

Protocol

1. Tierische Perfusion Am Tag vor der Perfusion, vorzubereiten: – 2 L Phosphatpuffer (PB; 100 mM, pH 7,4) und 1 L Natrium Phosphat-gepufferter Kochsalzlösung (PBS, 0,9% NaCl in 50 mM PB, pH 7,4) in doppelt destilliertem Wasser. Bewahren Sie die PBS und 1L PB bei 4 ° C. Diese werden für die Perfusion und Pre-Embedding Immunzytochemie verwendet werden. – 1L von 4,0% Paraformaldehyd (PFA, pH 7,4) Fixierlösung, die die Durchblutung von 6 Mäusen ermöglichen. Zu diesem Zweck aufheizen 1 L PB unt…

Discussion

Hier haben wir ein Protokoll für die Herstellung von Gehirngewebe der Maus für Immunelektronenmikroskopie, dass er einen ausgezeichneten Kompromiss zwischen optimaler ultrastrukturelle Konservierung und immunzytochemische Nachweis, wenn die Verfahren konsequent durchgeführt liefert beschrieben.

Kombiniert mit TEM ermöglicht diese Methode, um zelluläre Elemente mit wenigen Besonderheiten und Identifikation Kriterien zu unterscheiden. Insbesondere ermöglicht die Immunperoxidase-DAB-Färb…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Wir danken Shao-Ming Lu und Harris A. Gelbard für den Einsatz einer Schlauchpumpe und Vibratom sowie Karen L. Bentley und Gayle Schneider am Elektronenmikroskop Forschung Core Facility der University of Rochester Medical Center für technische Unterstützung. Diese Arbeit wurde durch Zuschüsse der NIH (EY019277), Whitehall-Stiftung, Burroughs Wellcome Fund und der Alfred P. Sloan Foundation, um AKM finanziert. M.-È.T. wird durch einen Fonds de la recherche en santé du Québec (FRSQ) Postdoc-Preis finanziert.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Sodium pentobarbital (Nembutal)   Ovation Pharmaceuticals    
Filter paper 315 24 cm   VWR 28331-081  
*Acrolein purum (≥95%)   Sigma-Aldrich (Fluka) 01680  
Sodium borohydride (≥98%)   Sigma-Aldrich (Aldrich) 452173  
*Prilled paraformaldehyde (PFA) (95%)   Sigma-Aldrich 441244  
Normal goat serum   Jackson ImmunoResearch 005-000-121  
Rabbit anti-Iba1 primary antibody   Wako 019-19741 Stored at -20°C, 1:1 in glycerol
Biotin-SP-conjugated AffiniPure F(ab’)2 fragment goat anti-rabbit IgG, Fc fragment specific   Jackson ImmunoResearch 111-066-046 Stored at -20°C, 1:1 in glycerol
Peroxidase-conjugated streptavidin   Jackson ImmunoResearch 016-030-084 Stored at -20°C, 1:1 in glycerol
*Osmium tetroxide 4% solution   Electron Microscopy Sciences 19150 Light sensitive
Propylene oxide (≥99%)   Sigma-Aldrich (Fluka) 82325  
Polypropylene disposable beakers (50 mL)   Fisher 01-291-10  
Aluminium weigh dishes (70 mm)   Fisher NC9261784  
Durcupan epoxy resin   Electron Microscopy Sciences 14040  
Embedding mold   Electron Microscopy Sciences 70907  
DPX mountant for histology   Sigma-Aldrich (BioChemika) 44581  
Gelatin subbed slides   VWR 100241-864  
ACLAR embedding films (7.8 mm)   Electron Microscopy Sciences 50425  
Capsule mold   Electron microscopy Sciences 70150  
High-performance super glue   Corporate Express LOC30379  
Perfect loop for ultra thin sections   Electron Microscopy Sciences 70944  
Superfrost slides   Fisher 22-178-277  
Diamond knife ultra 45° (2.5-3.5 mm)   Diatome    
Gelatin from cold water fish skin (~45%)   Sigma-Aldrich (Sigma) G7765  

*One should always work under a fume hood and wear nitrile gloves when handling acrolein, paraformaldehyde, and osmium and should also dispose of their waste properly.

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Cite This Article
Tremblay, M., Riad, M., Majewska, A. Preparation of Mouse Brain Tissue for Immunoelectron Microscopy. J. Vis. Exp. (41), e2021, doi:10.3791/2021 (2010).

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