Summary

Гетеротипические Трехмерные<em> In Vitro</em> Моделирование Стромальные-эпителиальных взаимодействий во время посвящения яичников Рак и прогресс

Published: August 28, 2012
doi:

Summary

Мы описываем методологии для установления<em> В пробирке</em> Гетеротипические трехмерных моделей содержащие яичников фибробластов и нормальной поверхности яичников или раком яичников эпителиальных клеток. Мы обсудим использование этих моделей для изучения стромальных-эпителиальных взаимодействий, которые происходят во время развития рака яичников.

Abstract

Эпителиального рака яичников (EOCs) являются ведущей причиной смерти от злокачественных гинекологических в западных обществах. Несмотря на успехи хирургического лечения и улучшения на основе платины химиотерапии, наблюдается небольшое улучшение в EOC выживаемость в течение более четырех десятилетий 1,2. В то время как I этап опухоли имеют 5-летнюю выживаемость> 85%, выживаемость этап III / IV заболевания <40%. Таким образом, высокий уровень смертности для EOC может быть существенно уменьшена, если опухоль была обнаружена на ранней, более поддающихся лечению, стадиях 3-5. В настоящее время молекулярно-генетические и биологические основы раннего развития стадии заболевания изучена плохо. В частности, мало известно о роли микроокружения опухоли во время посвящения; но известные факторы риска для EOCs (например, возраст и четности) предполагают, что микроокружение играет ключевую роль в начале генезиса EOCs. Поэтому мы разработали трехмерную гетеротипические моделейкак нормальный яичник и ранней стадии рака яичников. Для нормального яичника, мы совместно культивируемых нормальных поверхности яичников эпителиального (IOSE) и нормальных стромальных фибробластов (INOF) клетки, увековеченный retrovrial трансдукции каталитической субъединицы теломеразы человека холофермента (hTERT), чтобы продлить срок службы этих клеток в культуре. Для моделирования ранних стадиях яичников эпителиального трансформации клеток, избыточная экспрессия онкогена CMYC в IOSE клетки, опять совместно культивировали с INOF клеток. Эти гетеротипические модели были использованы для изучения влияния старения и старения на трансформации и вторжение в эпителиальных клетках. Здесь мы опишем методологические шаги в развитии этих трехмерных моделей; эти методики не являются специфическими для развития нормальной ткани яичников и рака яичников, и может быть использована для изучения других типов тканей, где стромальные и эпителиальные клетки взаимодействия являются фундаментальными аспектом поддержания тканей и ди-Сиз развития.

Protocol

На рисунке 1 показано обзор рабочего процесса описаны ниже. 1. Выделение нормальных фибробластов яичников и продление продолжительности жизни в пробирке с помощью избыточной экспрессии каталитической субъединицы холофермента hTERT Яичников ткан…

Discussion

Биология ранней стадии эпителиального рака яичников (EOC) еще плохо изучены. Возможно, одним из основных препятствий в этой области на протяжении многих лет было отсутствие понимания ткани конкретные истоки болезни, и о значимости роли микроокружения в EOC развития. За последние нескольк…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Это исследование было выполнено в Кек Школы медицины Университета Калифорнии, США, и Университетского колледжа в Лондоне, Великобритания. KL финансируется Национальным институтом здравоохранения гранта 5 до 19 лет CA148112-02. BG был профинансирован проект грант от Апелляционного Ева гинекологической онкологии благотворительность (Великобритания). Часть этой работы, проделанной на UCLH / UCL был частично финансируется Департаментом здравоохранения NIHR биомедицинских исследований схему финансирования центра.

Materials

Reagent Supplier Catalogue Number
PolyHEMA, suitable for cell culture Sigma Aldrich P3932
Molecular biology grade ethanol Sigma Aldrich E7023
Sterile water for cell culture VWR 12001-356
MCDB105 Sigma Aldrich M6395
Medium 199 Sigma Aldrich M2154
Hyclone Fetal bovine serum Thermo Scientific SH30088.03
Gentamicin Sigma Aldrich G1397
Amphotericin B Sigma Aldrich A2942
pBABE-hygro-hTERT Addgene 1773
PBS VWR 12001-766
0.25% trypsin-EDTA Invitrogen 25200-072
Cell strainer (40 or 70 μm) VWR 21008-949
21008-952
Anti-fibroblast surface protein antibody, clone 1B10 Sigma F4771
Anti-pan-cytokeratin antibody (C11) Santa Cruz sc-8018
Polybrene (hexadimethrine bromide) Sigma 107689
TeloTAGGG Telomerase PCR ELISAPLUS Roche 12013789001
TeloTAGGG Telomere Length Assay Roche 12209136001

Table 1. Reagents and Equipment Referred to in this study.

