Summary

Histerektomi Örneklerden İlköğretim İnsan endometrial stroma hücrelerinde Kurulması İçin İki Yöntem

Published: May 23, 2014
doi:

Summary

Histerektomi örneklerden primer endometrial stromal hücre kültürü sistemlerinin kurulması, önceki araştırma amaçlayan geniş bir dizi takip için değerli bir biyolojik teknik ve çok önemli bir adımdır. Burada, insan hasta cerrahi olarak kesilmiş dokuları endometriyal stromal kültürleri oluşturmak için kullanılan iki yöntem tarif eder.

Abstract

Pek çok çabalar vitro hücre kültür sistemleri kurmak için tahsis edilmiştir. Bu sistemler, in vivo işlemler geniş bir model numarası tasarlanmıştır. İnsan endometriyal örnekleri kaynaklanan hücre kültürü sistemleri bir istisna vardır. Uygulamalar normal siklik fizyolojik süreçler böyle jinekolojik kanserler, bulaşıcı hastalıklar ve üreme eksiklikleri gibi endometrial patolojilerin değişir. Burada, biz, cerrahi rezeksiyon, endometrial histerektomi örneklerden birincil endometrial stromal hücreler kurmak için iki yöntem sağlar. İlk yöntem, "kazıma yöntemi" olarak adlandırılır ve ikinci yöntem adlandırılır ise, cerrahi ya da tıraş bıçakları kullanılarak, mekanik kazıma içeren bir "tripsin yöntemi." Bu ikinci yöntem, hücrelerin ayrılmasını teşvik etmek için birincil ve tripsin enzimatik aktivitesini kullanır hücre akıbet. Biz dijital görüntü ve mikroskobu ile adım-adım yöntemi açıklamak. Ayrıca providkantitatif gerçek zamanlı polimeraz zincir reaksiyonları (qPCR) ve immünfloresansta (IF) üzerinden endometrial stromal hücre hatları doğrulamak için e örnekleri.

Introduction

Insan uterus gövdesi üç tabakadan, perimetrium (ya da salgılı zarı), myometrium ve endometrium oluşur. Bu tabakaların her biri ayırt endometrial hücre serilerini kurmak için önemli bir adımdır. Perimetrium rahim en dış tabaka ve ince, seröz hücrelerden oluşur. Myometrium kalın, orta rahim tabakası ve yumuşak kas hücrelerinin oluşur. Endometrium rahim iç tabaka olarak tanımlanmıştır ve epitel ve stromal hücre popülasyonları içerir.

Endometrium ayrıca olan kök hücre popülasyonunun yaklaşık olarak her 28 günde bir 1 functionalis tabaka yeniden doldurmak için hipotezi basalis tabaka halinde bölünmüştür. İnsan endometrium tabakası functionalis hormonları dolaşan yanıt önemli biyokimyasal ve morfolojik değişikliklere uğrar. Bu hormonlar hipofiz bezi ve yumurtalıklar türetilir.

bir üreme döngüsü koordine üretim ve hormonlar sonuçların serbest. Üreme döngüsü potansiyel embriyo implantasyon olaylar için endometrium hazırlamak için tasarlanmıştır. İnsanlarda, üreme döngüsü "adet döngüsü" olarak bilinen ve üç evreye ayrılır – çoğalma, salgı ve adet. Salgı faz functionalis olgunlaşması ile işaretlenmiş ise çoğalma fazı functionalis endometrial tabakanın proliferasyonunu içerir. Spesifik olarak, hücre dışı değişiklikler, salgılar ve hücresel farklılaşma potansiyel implantasyonu işaret etmektedir. Implantasyon salgı aşamasının bitiminden önce oluşmazsa, functionalis endometrium tabakası adet aşamasında dökülüyor. Âdet ve functionalis tabakasının dökülmesini tetikleyen olayların önemi hala tartışılmaktadır. İnsanlarda, bu adet bilinen özel bir orta salgı faz farklılaşması olayın sonucu olduğunu ortaya edilmiştir"spontane sidualizasyonu" 2 olarak. Bu yazıda, iki endometrial stromal hücre izolasyon yöntemleri için detaylı metodoloji sağlamak ve bu yaklaşımların etkinliğini göstermek için immünofloresans ve dijital görüntülerin bir arada kullanın. Ayrıca, yaygın olarak uygulanır endometriyal stromal hücre izolasyonu teyit etmek için kendiliğinden desidualizasyon in vitro modelde kullanılan a.

