Summary

En praktisk og generelle uttrykket plattform for produksjon av utskilles Proteiner fra menneskeceller

Published: July 31, 2012
doi:

Summary

I det post-menneskelige genomikk æra, er tilgjengeligheten av rekombinante proteiner i innfødt konformasjonen avgjørende strukturelle, funksjonelle og terapeutisk forskning og utvikling. Her beskriver vi en test-og storskala protein uttrykk system i humane embryonale nyre 293T celler som kan brukes til å produsere en rekke rekombinante proteiner.

Abstract

Rekombinant protein uttrykk i bakterier, typisk E. coli, har vært den mest vellykkede strategi for milligram mengde uttrykk av proteiner. Men prokaryote vertene er ofte ikke så egnet for uttrykk av menneskelige, virale eller eukaryote proteiner grunn toksisitet av den utenlandske macromolecule, forskjeller i protein folding maskiner, eller på grunn av mangel på spesielle co-eller post-translasjonell modifikasjoner i bakterier. Expression systemer basert på gjær (P. pastoris eller S. cerevisiae) 1,2, Baculovirus-infisert insekt (S. frugiperda eller T. Ni) 3 celler, og celle-free in vitro oversettelse systemer 2,4 har blitt brukt til å produsere pattedyr proteiner. Intuitivt er det beste kamp å bruke en pattedyr vert å sikre produksjon av rekombinante proteiner som inneholder de riktige posttranslasjonelle modifikasjoner. En rekke pattedyr cellelinjer (humane embryonale KidNey (HEK) 293, har C V-1 celler i O rigin bærer S V40 larget T-antigen (COS), kinesisk hamster ovarieceller), og andre) blitt brukt til å overuttrykker milligram mengder av en rekke menneskelige proteiner 5-9. Men fordelene ved å bruke pattedyrceller ofte motvirkes av høyere kostnader, krav til spesialisert laboratorieutstyr, lavere protein avkastningsmål, og lange tider for å utvikle stabile uttrykk cellelinjer. Økende avkastning og produsere proteiner raskere, samtidig som vi holder kostnadene nede, er viktige faktorer for mange akademiske og kommersielle laboratorier.

Her beskriver vi en tid-og kost-effektiv, todelte prosedyre for uttrykket av utskilt menneskelige proteiner fra heftende hek 293T celler. Dette systemet er i stand til å produsere mikrogram til milligram mengder funksjonell protein for strukturelle, biofysiske og biokjemiske studier. Den første delen, flere konstruksjoner av genet av interesse er produsererd parallelt og forbigående tilført inn heftende hek 293T celler i liten skala. Påvisning og analyse av rekombinant protein skilles ut i cellekultur medium er utført ved Western blot analyse ved hjelp av kommersielt tilgjengelige antistoffer rettet mot en vektor-kodet proteinrensing tag. Deretter er egnede konstruksjoner for storskala protein produksjon forbigående tilført hjelp Polyethyleneimine (PEI) i 10-lags cellefabrikker. Proteiner utskilt inn liter volumer med aircondition medium er konsentrert i håndterbare mengder ved hjelp tangential flyt filtrering, etterfulgt av rensing ved anti-HA affinitet kromatografi. Nytten av denne plattformen er bevist av dens evne til å uttrykke milligram mengder av cytokiner, cytokin reseptorer, reseptorer på celleoverflaten, iboende restriksjoner faktorer, og viral glykoproteiner. Denne metoden ble også brukt med hell i det strukturelle fastsettelse av trimeric ebolavirus glykoprotein 5,10.

<p cLass = "jove_content"> Som konklusjon, tilbyr denne plattformen brukervennlighet, hastighet og skalerbarhet samtidig maksimere protein kvalitet og funksjonalitet. Dessuten er det ikke ekstra utstyr, annet enn en standard fuktet CO 2 inkubator, som kreves. Denne prosedyren kan raskt utvides til systemer av større kompleksitet, som co-uttrykk for protein komplekser, antigener og antistoffer, produksjon av viruslignende partikler for vaksiner, eller produksjon av adenoviruses eller lentiviruses for transduksjon av vanskelige cellelinjer.

