Summary

器官培養のための無傷牛テール椎間板の準備

Published: February 02, 2012
doi:

Summary

このプロトコルは、のための器官培養のための尾骨ウシ椎間板のための収穫技術を示しています。<em> in vitroで</em>器官培養。

Abstract

椎間板(IVD)は椎骨に椎を接続する脊椎の関節です。それは、背骨の荷重を伝達し、背骨に柔軟性を与えるために機能します。線維輪(AF)で取り囲む最も内側の髄核(NP)、および両側の椎体にNPとAFを接続する2つの軟骨終板:それは3つの区画から構成している。おそらく変性椎間板疾患(DDD)と椎間板ヘルニアが原因で椎間板の痛みは私達の現代社会における主要な問題として同定されている。 IVD変性の機序を調べるために、ライブディスクの細胞を用いたin vitro器官培養系非常に魅力的です。そのままウシ尾骨IVDsのin vitro培養十分に制御生理学的および機械的な環境におけるメカノ生物学的側面 ​​の研究を可能にする、関連するモデルシステム、に進んでいる。牛テールIVDsは高い数値で、比較的容易に得ることができますdは、細胞密度、細胞集団と寸法に関する人間の腰椎IVDsと非常によく似ています。栄養経路が明らかに凝固した血液によってブロックされたしかし、軟骨終板と骨のエンドプレートを保持し、前のウシ尾IVD収穫テクニックは、文化の1〜2日後に失敗しました。 IVDsが最大の無血管器官である、したがって、NPの細胞への栄養素は、隣接する椎体から毛細管芽を経由して拡散にもっぱら依存しています。エンドプレートの表面上に骨の破片と血餅の存在は、ディスクと妥協の細胞の生存の中心に栄養の拡散を妨げることができる。当社グループは、汚染のリスクが低いとアウトテールからIVDsを"クラック"することは比較的迅速なプロトコルを確立した。我々は、血栓や切削屑を除去し、非常に効率的に栄養の拡散経路を再オープン外科ジェット洗浄システムを使用して、切りたての骨端板の表面を透過することができますIVDの中心に。脊椎骨の両側の成長板の存在は、避けるべきと前の文化に削除する必要があります。このビデオでは、我々は準備中に重要なステップを概説し、無料の腫れ文化で14日間高い細胞生存率を維持し成功した器官培養するキーを示しています。培養時間は、適切な機械的な環境が機械的荷重のバイオリアクターを使用して維持することができるときに拡張することができる。ここで示した手法は、ブタ、ヒツジ及びウサギの尾と腰IVD分離など他の動物種に拡張することができます。

Protocol

1。椎間板の収穫皮膚の存在は、汚染の可能性(図2)を増加させるので、全体の長さのウシの尾は皮なしで可能であれば、地元の食肉処理場から得られる。 大きなまな板を準備して、カッティングボード(図2)の上に滅菌ワークステーションと楽器を準備。 滅菌ガーゼは、55mmのクエン酸ナトリウムを含む0.9%塩化ナトリウムで湿らせ、6ウェルプレートの各ウェルに入?…

Discussion

成功した器官培養のための最初のステップは、外植片が汚染されるべきではないことを確認することです。この手順を始める前に尾にはスキンは適用されるべきである。無菌室に持ち込むあらゆる動物の毛は、汚染の点で問題である可能性があります。牛テールは、理想的に(これは初期の細胞の生存に影響を与える)可能な限り新鮮なはずです。さらに、betadineの洗浄工程は、さらなる汚?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

このプロジェクトは、スイス国立科学財団(SNF#310030-127586/1)によってサポートされていました。

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
Fresh bovine intervertebral disc tissue from bovine tails, from local slaughter house (ideally within hours post-mortem and without skin).
Pulsavac Plus AC System Zimmer inc., Switzerland 00-5150-486-01 Best performance with the hip-spray head and with AC power supply (the one with the 8 AA battery pack does also work but is less convenient)
High Capacity Fan Spray w/Splash Shield, 12.7cm length Zimmer inc., Switzerland 00-5150-175-00 There are several spray heads available, we tested this one successfully
Scalpel blades #22 and #10 Swann-Morton, England #10: 0201
#22: 0208
 
