Summary

En microfluidic basert Elektrokjemisk biochip for Label-free DNA Hybridisering Analyse

Published: September 10, 2014
doi:

Summary

Vi presenterer en mikrofluidbasert elektro biochip for DNA hybridisering deteksjon. Etter ssDNA probe funksjon, er spesifisiteten, følsomhet, og deteksjonsgrense studert med komplementære og ikke-komplementære ssDNA mål. Resultatene illustrerer påvirkning av DNA-hybridise-hendelsene på elektrokjemisk system, med en deteksjonsgrense på 3,8 nM.

Abstract

Miniatyrisering av analytiske prosedyrer stasjonære inn i mikro-skala gir betydelige fordeler med hensyn til reaksjonstid, kostnad, og integrering av pre-behandlingstrinn. Utnytte disse enhetene mot analyse av DNA-hybridisering hendelser er viktig fordi det gir en teknologi for sanntids vurdering av biomarkører ved point-of-care for ulike sykdommer. Men når enheten fotavtrykk reduseres dominans av ulike fysiske fenomener øker. Disse fenomener påvirker fabrikasjon presisjon og pålitelighet drift av anordningen. Derfor, er det et stort behov for å fremstille nøyaktig og drive disse enhetene i en reproduserbar måte for å forbedre den samlede ytelsen. Her beskriver vi protokoller og de metoder som brukes for fabrikasjon og drift av et mikrofluidbasert elektrokjemisk biochip for nøyaktig analyse av DNA-hybridise-arrangementer. Den biochip er sammensatt av to deler: en microfluidic chip medtre parallelle mikrokanaler laget av polydimetylsiloksan (PDMS), og en 3 x 3 Arrayed elektrokjemisk mikro-brikken. De DNA hybridisering hendelser oppdages ved hjelp av elektro impedansspektroskopi (EIS) analyse. EIS analysen muliggjør overvåking av variasjoner av egenskapene til det elektrokjemisk system som er dominerende på disse lengdeskala. Med muligheten for å overvåke endringer i både kostnad overføring og diffusjon motstand med biosensor demonstrerer vi selektiviteten til komplementære ssDNA mål, en beregnet deteksjonsgrense på 3,8 nM, og en 13% kryssreaktivitet med andre ikke-komplementære ssDNA etter 20 min inkubasjon. Denne metodikken kan forbedre ytelsen av miniatyriserte enheter ved å belyse på oppførselen til diffusjon på mikro-skala regimet og ved å muliggjøre studier av DNA hybridisering hendelser.

Introduction

Microfluidic lab-on-a-chip (LOC) enheter gir mange fordeler i klinisk diagnostikk, miljøovervåking og biomedisinsk forskning. Disse anordninger anvender microfluidic kanaler for å kontrollere fluidstrøm til regioner av brikken, hvor en rekke forskjellige fremgangsmåter kan skje blant annet reagens blanding, basert bindende affinitet, signaltransduksjon, og celledyrkning 1-4. Microfluidics gir mange fordeler fremfor konvensjonelle kliniske diagnostiske verktøy som mikroplate lesere eller elektro gel shift-analyser. Microfluidic enheter krever 2 til 3 størrelsesordener (nanoliter i motsetning til mikroliter) færre reagenser for å utføre lignende analyser. Dessuten kan disse enhetene øke hastigheten ved hvilken noen biologiske hendelser oppstå på grunn av den mindre innesperring av artene innenfor kanalene 5,6. For det tredje kan sensorene bli integrert i microfluidic enheter ved hjelp av litografi og etsning teknikker, som kan gi label-free deteksjon. Til slutt, disse enhetene er billig å produsere og krever lite arbeide på en del av teknikeren for å operere 7-10.