References

  1. Jelovac, D., Armstrong, D. K. Recent progress in the diagnosis and treatment of ovarian cancer. CA Cancer J. Clin. , (2011).
  2. Office for National Statistics. . Cancer Statistics registrations: registrations of cancer diagnosed in 2008. , (2011).
  3. Köbel, M., Kalloger, S. E., Santos, J. L. Tumor type and substage predict survival in stage I and II ovarian carcinoma: insights and implications. Gynecol. Oncol. 116, 50-56 (2010).
  4. Köbel, M., Kalloger, S. E., Boyd, N. Ovarian carcinoma subtypes are different diseases: implications for biomarker studies. PLoS Med. 5, e232 (2008).
  5. Smith, L. H., Morris, C. R., Yasmeen, S. Ovarian cancer: can we make the clinical diagnosis earlier. Cancer. 104, 1398-1407 (2005).
  6. Aviv, A., Hunt, S. C., Lin, J., Cao, X., Kimura, M., Blackburn, E. Impartial comparative analysis of measurement of leukocyte telomere length/DNA content by Southern blots and qPCR. Nucleic Acids Res. 39, e134 (2011).
  7. Kim, N. W., Wu, F. Advances in quantification and characterization of telomerase activity by the telomeric repeat amplification protocol (TRAP. Nucleic Acids Res. 25, 2595-2597 (1997).
  8. Lawrenson, K., Grun, B., Benjamin, E. Senescent fibroblasts promote neoplastic transformation of partially transformed ovarian epithelial cells in a three-dimensional model of early stage ovarian cancer. Neoplasia. 12, 317-325 (2010).
  9. Lawrenson, K., Benjamin, E., Turmaine, M. In vitro three-dimensional modelling of human ovarian surface epithelial cells. Cell Prolif. 42, 385-393 (2009).
  10. Lawrenson, K., Sproul, D., Grun, B. Modelling genetic and clinical heterogeneity in epithelial ovarian cancers. Carcinogenesis. 32, 1540-1549 (2011).
  11. Grun, B., Benjamin, E., Sinclair, J. Three-dimensional in vitro cell biology models of ovarian and endometrial cancer. Cell Prolif. 42, 219-228 (2009).
  12. Zietarska, M., Maugard, C. M., Filali-Mouhim, A., Alam-Fahmy, M., Tonin, P. N., Provencher, D. M., Mes-Masson, A. M. Molecular description of a 3D in vitro model for the study of epithelial ovarian cancer (EOC. Mol. Carcinog. 46, 872-885 (2007).
  13. Shield, K., Ackland, M. L., Ahmed, N., Rice, G. E. Multicellular spheroids in ovarian cancer metastases: Biology and pathology. Gynecol Oncol. 113, 143-148 (2009).
  14. Dafou, D., Grun, B., Sinclair, J. Microcell-mediated chromosome transfer identifies EPB41L3 as a functional suppressor of epithelial ovarian cancers. Neoplasia. 12, 579-589 (2010).
  15. Levanon, K., Crum, C., Drapkin, R. New insights into the pathogenesis of serous ovarian cancer and its clinical impact. J. Clin. Oncol. 26, 5284-5293 (2008).
  16. Kurman, R. J., Shih, I. e. M. Molecular pathogenesis and extraovarian origin of epithelial ovarian cancer–shifting the paradigm. Hum. Pathol. 42, 918-931 (2011).
check_url/4206?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lawrenson, K., Grun, B., Gayther, S. A. Heterotypic Three-dimensional In Vitro Modeling of Stromal-Epithelial Interactions During Ovarian Cancer Initiation and Progression. J. Vis. Exp. (66), e4206, doi:10.3791/4206 (2012).

View Video