Summary

Le poisson zèbre rapide et efficace génotypage utilisant la PCR avec haute résolution Melt analyse

Published: February 05, 2014
doi:

Summary

PCR combinée à l'analyse de fusion à haute résolution (AGRH) est démontré comme une méthode rapide et efficace de déterminer le génotype du poisson zèbre.

Abstract

Le poisson zèbre est un système de modèle vertébré puissant pour étudier le développement, la modélisation de la maladie, et en effectuant le criblage de médicaments. Récemment, une variété d'outils génétiques ont été mis en place, y compris des stratégies multiples pour induire des mutations et de générer des lignées transgéniques. Cependant, le dépistage à grande échelle est limitée par des méthodes de génotypage traditionnels, qui prennent beaucoup de temps et de main-d'œuvre. Nous décrivons ici une technique pour analyser les génotypes de poisson zèbre par PCR combinées avec l'analyse à haute résolution fusion (AGRH). Cette approche est rapide, sensible et peu coûteux, avec un risque plus faible d'objets de contamination. Le génotypage par PCR avec HRMA peut être utilisé pour des embryons ou des poissons adultes, y compris dans des protocoles de criblage à haut débit.

Introduction

Poisson zèbre (Danio rerio) est un système de modèle vertébré largement utilisé pour les études de développement et de modélisation de la maladie. Récemment, de nombreuses technologies transgéniques et de mutation ont été développés pour le poisson zèbre. Techniques de transgénèse rapides, généralement basés sur un système de transposon Tol2 1, ont été combinées avec une amélioration des options de clonage multiple pour l'assemblage de fragments d'ADN 2. Nucléases à doigts de zinc (ZFN) et transcription nucléases effectrices activateur comme (Talens) ont été utilisées pour cibler les lieux dans les cellules somatiques et germinales chez le poisson zèbre 3,4. Ces techniques peuvent générer efficacement des animaux génétiquement modifiés, avec la création de mutation à haute fréquence et la transmission de la lignée germinale 3,4.

Malgré ces avancées, les techniques de génotypage traditionnels chez le poisson zèbre limiter la puissance des outils de mutagenèse et la transgenèse. PCR suivie d'une électrophorèse sur gel, parfois combinée à RESTRICTIOn digestion avec des enzymes, est largement utilisée pour détecter la modification du génome, mais est longue et moins sensible pour identifier de petites insertions ou délétions. essais de sonde TaqMan ont des coûts initiaux élevés et nécessitent une optimisation soignée. Le séquençage des produits de PCR peut prendre plusieurs jours et n'est pas pratique pour le dépistage à grande échelle. longueur des fragments de restriction (RFLP) analyse ne peut discriminer SNP affectant un nombre limité de sites de reconnaissance des enzymes de restriction.

Analyse à haute résolution fusion (HRMA), un post-PCR méthode d'analyse en tube fermé, est un procédé récemment mis au point qui est rapide, sensible, peu coûteux, et aptes à la sélection de grands nombres d'échantillons. HRMA peut être utilisé pour détecter des SNP, les mutations et les transgènes 7.5. HRMA est basé sur la dénaturation thermique des ADN double brin, et chaque amplicon de PCR a une dissociation uniques (fondre) caractéristique 5. Les échantillons peuvent être victimes de discrimination en raison to leur composition différente de nucléotides, contenu GC, ou longueur, généralement en combinaison avec un colorant fluorescent qui se lie uniquement l'ADN double brin 8. Ainsi, HRMA peut distinguer différents génotypes sur la base des caractéristiques différentes à l'état fondu de courbe. Parce que HRMA utilise des réactifs à faible coût et est un processus post-PCR en une seule étape, il peut être utilisé pour des stratégies à haut débit. HRMA est non destructive, si suite à l'analyse des amplicons PCR peuvent être utilisés pour d'autres applications. HRMA a été appliqué dans de nombreux organismes, y compris les systèmes et les lignées cellulaires, les souris et les humains 9-11. Son utilisation a été récemment décrit dans le poisson zèbre pour détecter des mutations induites par les nucléases à doigt de zinc (ZFN) et Talens 6,12,13.