Etikett-fri deteksjon vanligvis utføres ved hjelp av en optisk eller elektrisk transducer. Optiske enheter kan presentere bedre sensorytelse på grunn av lavere interferens med analytter i prøven. Likevel er resultatene deres kompromittert i tilfeller der prøven bakgrunn gjør det samme resonerende bølgelengde som sensor 11. Det er mange fordeler med å bruke elektriske signaler til å utføre biologiske og kjemiske gjenkjenning i microfluidic systemer. Fabrikasjonen er iboende mindre komplisert, siden disse sensorene vanligvis bare kreve mønstrede elektroder til å operere. I tillegg, kan elektriske signaler være direkte integrert med de fleste måleapparat, mens andre signalformer kan kreve en transduser for å konvertere signalet 12-15. Elektriske sensorer ofte måle endringer i impedance 16,17, kapasitans 18, eller redoks aktivitet 19. Men nye utfordringer presentert som disse systemene er miniatyrisert. De viktigste utfordringene for å overvinne inkluderer: sample (kjemiske interaksjoner mellom byggevarer og analytter inkludert kapillære krefter, overflateruhet,) lav signal-forberedelse og blanding av væsker (på grunn av lavt prøvevolum og Reynolds tall), fysiske og kjemiske påvirkninger, til-støy-forholdet (som produseres av det reduserte overflateareal og volum) 20 til 23, og potensiell forstyrrelse fra elektro-aktive analytter i komplekse biologiske prøver (f.eks, blod og spytt). Videre undersøkelser av disse effektene vil resultere i retningslinjer for en nøyaktig fabrikasjon og drift av disse enhetene i en reproduserbar måte som ville forbedre deres generelle ytelsen.

DNA hybridisering deteksjon brukes mye til å diagnostisere genetiske lidelser 24,25 og ulike former for CANCER 26. Hvert år blir flere stammer av influensa identifisert hos pasienter som bruker resultatene fra DNA diseringsteknikker 27. Influensavirus alene står for 36.000 dødsfall hvert år i USA 28.. Slike eksempler kan ha nytte av en benk-top microfluidic enhet som kan utføre de samme analyseteknikker som en plateleser eller gel shift analysen med lavt prøvevolum og til en brøkdel av kostnadene uten å ofre følsomhet eller spesifisitet. På grunn av de mange fordelene med etiketten-free elektro sensing, har det vært brukt mye for påvisning av DNA hybridisering hendelser 29,30. Et oppsett der makro-skala elektroder (i millimeterområdet) blir dyppet i begerglass med en oppløsning av interesse kan bli brukt til å gi svært sensitive data vedrørende bindingskinetikken av enkelt-trådede DNA-sekvensene til de samsvarende komplementære sekvenser. Nylig har det vært noen fremskritt i å innlemme elektro sensing i microfluidics for DNA-hybridisering. Utført studier om hybridisering kinetikk 31 og integrasjon av sensorer for deteksjon 15 i microfluidic kanaler. Imidlertid er det fortsatt eksisterer et behov for en hurtig høy gjennomstrømning mikrofluidenhet som kan analysere DNA-hybridi-hendelser i parallell uten kompliserte prøveprepareringstrinn.

Anordningen presenteres i dette arbeidet gir en plattform som gjør det mulig for flere interaksjoner som skal skjermes parallelt og uten kompliserte prøveprepareringstrinn. Vår protokoll presenterer hvordan microfluidic basert elektro biochips er microfabricated med mikroelektromekaniske systemer (MEMS) teknologi 32,33. Vi beskriver fremstillingsprosessen av både mikrofluid brikken, som består av polydimetylsiloksan (PDMS), og den elektrokjemiske brikken, som består av en oppstilling av elektroder. Den kjemiske funksjonalisering av den biochip med ssDNA sonder er også adressert. Endelig ABILligheten av biosensor for spesifikt å påvise og analysere ssDNA mål er demonstrert. Totalt sett er microfluidic basert elektro biochip en rask og høy gjennomstrømming analyseteknikken. Den kan brukes for å undersøke interaksjonen mellom biologiske molekyler, og som driver transdusere, og kan utnyttes i en rekke lab-på-en-chip-applikasjoner.

