Non chirurgica instillazione di topi con analisi dei polmoni e dei linfonodi polmonari drenante mediante citometria di flusso
Summary
Illustriamo non chirurgica consegna dei materiali di prova nei polmoni di topi anestetizzati attraverso la trachea. Questo metodo permette l'esposizione dei polmoni a patogeni batterici e virali, citochine, anticorpi, perline, prodotti chimici o coloranti. Approfondiremo la raccolta ed elaborazione dei polmoni e dei linfonodi polmonari drenante (LDLNs) per la citometria a flusso.
Abstract
Fagociti come i macrofagi alveolari e le cellule dendritiche del polmone (PMA) in continuo campione antigeni dagli spazi alveolari dei polmoni. PMA, in particolare, sono noti a migrare verso i nodi polmone drenaggio linfatico (LDLNs) dove sono presenti gli antigeni inalati alle cellule T di avviare un'adeguata risposta immunitaria a una varietà di immunogeni 1,2. Alle interazioni modello tra i polmoni e gli antigeni aeree nei topi, gli antigeni può essere somministrato per via intranasale 1,3,4, intratracheally 5 o sotto forma di aerosol 6. Consegna da ogni tracciato prevede distinte competenze tecniche e limitazioni che devono essere considerati prima di progettare un esperimento. Per esempio, l'esposizione intranasale e aerosol antigeni offre ad entrambi i polmoni e il tratto respiratorio superiore. Quindi antigeni possono accedere al tessuto linfoide associato nasale (NALT) 7, potenzialmente complicare l'interpretazione dei risultati. Inoltre, la deglutizione, lo starnuto e la frequenza respiratoria del mouse può anche portare a incongruenze nelle dosi consegnate. Anche se il coinvolgimento del tratto respiratorio superiore può essere preferito per alcuni studi, può complicare esperimenti concentrandosi sugli eventi specificamente avviata nei polmoni. In questa impostazione, il intratracheale (it) percorso è preferibile in quanto offre materiali di prova direttamente nei polmoni e ignora il NALT. Molti protocolli di iniezione coinvolgere l'intubazione sia cieco della trachea attraverso la cavità orale o esposizione chirurgica della trachea per accedere ai polmoni. Qui, descriviamo un semplice, coerente, metodo non chirurgico per esso l'instillazione. L'apertura della trachea è visualizzata utilizzando un laringoscopio e un ago piegato sonda viene quindi inserito direttamente nella trachea di consegnare il innoculum. Abbiamo anche descrivere le procedure per la raccolta ed elaborazione dei LDLNs e polmoni per l'analisi del traffico di antigeni in citometria a flusso.
Protocol
Discussion
Abbiamo utilizzato questo protocollo per studiare il traffico di spore di Bacillus anthracis dai polmoni al LDLNs. Per le applicazioni simili, il numero di particelle consegnato ai polmoni dovrebbero essere scelti con cura in modo che il materiale iniettato può essere rilevato nel LDLNs mediante citometria di flusso. Abbiamo anche utilizzato con successo questo metodo per il trasferimento adottivo di cellule e l'etichettatura delle popolazioni specifiche cellule del polmone utilizzando anticorpi fluorescen…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Materials
| Name of the reagent | Company | Catalogue number | Comments (optional) |
|---|---|---|---|
| 70μm Cell stariner | BD | ||
| Aniline Blue | Fisher | A967-25 | |
| Animal Feeding needle | Popper and Sons Inc | 7920 | |
| Collagenase | Sigma | C2139 | |
| Collagenase TypeIV | Worthington | ||
| Collagenase D | Roche | 11088974103 | |
| DPBS | Invitrogen | 14190 | |
| Fluoresbrite YG Microspheres (0.5μm) | Polysciences, Inc | 17152 | |
| HBSS without Calcium chloride and magnesium chloride | Invitrogen | 14170 | |
| Ketamine HCl (100mg/ml) | Hospira Inc | ||
| Laryngoscope Blade | PennCentury, Inc | For Model LS-1 | Refer to www.penncentury.com |
| Lightweight Fiber Optic Laryngoscope | WelchAllyn | 80814 | |
| Red Fluorescent Beads (0.5μm) | Invitrogen | F8812 | For i.p injection |
| Xylazine (100mg/ml) | Lloyd Laboratories |
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