Protocol

1. Forberedelse Arbeid – konstruksjoner og cellekulturer Før du starter protokollen, bør genet av interesse være kodon-optimalisert for uttrykk i pattedyrceller, og klonet inn i en passende uttrykk vektor ved hjelp av standard molekylærbiologiske teknikker. For å sikre høyest mulig sjanse for vellykket uttrykk, bør flere varianter av genet av interesse bli generert. Mange pattedyr uttrykk vektorer er tilgjengelig kommersielt og har ulike rensing tags (polyhistidine, hemagglutinin, strep…

Discussion

De 10-lags cellefabrikker er en effektiv fartøy for produksjon av milligram mengder protein. En stor fordel med å bruke cellen fabrikken over andre tradisjonelle fartøyer, for eksempel roller flasker, rist kolber eller sluk flakonger, er at de ikke krever kjøp av ytterligere laboratorieutstyr. En standard CO 2 inkubator (~~~HEAD=NNS 6.0 cu. Ft) vil lett plass til fire 10-lags cellefabrikker (Fig. 2). I tillegg har disse fartøyene krever mindre arbeid og plass enn retter, flakonger eller …

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbeidet ble støttet av en Ontario HIV Behandling Network Forskning driftstilskudd (ROG-G645) og Canadian Institutes of Health Research New Investigator Award (MSH-113554) til JEL, og University of Toronto Fellowships til HA, FCA, og JDC. Forfatterne ønsker å takke Marnie Fusco, Dafna Abelson og Dr. Erica Ollmann Saphire ved The Scripps Research Institute (La Jolla, CA) for å gi celler, ebolavirus GP uttrykk vektor og generelle råd.

Materials

Name of reagent Company Catalogue number Comments
Alkaline phosphatase (BCIP/NBT) liquid substrate solution Sigma B6404  
Antibiotic/Antimycotic, 100X Invitrogen 15240062  
Anti-HA affinity matrix, clone 3F10 Roche 1815016  
Anti-HA murine mAb, clone 16B12 Covance MMS-101P  
Cell culture flask, T75 cm2 tissue culture treated Corning 430641  
Cell culture flask, T225 cm2 tissue culture treated Corning 431082  
Cell culture plates,6-well tissue culture treated Corning 3516  
Cell factory, 10-layer CellSTACK Corning 3312  
Centramate Omega 5K Cassette Pall OS005C12  
Centramate Omega 30K Cassette Pall OS030C12  
Chromatography glass column, 1.0×10 cm Kontes 4204001010  
Ciprofloxacin Sigma 17850  
CO2      
Dulbecco’s modified Eagle’s media (DMEM) Sigma D5796  
Fetal bovine serum (FBS), heat inactivated Invitrogen 12484-028  
FuGENE HD transfection reagent Promega 4709691001  
GeneJuice transfection reagent EMD/Merck 70967-6  
Glycine Sigma G8898  
Goat anti-mouse IgG F(ab’)2 alkaline Thermo Scientific 31324  
phosphatase-conjugated antibody      
Hemagglutinin (HA) peptide, 100 mg Genscript custom synthesis  
(sequence: YPYDVPDYA; 95% purity)      
HEK 293T cells ATCC CRL-11268  
Household bleach (4% w/v sodium hypochlorite) various brands are available    
Immobilon-P PVDF membrane Millipore IPVH07850  
MiniPrep plasmid purification kit, PureLink Quick Invitrogen K2100-11  
MaxiPrep plasmid purification kit, PureLink HiPure Invitrogen K2100-07  
NaN3 Sigma S8032  
pDISPLAY expression vector Invitrogen V660-20  
Penicillin/streptomycin (pen/strep), 100X Invitrogen 15140-122  
Phosphate-buffered saline (PBS), sterile 1X Sigma D8537  
Polyethyleneimine (PEI), linear 25 kDa Polyscience 23966  
Skim milk dry powder Carnation    
Stericup-GP PES vacuum filtration unit, Millipore SCGPU05RE  
0.22 μm, 500 ml capacity      
Trypan blue Invitrogen 15250061  
Trypsin-EDTA, 0.05% (w/v) Invitrogen 25300-054  
Tween-20 Sigma P7949  
Valproic acid Sigma P4543  
Centramate tangential flow system Pall    
CO2 humidified incubator, standard 6.0 cu. ft. various brands are available    
Electrophoresis and transfer unit various brands are available    
Incubator, 37 °C various brands are available    