Protocol

1. microfabrication av mikrofluid Chip Forbered Elektrokjemisk Chip Mønster Gold Elektroder Skyll en blank 4 '' silisiumskive (prime grade kvalitet) med aceton, metanol og isopropanol ("AMI" ren). Skyll isopropanolen fra wafer med deionisert vann (DI), etterfulgt av tørking med N 2 pistol. Dyrk en 1 mikrometer tykt SiO 2 passivisering lag med plasma-forbedret kjemisk damp nedfall (PECVD) verktøyet. Gjør et innskudd på 200 et tykt lag med…

Representative Results

En styrbar og nøyaktig produksjonsprosess for det eksperimentelle enheten er vesentlig forskning. Den tillater forskere å få reproduserbare og høy gjennomstrømning eksperimenter. Her har vi vist en høy avkastning, høy reproduserbarhet microfabrication prosessen med en microfluidic basert elektro biochip (figur 1). Med en lav strykprosent, er det få enheter vist bonding problemer som fører til løsning lekkasje. For å validere den elektrokjemiske aktivitet av biochip, er cykliske voltammetri m?…

Discussion

Våre fremgangsmåte demonstrerer fremstilling av en mikrofluidbasert elektrokjemisk biochip og dens utnyttelse for DNA hybridi hendelser analyse. Gjennom en høy avkastning kontrollert microfabrication prosessen utvikler vi en enhet som består av mikrokanaler integrert med en rekke elektrokjemiske transdusere. Vi har utviklet kontrollerte prosessparametere for fotolitografisk fremgangsmåte for den elektrokjemiske chip og mikrofluidkanal formen gjennom en iterativ tilnærming. Disse trinnene gi retningslinjer for frem…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne erkjenner Robert W. Deutsch Foundation, Defense Threat Reduction Agency (DTRA), og National Science Foundation Emerging Frontiers in Research and Innovation (Efri) for økonomisk støtte. Forfatterne også takke Maryland Nanocenter og dens Fablab for renrom anlegget støtte.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Material
4'' Silicon wafer Ultrasil 4-5664 Single side polished; P-type; Boron doped; Orientation 1-0-0; Thickness 500 micron; Resistance 10-20 ohm*cm
Shipley 1813 photoresist ("PR1") Microchem positive photoresist
AZ5214 photoresist ("PR2") Hoechst Celanse positive photoresist
SU-8 50 photoresist ("PR3") Microchem negative photoresist
Gold etchant Transene TFA No dilution
Chromium etchant Transene 1020AC No dilution
PDMS elastomer Dow Corning 3097366 1004
PDMS curing agent Dow Corning 3097358 1004
Biopsy punching tool Healthlink BP20
Tygon flexible tubing Cole Parmer  R 3603 .015"
Tygon flexible adapter Cole Parmer  06417-41 .0625"
1 mL syringe Beckton-Dickenson 301025
Monobasic potassium phosphate Fluka 1551139
Potassium phosphate dibasic anhydrous Sigma RES20765-A7
Sodium chloride Sigma-Aldrich S7653
tris(2-carboxyethyl)phosphine Aldrich C4706
6-mercapto-1-hexanol Aldrich 451088
20x concentrated saline-sodium citrate buffer Sigma 93017
Potassium hexacyanoferrate(III) Aldrich 455946
Sodium ferrocyanide Aldrich CDS001589
Target ssDNA #1 Integrated DNA Technologies (IDT) 100 nmole DNA oligo 5’-/5ThioMC6-D/AAAGCTCCGATAGCGCTCCG
TGGACGTCCC-3’
Complementary ssDNA #1 Integrated DNA Technologies (IDT) 100 nmole DNA oligo 5’-GGGACGTCCACGGAGCGCTA
TCGGAGCTTT-3’
Target ssDNA #2 Integrated DNA Technologies (IDT) 100 nmole DNA oligo 5’-/5ThioMC6-D/ACGCGTCAGGTCATTGACGA
ATCGATGAGT-3’
Complementary ssDNA #2 Integrated DNA Technologies (IDT) 100 nmole DNA oligo 5’-ACTCATCGATTCGTCAATGA
CCTGACCCGT-3’
Target ssDNA #3 Integrated DNA Technologies (IDT) 100 nmole DNA oligo 5’-/5ThioMC6-D/ACCTAGATCCAGTAGTTAGA
CCCATGATGA-3’
Complementary ssDNA #3 Integrated DNA Technologies (IDT) 100 nmole DNA oligo 5’-TCATCATGGGTCTAACTACT
GGATCTAGGT-3’
Instrument
Plasma Enhanced Chemical Vapor Deposition (PECVD) Oxford Instruments PlasmaLab System 100 Chamber pressure 1000 mTorr, Tempreture 200 celsius degrees, RF power 20 W, Gasses: a) N2O flow rate 710 sccm; b) a composition of 5% SiH4 and 95% N2 gasses flow rate 170 sccm, SiO2 growth rate 690 Angstrom/minute.
DC sputtering unit AJA International ATC 1800-V For Chrome: Chamber pressure 10 mTorr, Argon flow rate 20 sccm, Supplied DC power 200 W, Sputter rate 10 nm/min. For Gold: Chamber pressure 10 mTorr, Argon flow rate 20 sccm, Supplied DC power 200 W, Sputter rate 36 nm/min.
E-beam evaporation system Denton Custom-built For Titanium: Chamber pressure <2E-6 Torr, Supplied power to the e-gun 7.5k W, Filament current 150-200 mA, Evaporation rate 6-10 Angstrom/second. For Platinum: Chamber pressure <2E-6 Torr, Supplied power to the e-gun 7.5k W, Filament current 150-200 mA, Evaporation rate 2-3 Angstrom/second. 
Potentiostat CH Instruments 660D
Syringe pump KD Scientific KDS230