Protocol

Bu yazıda kullanılan histerektomi örnekleri IRB-HSR # 14424 sayılı Üniversite IRB-onaylı etik protokolü ile uyum içinde toplanmıştır. Klinik Kaynak 1. Örnek Edinme Başlamadan önce hükümeti ve kurum-temelli etik kuralları ve onay belgeleri edinmek. Steril şartlarda tüm adımları Davranış. Numune hemen kültüründe işlenemez 4 ° C de, 50 ml bir tüp içinde ortam (RPMI ya da DMEM / yüksek glukozlu) hasta türetilen dokuları korur. Numu…

Representative Results

Protokol bölümünde vurgulandığı gibi, insan doku kullanımı ve hazırlarken tüm kurumsal hükümet altında yöntemleri ve etik kurallara yapmak için emin olun. "Kazıma yöntemi" genel iş akışı bir örnek (Şekil 1A) ve primer endometrial kültürleri kurmak için kullanılan "tripsin metodu" (Şekil 1B) bu yazının da dahildir. Bu yöntemler Protokol bölümünde ayrıntılı olarak tarif …

Discussion

Diğer gruplar kolajenaz 4,12,13,15-18 kullanan çoğu endometriyal stromal kültürleri, hazırlanması için bir yöntem tarif adapte edilmiştir. Bu yazıda, ekonomik nedenler ve tripsin ve / veya jilet uygun kullanılabilirliği için bizim laboratuvarda tarafından kullanılan her ikisi de iki basitleştirilmiş temel endometrial stromal kültür yöntemleri için metodoloji ve kanıt sağladı.

Bizim iki yöntem kıyaslarken, hem başarıyla uygulanabilir birincil kültürle…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Biz onların görüntüleme ve mikroskop ekipman kullanımı için Dr Thao'nun Dang ve onun laboratuar üyelerinin ortak çabaları teşekkür ederim. Biz de rahim dokusu ile bize sağlamak için Biorepository ve Doku Araştırma Tesisi (BTRF) çekirdek, Jeff Harper ve Virginia Üniversitesi sakinlerine teşekkür ederim. Biz Şematik Bakış ile yardım için Karol szlachta teşekkür ederim.

Materials

0.25 Trypsin or 0.05% Trypsin  Hyclone  SH3023602 or SH30004202  
1.7 micro Centrifuge Tube   Genesee Scientific  22-272A 
1µl,20µl, 200ml and 1000µl Pipette   Genesee Scientific  24-401,24-402, 24-412, 24-430 
15ml Conical Tube  Hyclone  339650
50ml Conical Tube  Hyclone  339652
6cm Cell Culture Dish  Thermo scientific   12-556-002 
8 well Chambers  Thermo Scientific  AB-4162 
Acetate  Fisher scientific  C4-100 
AMV RT Enzyme/Buffer  Bio Labs  M077L 
Bovine Serum Albumin (BSA)  Fisher Scientific  BP-1605-100 
Buffered Zinc Formalin  Thermo  59201ZF 
Charcoal strip FBS  Fisher  NC9019735  
Chloroform  Fisher Scientific  BP1145-1
Cover slip  Fisher Brand   12-544D 
Cyclic AMP (cAMP)  Sigma  B7880
DMEM/High Glucose  Hyclone  SH30243FS 
dNTP  Bioline  BIO-39025 
Donkey Anti Goat -TRITC  Santa Cruz  SC-3855 
Donkey Serum  Jackson’s lab   017-000-002 
E Cadherin Antibody   Epitomics  1702-1
Ethanol  Fisher Scientific   BP2818-1
Fetal Bovine Serum (FBS)  Fisher Scientific 03-600-511 
Fungizone Amphotericin B  Gibco  15290-018 
GAPDH Probe  Life Technologies  HS99999905 
Glycogen  5Prime  2301440
Goat Anti Mouse -FITC  Jackson’s Lab  115-096-003 
Isopropanol  Fisher Scientific  BP2618-1
Kanamycin   Fisher Scientific  BP906-5 
Medroxyprogesterone acetate (MPA)  Sigma  M1629
MeOH (Methanol)  Fisher Scientific  A4-08-1 
Mounting Media (w/DAPI)  Vector Labratories  H-1500 
N6 DNA Oligos  Invitrogen 
Number 15 Scraper   BD  371615
Pan Cytokeratin  Mouse mAB  Cell Signaling   4545
PBS (phosphate buffered saline)  Fisher Scientific  BP-399-4 
Penicillin-Streptomycin Glutamine Solution 100X   Hyclone   SV30082.01 
PML Anti Goat Anti body  Santa Cruz  SC-9862 
Primer(s)  Eurofins 
RPMI  Hyclone   SH30027FS 
RPMI (Phenol free)  Gibco  11835
Sybr Green   Thermo Scientific  AB-4162 
Taqman  Thermo  AB-4138
Trizol  Life Technologies  15596018
Vimentin Antibody  Epitomics  4211-1