Dans cet article, nous décrivons comment effectuer HRMA basée sur la PCR chez le poisson zèbre embryonnaire et adulte (figure 1). Ce protocole est adapté pour détecter des SNP, les transgènes et les mutations, notamment single changements de paires de bases, des insertions ou des suppressions.

Protocol

Une. Préparation de l'ADN Préparer le tampon de lyse de l'ADN: 50 mM de KCl, 10 mM Tris-HCl pH 8,3, 0,3% de Tween 20, 0,3% de NP40. Ajouter fraîche protéinase K à une concentration finale de 1 mg / ml le jour de l'utilisation 12. collecte des tissus: Pour adultes pince poisson nageoire: Anesthésier les poissons: Placer le poisson dans 0,004% MS-222 (tricaine) solution. Attendez jusqu'à ce que le mouvement des branchies ralentit. Mettez le…

Representative Results

Le protocole peut être effectué pendant une seule journée ou dans des étapes séparées sur plusieurs jours (diagramme de flux de travail est représentée sur la figure 1). extraction de l'ADN est suivie par la fusion et l'analyse des amplicons PCR. Les températures pour la fusion de l'amplicon dépendent de la taille et de GC-contenu, mais en général, et de commencer à des températures de 50 ˚ C et 95 ˚ C terminales sont appropriées (figures 2A et 2B).<…

Discussion

PCR combinée avec HRMA est une technologie puissante pour le génotypage du poisson zèbre. Les avantages de cette approche sont sa vitesse, la robustesse et la sensibilité à détecter même des mutations ponctuelles. L'ensemble du protocole, à partir de la cassette d'analyse ailette pour faire fondre la courbe, peut être effectuée en moins de huit heures par une seule personne. De plus, la technique est susceptible de criblage à haut débit, ne nécessite pas l'utilisation de bromure d'éthidium,…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Nous remercions les membres des Blaschke, Grunwald, et Wittwer laboratoires pour obtenir des conseils et une assistance technique. Ce travail est soutenu par la Fondation PCMC, NIH R01 MH092256 et DP2 MH100008, et le Mars de Dimes Foundation subvention de recherche n ° 1-AF13-425, à JLB.

Materials

100 Reaction LightScanner Master Mix BioFire HRLS-ASY-0002 www.biofiredx.com Store at -20 °C 
Hard-Shell PCR 96-well BLK/WHT Plates Bio-Rad Laboratories HSP9665 www.bio-rad.com
Microseal 'B' Adhesive Seals Bio-Rad Laboratories MSB1001 www.bio-rad.com
96-Well LightScanner Instrument BioFire LSCN-ASY-0040 www.biofiredx.com
LightScanner Software with Call-IT 2.0 BioFire www.biofiredx.com
High-Resolution Melting Analysis 2.0 BioFire www.biofiredx.com
LightScanner Primer Design Software BioFire www.biofiredx.com
Vector NTI Software Invitrogen www.invitrogen.com
Tricaine
Paraformaldehyde

