Summary

Nauwkeurige en eenvoudige meting van de pro-inflammatoire cytokine IL-1β met behulp van een volbloed stimulatie Assay

Published: March 01, 2011
doi:

Summary

Beschrijven we een simpele immunoassay om de productie van pro-inflammatoire cytokines, zoals IL-1 bèta productie, bij patiënten met autoinflammatory fenotypes te meten. Door het activeren van cellen in volbloed culturen met pathogeen-geassocieerde moleculaire patronen, in het bijzonder met lipopolysaccharide, kan cytokine secretie gemakkelijk worden geëvalueerd in volbloed supernatants.

Abstract

Inflammatoire processen als gevolg van de afscheiding van oplosbare mediatoren door immuuncellen, leiden tot verschillende manifestaties in de huid, gewrichten en andere weefsels, alsmede gewijzigde cytokine homeostase. Het aangeboren immuunsysteem speelt een cruciale rol in het herkennen van ziekteverwekkers en andere endogene gevaar stimuli. Een van de belangrijkste cytokines vrijgegeven door aangeboren immuuncellen is Interleukine (IL) -1. Daarom maken we gebruik van een volbloed stimulatie test om de secretie van inflammatoire cytokines te meten en in het bijzonder van de pro-inflammatoire cytokine IL-1β 1, 2, 3.

Patiënten met genetische disfuncties van het aangeboren immuunsysteem waardoor autoinflammatory syndromen vertonen een overdreven versie van volwassen IL-1β na stimulatie met LPS alleen. Met het oog op het aangeboren immuunsysteem component van de patiënten die zich presenteren met inflammatoire-geassocieerde aandoeningen te evalueren, gebruiken we een specifieke immunoassay om cellulaire immuunresponsen te detecteren pathogeen-geassocieerde moleculaire patronen (PAMPs), zoals de gram-negatieve bacteriële endotoxine, lipopolysaccharide (LPS ). Deze PAMPs worden herkend door pathogeen herkenning receptoren (PRRS), die worden gevonden op de cellen van het aangeboren immuunsysteem 4, 5, 6, 7. Een primaire signaal, LPS, in combinatie met een tweede signaal, ATP, noodzakelijk is voor de activering van de inflammasome, een multiprotein complex dat pro-IL-1β processen om haar rijpe, bioactieve vorm 4, 5, 6, 8, 9, 10.

De volbloed-test vereist slechts een minimale steekproef manipulatie tot cytokine productie te beoordelen in vergelijking met andere methoden die arbeidsintensieve isoleren en kweken van specifieke celpopulaties vereisen. Deze methode onderscheidt zich van andere volbloed stimulatie testen, maar eerder dan verdunnen monsters met een verhouding van RPMI media, voeren we een witte bloedcel direct tellen van verdund volbloed en daarom, het stimuleren van een bekend aantal witte bloedcellen in cultuur 2. De resultaten van deze bijzondere bloed-test aantonen dat er een nieuwe techniek bruikbaar in het ontrafelen van de patiënt cohorten die zich presenteren met autoinflammatory pathophysiologies.

Protocol

1. Het verzamelen van volbloed Verkrijgen van een minimum van 10 ml perifeer bloed uit de getroffen zowel individuen als leeftijd en geslacht gematchte gezonde controles. Veneus bloed moet worden verzameld in natrium Vacutainer bloedafnamebuisjes, in plaats van het gebruik van andere anticoagulantia zoals EDTA, en omgekeerd een paar keer een goede mengsel met de natrium-heparine te verzekeren. Merk op dat 10 ml is het minimale volume van de volbloed die nodig zijn voor plating monsters in duplo voor deze test…

Discussion

De gehele beschreven bloed-test is een eenvoudige methode die beter nabootst fysiologische omstandigheden in vergelijking met andere technieken die celisolatie en uitgebreide steekproef verwerking en manipulatie zou vereisen. Deze methode maakt gebruik van de Cellometer Vision met AO te witte bloedcellen tellen in volbloed en daarom biedt een manier om nauwkeurig te standaardiseren op basis van samples cel aantallen.

Er dient te worden opgemerkt dat voor deze test, vol bloed moet worden getr…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit onderzoek werd ondersteund door de Intramurale Research Program van het Nationaal Instituut van artritis en spier-en huidziekten van de National Institutes of Health.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Sodium Heparin Blood Collection Tubes   BD 366480  
RPMI 1640 Media   GIBCO 21870-100  
Acridine Orange   Invitrogen A3568  
Cellometer Vision   Nexcelom Bioscience   Contact company for instrument information
Cellometer Cell Counting Chambers   Nexcelom Bioscience CHT4-SD100  
24-well Tissue Culture Plate   Corning Costar 3524  
Ultra Pure E. coli K12 LPS   InvivoGen tlrl-eklps  
Adenosine 5´-tripohasphate disodium salt hydrate   Sigma-Aldrich A26209  
Bio-plex 200 system   Bio-Rad   Contact company for instrument information
Bio-Plex Pro human cytokine x-plex assay   Bio-Rad   x-plex assays are custom made according to specified cytokines of interest

References

  1. Martinon, F., Mayor, A., Tschopp, J. The inflammasomes: guardians of the body. Annu Rev Immunol. 27, 229-265 (2009).
  2. Thurm, C. W., Halsey, J. F. Measurement of cytokine production using whole blood. Curr Protoc Immunol. 66, 7-18 .
  3. Mariathasan, S. Cryopyrin activates the inflammasome in response to toxins and ATP. Nature. 440, 228-232 (2006).
  4. Gabay, C., Lamacchia, C., Palmer, G. IL-1 pathways in inflammation and human diseases. Nat Rev Rheumatol. 4, 232-241 (2010).
  5. Franchi, L., Elgenbrod, T., Muñoz-Planillo, R., Nuñez, G. The inflammasome: a caspase-1-activation platform that regulates immune responses and disease pathogenesis. Nat Immunol. 3, 241-247 (2009).
  6. Sims, J. E., Smith, D. E. The IL-1 family: regulators of immunity. Nat Rev Immunol. 2, 89-102 (2010).
  7. Haug, R., Joø, G. B., Westvik, A. B., Kierulf, P. Chemokine production and pattern recognition receptor (PRR) expression in whole blood stimulated with pathogen-associated molecular patterns (PAMPs. Cytokine. 32, 304-315 (2005).
  8. Netea, M. G. Differential requirement for the activation of the inflammasome for processing and release of IL-1bin monocytes and macrophages. Blood. 113, 2324-2335 (2009).
  9. Latz, E. The inflammasomes: mechanisms of activation and function. Curr Opin Immnol. 22, 28-33 (2010).
  10. Masters, S. L., Simon, A., Aksentijevich, I., Kastner, D. L. Horror autoinflammaticus: the molecular pathophysiology of autoinflammtory disease. Annu Rev Immunol. 27, 621-668 (2009).
check_url/2662?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yang, B., Pham, T., Goldbach-Mansky, R., Gadina, M. Accurate and Simple Measurement of the Pro-inflammatory Cytokine IL-1β using a Whole Blood Stimulation Assay. J. Vis. Exp. (49), e2662, doi:10.3791/2662 (2011).

View Video