References

  1. Heller, D., Heller, D. . in The endometrium: a clinicopathologic approach. , 56-75 (1994).
  2. Emera, D., Romero, R., Wagner, G. The evolution of menstruation: a new model for genetic assimilation: explaining molecular origins of maternal responses to fetal invasiveness. Bioessays. 34, 26-35 (2011).
  3. Gudjonsson, T., Villadsen, R., Ronnov-Jessen, L., Petersen, O. W. Immortalization protocols used in cell culture models of human breast morphogenesis. Cell Mol Life Sci. 61, 2523-2534 (2004).
  4. Brosens, J. J., Hayashi, N., White, J. O. Progesterone receptor regulates decidual prolactin expression in differentiating human endometrial stromal cells. Endocrinology. 140, 4809-4820 (1999).
  5. Jones, M. C., et al. Regulation of the SUMO pathway sensitizes differentiating human endometrial stromal cells to progesterone. Proc Natl Acad Sci U S A. 103, 16272-16277 (2006).
  6. Salamonsen, L. A., et al. Proteomics of the human endometrium and uterine fluid: a pathway to biomarker discovery. Fertil Steril. 99, 1086-1092 (2013).
  7. Haouzi, D., Dechaud, H., Assou, S., De Vos, J., Hamamah, S. Insights into human endometrial receptivity from transcriptomic and proteomic data. Reprod Biomed Online. 24, 23-34 (2012).
  8. Chen, J. I., et al. Proteomic characterization of midproliferative and midsecretory human endometrium. J Proteome Res. 8, 2032-2044 (2009).
  9. Talbi, S., et al. Molecular phenotyping of human endometrium distinguishes menstrual cycle phases and underlying biological processes in normo-ovulatory women. Endocrinology. 147, 1097-1121 (2006).
  10. Punyadeera, C., et al. Oestrogen-modulated gene expression in the human endometrium. Cell Mol Life Sci. 62, 239-250 (2005).
  11. Ponnampalam, A. P., Weston, G. C., Susil, B., Rogers, P. A. Molecular profiling of human endometrium during the menstrual cycle. Aust N Z J Obstet Gynaecol. 46, 154-158 (2006).
  12. Zhang, L., Rees, M. C., Bicknell, R. The isolation and long-term culture of normal human endometrial epithelium and stroma. Expression of mRNAs for angiogenic polypeptides basally and on oestrogen and progesterone challenges. J Cell Sci. 108 (1), 323-331 (1995).
  13. Richards, R. G., Brar, A. K., Frank, G. R., Hartman, S. M., Jikihara, H. Fibroblast cells from term human decidua closely resemble endometrial stromal cells: induction of prolactin and insulin-like growth factor binding protein-1 expression). Biol Reprod. 52, 609-615 (1995).
  14. Gellersen, B., Brosens, J. Cyclic AMP and progesterone receptor cross-talk in human endometrium: a decidualizing affair. J Endocrinol. 178, 357-372 (2003).
  15. Marsh, M. M., Hampton, A. L., Riley, S. C., Findlay, J. K., Salamonsen, L. A. Production and characterization of endothelin released by human endometrial epithelial cells in culture. J Clin Endocrinol Metab. 79, 1625-1631 (1994).
  16. Siegfried, J. M., Nelson, K. G., Martin, J. L., Kaufman, D. G. Histochemical identification of cultured cells from human endometrium. In Vitro. 20, 25-32 (1984).
  17. Rawdanowicz, T. J., Hampton, A. L., Nagase, H., Woolley, D. E., Salamonsen, L. A. Matrix metalloproteinase production by cultured human endometrial stromal cells: identification of interstitial collagenase, gelatinase-A, gelatinase-B, and stromelysin-1 and their differential regulation by interleukin-1 alpha and tumor necrosis factor-alpha. J Clin Endocrinol Metab. 79, 530-536 (1994).
  18. Dimitriadis, E., Robb, L., Salamonsen, L. A. Interleukin 11 advances progesterone-induced decidualization of human endometrial stromal cells. Mol Hum Reprod. 8, 636-643 (2002).
  19. Sakai, N., et al. Involvement of histone acetylation in ovarian steroid-induced decidualization of human endometrial stromal cells. J Biol Chem. 278, 16675-16682 (2003).
  20. Logan, P. C., Ponnampalam, A. P., Steiner, M., Mitchell, M. D. Effect of cyclic AMP and estrogen/progesterone on the transcription of DNA methyltransferases during the decidualization of human endometrial stromal cells. Mol Hum Reprod. 19, 302-312 (2013).
  21. Tamura, I., et al. Induction of IGFBP-1 expression by cAMP is associated with histone acetylation status of the promoter region in human endometrial stromal cells. Endocrinology. 153, 5612-5621 (2012).
  22. . . American Society for Reproductive Medicine: Quick facts about infertility. , (2013).
  23. Salker, M., et al. Natural selection of human embryos: impaired decidualization of endometrium disables embryo-maternal interactions and causes recurrent pregnancy loss. PLoS One. 5, (2010).
check_url/51513?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jividen, K., Movassagh, M. J., Jazaeri, A., Li, H. Two Methods for Establishing Primary Human Endometrial Stromal Cells from Hysterectomy Specimens. J. Vis. Exp. (87), e51513, doi:10.3791/51513 (2014).

View Video