References

  1. Hong, J., Edel, J. B., deMello, A. J. Micro- and nanofluidic systems for high-throughput biological screening. Drug Discov. Today. 14, 134-146 (2009).
  2. Sun, Y., Kwok, Y. C. Polymeric microfluidic system for DNA analysis. Anal. Chim. Acta. 556, 80-96 (2006).
  3. Xu, Y., Yang, X., Wang, E. Review: aptamers in microfluidic chips. Anal. Chim. Acta. 683, 12-20 (2010).
  4. Yang, W., Woolley, A. T. Integrated multiprocess microfluidic systems for automating analysis. J. Lab. Automat. 15, 198-209 (2010).
  5. Gervais, T., Jensen, K. F. Mass transport and surface reactions in microfluidic systems. Chem. Eng. Sci. 61, 1102-1121 (2006).
  6. Song, H., Ismagilov, R. F. Millisecond kinetics on a microfluidic chip using nanoliters of reagents. J. Am. Chem. Soc. 125, 14613-14619 (2003).
  7. Jiang, H., Weng, X. A., Li, D. Q. Microfluidic whole-blood immunoassays. Microfluid. Nanofluid. 10, 941-964 (2011).
  8. Dutse, S. W., Yusof, N. A. Microfluidics-based lab-on-chip systems in DNA-based biosensing: an overview. Sensors. 11, 5754-5768 (2011).
  9. Dittrich, P. S., Manz, A. Lab-on-a-chip: microfluidics in drug discovery. Nat. Rev. Drug Discov. 5, 210-218 (2006).
  10. Craighead, H. Future lab-on-a-chip technologies for interrogating individual molecules. Nature. 442, 387-393 (2006).
  11. Hunt, H. K., Armani, A. M. Label-free biological and chemical sensors. Nanoscale. 2, 1544-1559 (2010).
  12. Dukkipati, V. R., Pang, S. W. Integrated microfluidic system for DNA analysis. IEEE-NANO 2006. Sixth IEEE Conference on Nanotechnology. 1, 162-165 (2006).
  13. Fang, T. H., et al. Real-time PCR microfluidic devices with concurrent electrochemical detection. Biosens. Bioelectron. 24, 2131-2136 (2009).
  14. Pavlovic, E., et al. Microfluidic device architecture for electrochemical patterning and detection of multiple DNA sequences. Langmuir. 24, 1102-1107 (2008).
  15. Xu, X., Zhang, S., Chen, H., Kong, J. Integration of electrochemistry in micro-total analysis systems for biochemical assays: recent developments. Talanta. 80, 8-18 (2009).
  16. Cai, H., Lee, T. M. -. H., Hsing, I. M. Label-free protein recognition using an aptamer-based impedance measurement assay. Sensor. Actuat. B-Chem. 114, 433-437 (2006).
  17. Iliescu, C., Poenar, D. P., Carp, M., Loe, F. C. A Microfluidic device for impedance spectroscopy analysis of biological samples. Sensor. Actuat. B-Chem. 123, 168-176 (2007).
  18. Prakash, S. B., Abshire, P. Tracking cancer cell proliferation on a CMOS capacitance sensor chip. Biosens. Bioelectron. 23, 1449-1457 (2008).
  19. Yamaguchi, A., et al. Rapid fabrication of electrochemical enzyme sensor chip using polydimethylsiloxane microfluidic channel. Anal. Chim. Acta. 468, 143-152 (2002).