References

  1. Kawakami, K., Takeda, H., Kawakami, N., Kobayashi, M., Matsuda, N., Mishina, M. A transposon-mediated gene trap approach identifies developmentally regulated genes in zebrafish. Dev. Cell. 7 (1), 133-144 (2004).
  2. Kwan, K. M., Fujimoto, E., et al. The Tol2kit: a multisite gateway-based construction kit for Tol2 transposon transgenesis constructs. Dev. Dyn. 236 (11), 3088-3099 (2007).
  3. Sander, J. D., Cade, L., et al. Targeted gene disruption in somatic zebrafish cells using engineered TALENs. Nat. Biotechnol. 29 (8), 697-698 (2011).
  4. Huang, P., Xiao, A., Zhou, M., Zhu, Z., Lin, S., Zhang, B. Heritable gene targeting in zebrafish using customized TALENs. Nat. Biotechnol. 29 (8), 699-700 (2011).
  5. Vossen, R. H. A. M., Aten, E., Roos, A., Den Dunnen, J. T. High-resolution melting analysis (HRMA): more than just sequence variant screening. Hum. Mutation. 30 (6), 860-866 (2009).
  6. Dahlem, T. J., Hoshijima, K., et al. Simple methods for generating and detecting locus-specific mutations induced with TALENs in the zebrafish genome. PLoS Genet. 8 (8), (2012).
  7. Liew, M., Pryor, R., et al. Genotyping of single-nucleotide polymorphisms by high-resolution melting of small amplicons. Clin. Chem. 50 (7), 1156-1164 (2004).
  8. Herrmann, M. G., Durtschi, J. D., Bromley, L. K., Wittwer, C. T., Voelkerding, K. V Amplicon DNA melting analysis for mutation scanning and genotyping: cross-platform comparison of instruments and dyes. Clin. Chem. 52 (3), 494-503 (2006).
  9. Carrillo, J., Martínez, P., et al. High resolution melting analysis for the identification of novel mutations in DKC1 and TERT genes in patients with dyskeratosis congenita. Blood Cell. Mol. Dis.. 49 (3-4), 140-146 (2012).
  10. Thomsen, N., Ali, R. G., Ahmed, J. N., Arkell, R. M. High resolution melt analysis (HRMA); a viable alternative to agarose gel electrophoresis for mouse genotyping. PloS one. 7 (9), (2012).
  11. Vorkas, P. A., Poumpouridou, N., Agelaki, S., Kroupis, C., Georgoulias, V., Lianidou, E. S. PIK3CA hotspot mutation scanning by a novel and highly sensitive high-resolution small amplicon melting analysis method. J. Mol. Diagn. 12 (5), 697-704 (2010).
  12. Parant, J. M., George, S. A., Pryor, R., Wittwer, C. T., Yost, H. J. A rapid and efficient method of genotyping zebrafish mutants. Dev. Dyn. 238 (12), 3168-3174 (2009).
  13. Xing, L., Hoshijima, K., et al. Zebrafish foxP2 zinc finger nuclease mutant has normal axon pathfinding. PloS one. 7 (8), (2012).
  14. Raghavendra, A., Siji, A., Sridhar, T. S., Phadke, K., Vasudevan, A. Evaluation of High Resolution Melting analysis as an alternate tool to screen for risk alleles associated with small kidneys in Indian newborns. BMC Nephrol. 12 (1), 60 (2011).
  15. Herrmann, M. G., Durtschi, J. D., Wittwer, C. T., Voelkerding, K. V Expanded instrument comparison of amplicon DNA melting analysis for mutation scanning and genotyping. Clin. Chem. 53 (8), 1544-1548 (2007).
  16. Wittwer, C. T. High-Resolution Genotyping by Amplicon Melting Analysis Using LCGreen. Clin. Chem. 49 (6), 853-860 (2003).
  17. Dimitrakopoulos, L., Vorkas, P. A., Georgoulias, V., Lianidou, E. S. A closed-tube methylation-sensitive high resolution melting assay (MS-HRMA) for the semi-quantitative determination of CST6 promoter methylation in clinical samples. BMC Cancer. 12, 486-48 (2012).
  18. Jeng, K., Gaydos, C. A., et al. Comparative analysis of two broad-range PCR assays for pathogen detection in positive-blood-culture bottles: PCR-high-resolution melting analysis versus PCR-mass spectrometry. J. Clin. Microbiol. 50 (10), 3287-3292 (2012).
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Cite This Article
Xing, L., Quist, T. S., Stevenson, T. J., Dahlem, T. J., Bonkowsky, J. L. Rapid and Efficient Zebrafish Genotyping Using PCR with High-resolution Melt Analysis. J. Vis. Exp. (84), e51138, doi:10.3791/51138 (2014).

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