Summary

ヒト細胞から分泌タンパク質の生産のための便利で一般式プラットフォーム

Published: July 31, 2012
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Summary

ポストヒトゲノム時代において、ネイティブコンフォメーションにおける組換えタンパク質の可用性は、構造、機能および治療の研究開発に不可欠である。ここでは、テストと組換えタンパク質のさまざまなを生成するために使用することができるヒト胚性腎臓293T細胞における大規模タンパク質発現系を記述します。

Abstract

細菌における組換えタンパク質の発現、一般的にE.大腸菌は 、蛋白質のミリグラム量の発現のための最も成功した戦略であった。しかし、原核生物宿主は、多くの人間は、ウイルスまたは真核生物の外国の高分子の毒性に起因するタンパク質、タンパク質の折り畳み機構の違い、または特定のCO-または細菌の翻訳後修飾の不足のための発現に応じてではありません。酵母(P.パストリスもしくはS.セレビシエ )1,2、バキュロウイルス感染昆虫(S. frugiperdaまたは T NI)セル3、 および in vitro翻訳システムにおいて 、無細胞に基づく発現系は、2,4は正常するために使用されている哺乳動物のタンパク質を生成します。直感的に、ベストマッチは、適切な翻訳後修飾を含む組換えタンパク質の生産を確保するために哺乳動物宿主を使用することです。哺乳動物細胞株の数(ヒト胚キッドネイ(HEK)S V40 larget T-抗原(COS)、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)などを運ぶO riginで293、C V-1細胞)は、正常ヒトタンパク質の数ミリグラムの量を過剰発現するように利用されてきた5-9しかし、哺乳動物細胞を使用することの利点は、多くの場合、安定発現細胞株を開発するコストが高く、特殊な実験装置の要件は、低タンパク質の収量と、長い時間によって打ち消されています。コストを低く維持しながら、より高速な収率と生産するタンパク質を増加し、多くの学術的、商業的な研究所の主要な要因である。

ここでは、時間とコスト効率に優れ、接着HEK 293T細胞から分泌されるヒトタンパ​​ク質の発現のための2つの部分から成る手順を説明します。このシステムは、構造生物物理学的および生化学的研究のために機能的な蛋白質のミリグラム量にグラムを生産することが可能です。最初の部分は、目的の遺伝子の複数の構文が生成さです。並行して一時的に小さなスケールの付着HEK 293T細胞にトランスフェクションのd。細胞培養培地中に分泌された組換えタンパク質の検出および分析は、ベクトルでエンコードされたタンパク質精製タグに対する市販の抗体を用いたウェスタンブロット分析によって実行されます。その後、大規模なタンパク質の生産に適したコンストラクトを一過性に10層の細胞工場でポリエチレンイミン(PEI)を用いてトランスフェクトされる。馴化培地リットルボリュームに分泌されるタンパク質は、抗-HAアフィニティークロマトグラフィーによって精製してタンジェンシャルフローろ過を使用して、管理しやすい量に集中している。このプラットフォームのユーティリティは、サイトカイン、サイトカイン受容体、細胞表面受容体、本質的な制限要因、およびウイルスの糖蛋白質のミリグラム量を表現する能力によって証明されています。このメソッドは、成功した三量体エボラウイルス糖タンパク質5,10の構造決定で使用されています。

<p cタンパク質の品質と機能性を最大化しながら少女= "jove_contentは">結論として、このプラットフォームは、使用、速度とスケーラビリティの容易さを提供しています。また、標準加湿CO 2インキュベーター以外の追加の機器は、必要ありません。この手順は、急速にそのようなタンパク質複合体、抗原と抗体、ワクチン、または困難な細胞株の形質導入のためのアデノウイルスまたはレンチウイルスの生産のためのウイルス様粒子の生産の共発現として、より複雑なシステムに拡張することができます。

Protocol

1。準備作業 – 構築および細胞培養プロトコルを開始する前に、目的の遺伝子は、哺乳動物細胞における発現のためにコドンが最適化されるべきであり、標準的な分子生物学的手法を用いて適当な発現ベクターにクローニングした。成功した発現のための最高のチャンスを確実にするために、目的の遺伝子の複数の亜種を生成する必要があります。多くの哺乳動物発現ベク…

Discussion

10層の細胞の工場は、蛋白質のミリグラム量の生産のための効果的な容器です。このようなローラーボトル、振盪フラスコまたはスピナーフラスコのような他の伝統的な船、上のセルファクトリを使用する主な利点は、追加の実験装置を購入する必要がないということです。標準的なCO 2インキュベーター(〜6.0立方フィート)は、簡単に4つの10層の細胞工場( 図2)を収…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、JEL、およびHA、FCA、とJDCのトロントフェローシップの大学にオンタリオ州のHIV治療ネットワーク研究オペレーティング·グラント(ROG-G645)と保健研究の新しい奨励賞のカナダ研究所(MSH-113554)でサポートされていました。著者らは、細胞を提供するためのスクリップス研究所(カリフォルニア州ラホーヤ)、エボラウイルスGPの発現ベクターと一般的なアドバイスでマーニーフスコ、Dafnaアベルソン博士とエリカOllmannサファイアに感謝します。