Scalpel blade holder # 3 and #4 Hausmann, Germany #3: 06.103.00
#4: 06.104.00
 
Lutz industrial blade Lutz, Germany 1022.0884  
Phosphate buffered Saline (PBS) Invitrogen, Switzerland 10010-023  
Dulbecco’s Modified Eagle Medium (DMEM) Gibco, Switzerland 11960-044  
Lactated Ringer’s solution (without glucose) Bichsel, Switzerland 133 0002  
6-well multi-well plate TPP, Switzerland 92006  
Betadine solution Mundipharma, Switzerland 10055025  
Surgical skin marker Porex Surgical, Switzerland 9560  
Large cutting board     Any brand is possible

References

  1. Lee, C. R., Iatridis, J. C., Poveda, L., Alini, M. In vitro organ culture of the bovine intervertebral disc: effects of vertebral endplate and potential for mechanobiology studies. Spine (Phila Pa 1976). 31, 515-522 (1976).
  2. Chan, S. C. W., Gantenbein-Ritter, B., Leung, V. Y., Chan, D. Cryopreserved intervertebral disc with injected bone marrow-derived stromal cells: a feasibility study using organ culture. Spine. J. 10 (6), 486-496 (2010).
  3. Chan, S. C., Ferguson, S. J., Wuertz, K., Gantenbein-Ritter, B. Biological Response of the Intervertebral Disc to Repetitive Short Term Cyclic Torsion. Spine (Phila Pa 1976). , (2011).
  4. Gantenbein-Ritter, B., Sprecher, C. M., Chan, S., Illien-Jünger, S., Grad, S. Confocal imaging protocols for live/dead staining in three-dimensional carriers. Methods Mol. Biol. 740, 127-140 (2011).
  5. Gantenbein-Ritter, B., Potier, E., Zeiter, S., van der Werf, M. Accuracy of three techniques to determine cell viability in 3D tissues or scaffolds. Tissue Engineering Part C Methods. 14, 353-358 (2008).
  6. Rasband, W. S. . ImageJ. , (1997).
  7. Haschtmann, D., Stoyanov, J. V., Ettinger, L., Nolte, L. P., Ferguson, S. J. Establishment of a novel intervertebral disc/endplate culture model: analysis of an ex vivo in vitro whole-organ rabbit culture system. Spine. 31, 2918-2925 (2006).
  8. Gantenbein, B., Grünhagen, T., Lee, C. R., van Donkelaar, C. C. An in vitro organ culturing system for intervertebral disc explants with vertebral endplates: a feasibility study with ovine caudal discs. Spine. 31, 2665-2673 (2006).
  9. Korecki, C. L., Kuo, C. K., Tuan, R. S., Iatridis, J. C. Intervertebral disc cell response to dynamic compression is age and frequency dependent. J. Orthop. Res. 27, 800-806 (2009).
  10. Korecki, C. L., MacLean, J. J., Iatridis, J. C. Dynamic compression effects on intervertebral disc mechanics and biology. Spine (Phila Pa 1976). 33, 1403-1409 (1976).
  11. Jim, B., Steffen, T., Moir, J., Roughley, P., Haglund, L. Development of an intact intervertebral disc organ culture system in which degeneration can be induced as a prelude to studying repair potential. European Spine Journal. , 1-11 (2011).
check_url/3490?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chan, S. C., Gantenbein-Ritter, B. Preparation of Intact Bovine Tail Intervertebral Discs for Organ Culture. J. Vis. Exp. (60), e3490, doi:10.3791/3490 (2012).

View Video