References

  1. Celik, E., Calik, P. Production of recombinant proteins by yeast cells. Biotechnol. Adv. , (2011).
  2. Yokoyama, S. Protein expression systems for structural genomics and proteomics. Curr. Opin. Chem. Biol. 7, 39-43 (2003).
  3. Nettleship, J. E., Assenberg, R., Diprose, J. M., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. Recent advances in the production of proteins in insect and mammalian cells for structural biology. J. Struct. Biol. 172, 55-65 (2010).
  4. Carlson, E. D., Gan, R., Hodgman, C. E., Jewett, M. C. Cell-free protein synthesis: Applications come of age. Biotechnol. Adv. , (2011).
  5. Lee, J. E. Structure of the Ebola virus glycoprotein bound to an antibody from a human survivor. Nature. 454, 177-182 (2008).
  6. Bowden, T. A. Structural basis of Nipah and Hendra virus attachment to their cell-surface receptor ephrin-B2. Nat. Struct. Mol. Biol. 15, 567-572 (2008).
  7. Evans, M. J., Hartman, S. L., Wolff, D. W., Rollins, S. A., Squinto, S. P. Rapid expression of an anti-human C5 chimeric Fab utilizing a vector that replicates in COS and 293 cells. J. Immunol. Methods. 184, 123-138 (1995).
  8. Ye, J. High-level protein expression in scalable CHO transient transfection. Biotechnol. Bioeng. 103, 542-551 (2009).
  9. Wurm, F. M. Production of recombinant protein therapeutics in cultivated mammalian cells. Nat Biotechnol. 22, 1393-1398 (2004).
  10. Lee, J. E., Fusco, M. H., Hessell, A. J., Burton, D. R., Saphire, E. O. Techniques and tactics used in determining the structure of trimeric, prefusion Ebola virus GP. Acta Cryst. 65, 1162-1180 (2009).
  11. Aricescu, A. R. Eukaryotic expression: developments for structural proteomics. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. 62, 1114-1124 (2006).
  12. Aricescu, A. R., Lu, W., Jones, E. Y. A time- and cost-efficient system for high-level protein production in mammalian cells. Acta. Crystallogr. D Biol. Crystallogr. D62, 1243-1250 (2006).
  13. Chang, V. T. Glycoprotein structural genomics: solving the glycosylation problem. Structure. 15, 267-273 (2007).
  14. Lee, J. E., Fusco, M. H., Saphire, E. O. An efficient platform for screening expression and crystallization of glycoproteins produced in human cells. Nature Protocols. 4, 592-604 (2009).
  15. Nettleship, J. E., Rahman-Huq, N., Owens, R. J. The production of glycoproteins by transient expression in Mammalian cells. Methods Mol. Biol. 498, 245-263 (2009).
  16. Neil, S. J., Zang, T., Bieniasz, P. D. Tetherin inhibits retrovirus release and is antagonized by HIV-1 Vpu. Nature. 451, 425-430 (2008).
  17. Nakamura, Y. Heterodimerization of the IL-2 receptor beta- and gamma-chain cytoplasmic domains is required for signalling. Nature. 369, 330-333 (1994).
  18. Wang, X., Rickert, M., Garcia, K. C. Structure of the quaternary complex of interleukin-2 with its alpha, beta, and gammac receptors. Science. 310, 1159-1163 (2005).
check_url/4041?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Aydin, H., Azimi, F. C., Cook, J. D., Lee, J. E. A Convenient and General Expression Platform for the Production of Secreted Proteins from Human Cells. J. Vis. Exp. (65), e4041, doi:10.3791/4041 (2012).

View Video