Materials

Name of reagent Company Catalogue number Comments
Alkaline phosphatase (BCIP/NBT) liquid substrate solution Sigma B6404  
Antibiotic/Antimycotic, 100X Invitrogen 15240062  
Anti-HA affinity matrix, clone 3F10 Roche 1815016  
Anti-HA murine mAb, clone 16B12 Covance MMS-101P  
Cell culture flask, T75 cm2 tissue culture treated Corning 430641  
Cell culture flask, T225 cm2 tissue culture treated Corning 431082  
Cell culture plates,6-well tissue culture treated Corning 3516  
Cell factory, 10-layer CellSTACK Corning 3312  
Centramate Omega 5K Cassette Pall OS005C12  
Centramate Omega 30K Cassette Pall OS030C12  
Chromatography glass column, 1.0×10 cm Kontes 4204001010  
Ciprofloxacin Sigma 17850  
CO2      
Dulbecco’s modified Eagle’s media (DMEM) Sigma D5796  
Fetal bovine serum (FBS), heat inactivated Invitrogen 12484-028  
FuGENE HD transfection reagent Promega 4709691001  
GeneJuice transfection reagent EMD/Merck 70967-6  
Glycine Sigma G8898  
Goat anti-mouse IgG F(ab’)2 alkaline Thermo Scientific 31324  
phosphatase-conjugated antibody      
Hemagglutinin (HA) peptide, 100 mg Genscript custom synthesis  
(sequence: YPYDVPDYA; 95% purity)      
HEK 293T cells ATCC CRL-11268  
Household bleach (4% w/v sodium hypochlorite) various brands are available    
Immobilon-P PVDF membrane Millipore IPVH07850  
MiniPrep plasmid purification kit, PureLink Quick Invitrogen K2100-11  
MaxiPrep plasmid purification kit, PureLink HiPure Invitrogen K2100-07  
NaN3 Sigma S8032  
pDISPLAY expression vector Invitrogen V660-20  
Penicillin/streptomycin (pen/strep), 100X Invitrogen 15140-122  
Phosphate-buffered saline (PBS), sterile 1X Sigma D8537  
Polyethyleneimine (PEI), linear 25 kDa Polyscience 23966  
Skim milk dry powder Carnation    
Stericup-GP PES vacuum filtration unit, Millipore SCGPU05RE  
0.22 μm, 500 ml capacity      
Trypan blue Invitrogen 15250061  
Trypsin-EDTA, 0.05% (w/v) Invitrogen 25300-054  
Tween-20 Sigma P7949  
Valproic acid Sigma P4543  
Centramate tangential flow system Pall    
CO2 humidified incubator, standard 6.0 cu. ft. various brands are available    
Electrophoresis and transfer unit various brands are available    
Incubator, 37 °C various brands are available    

References

  1. Celik, E., Calik, P. Production of recombinant proteins by yeast cells. Biotechnol. Adv. , (2011).
  2. Yokoyama, S. Protein expression systems for structural genomics and proteomics. Curr. Opin. Chem. Biol. 7, 39-43 (2003).
  3. Nettleship, J. E., Assenberg, R., Diprose, J. M., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. Recent advances in the production of proteins in insect and mammalian cells for structural biology. J. Struct. Biol. 172, 55-65 (2010).
  4. Carlson, E. D., Gan, R., Hodgman, C. E., Jewett, M. C. Cell-free protein synthesis: Applications come of age. Biotechnol. Adv. , (2011).
  5. Lee, J. E. Structure of the Ebola virus glycoprotein bound to an antibody from a human survivor. Nature. 454, 177-182 (2008).
  6. Bowden, T. A. Structural basis of Nipah and Hendra virus attachment to their cell-surface receptor ephrin-B2. Nat. Struct. Mol. Biol. 15, 567-572 (2008).
  7. Evans, M. J., Hartman, S. L., Wolff, D. W., Rollins, S. A., Squinto, S. P. Rapid expression of an anti-human C5 chimeric Fab utilizing a vector that replicates in COS and 293 cells. J. Immunol. Methods. 184, 123-138 (1995).
  8. Ye, J. High-level protein expression in scalable CHO transient transfection. Biotechnol. Bioeng. 103, 542-551 (2009).
  9. Wurm, F. M. Production of recombinant protein therapeutics in cultivated mammalian cells. Nat Biotechnol. 22, 1393-1398 (2004).
  10. Lee, J. E., Fusco, M. H., Hessell, A. J., Burton, D. R., Saphire, E. O. Techniques and tactics used in determining the structure of trimeric, prefusion Ebola virus GP. Acta Cryst. 65, 1162-1180 (2009).
  11. Aricescu, A. R. Eukaryotic expression: developments for structural proteomics. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. 62, 1114-1124 (2006).
  12. Aricescu, A. R., Lu, W., Jones, E. Y. A time- and cost-efficient system for high-level protein production in mammalian cells. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. D62, 1243-1250 (2006).
  13. Chang, V. T. Glycoprotein structural genomics: solving the glycosylation problem. Structure. 15, 267-273 (2007).
  14. Lee, J. E., Fusco, M. H., Saphire, E. O. An efficient platform for screening expression and crystallization of glycoproteins produced in human cells. Nature Protocols. 4, 592-604 (2009).
  15. Nettleship, J. E., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. The production of glycoproteins by transient expression in Mammalian cells. Methods Mol. Biol. 498, 245-263 (2009).
  16. Neil, S. J., Zang, T., Bieniasz, P. D. Tetherin inhibits retrovirus release and is antagonized by HIV-1 Vpu. Nature. 451, 425-430 (2008).
  17. Nakamura, Y. Heterodimerization of the IL-2 receptor beta- and gamma-chain cytoplasmic domains is required for signalling. Nature. 369, 330-333 (1994).
  18. Wang, X., Rickert, M., Garcia, K. C. Structure of the quaternary complex of interleukin-2 with its alpha, beta, and gammac receptors. Science. 310, 1159-1163 (2005).

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Cite This Article
Aydin, H., Azimi, F. C., Cook, J. D., Lee, J. E. A Convenient and General Expression Platform for the Production of Secreted Proteins from Human Cells. J. Vis. Exp. (65), e4041, doi:10.3791/4041 (2012).

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