  20. Beebe, D. J., Mensing, G. A., Walker, G. M. Physics and applications of microfluidics in biology. Annu. Rev. Biomed. Eng. 4, 261-286 (2002).
  21. Mariella, R. Sample preparation: the weak link in microfluidics-based biodetection. Biomed. Microdevices. 10, 777-784 (2008).
  22. Bhushan, B. . Springer handbook of nanotechnology. , (2010).
  23. Ghallab, Y. H., Badawy, W. . Lab-on-a-chip: Techniques, circuits, and biomedical applications. , (2010).
  24. Chee, M., et al. Accessing genetic information with high-density DNA arrays. Science. 25, 610-614 (1996).
  25. Ma, K. -. S., Zhou, H., Zoval, J., Madou, M. DNA hybridization detection by label free versus impedance amplifying label with impedance spectroscopy. Sensor. Actuat. B-Chem. 114, 58-64 (2006).
  26. Ito, T., Hosokawa, K., Maeda, M. Detection of single-base mismatch at distal end of DNA duplex by electrochemical impedance spectroscopy. Biosens. Bioelectron. 22, 1816-1819 (2007).
  27. Kao, L. T. -. H., et al. Multiplexed detection and differentiation of the DNA strains for influenza A (H1N1 2009) using a silicon-based microfluidic system. Biosens. Bioelectron. 26, 2006-2011 (2011).
  28. Li, J., Chen, S., Evans, D. H. Typing and subtyping influenza virus using DNA microarrays and multiplex reverse transcriptase PCR. J. Clin. Microbiol. 39, 696-704 (2001).
  29. Gautier, C., et al. Hybridization-induced interfacial changes detected by non-faradaic impedimetric measurements compared to faradaic approach. J. Electroanal. Chem. 610, 227-233 (2007).
  30. Ma, Y., Jiao, K., Yang, T., Sun, D. Sensitive PAT gene sequence detection by nano-SiO2/p-aminothiophenol self-assembled films DNA electrochemical biosensor based on impedance measurement. Sensor. Actuat. B-Chem. 131, 565-571 (2008).
  31. Kim, J. H. -. S., Marafie, A., Jia, X. -. Y., Zoval, J. V., Madou, M. J. Characterization of DNA hybridization kinetics in a microfluidic flow channel. Sensor. Actuat. B-Chem. 113, 281-289 (2006).
  32. Dykstra, P. H., Roy, V., Byrd, C., Bentley, W. E., Ghodssi, R. Microfluidic electrochemical sensor array for characterizing protein interactions with various functionalized surfaces. Anal. Chem. 83, 5920-5927 (2011).
  33. Ben-Yoav, H., Dykstra, P. H., Bentley, W. E., Ghodssi, R. A Microfluidic-based electrochemical biochip for label-free diffusion-restricted DNA hybridization analysis. Biosens. Bioelectron. 38, 114-120 (2012).
  34. Wink, T., van Zuilen, S. J., Bult, A., van Bennekom, W. P. Self-assembled monolayers for biosensors. Analyst. 122, 43R-50R (1997).
  35. McEwen, G. D., Chen, F., Zhou, A. Immobilization, hybridization, and oxidation of synthetic DNA on gold surface: Electron transfer investigated by electrochemistry and scanning tunneling microscopy. Anal. Chim. Acta. 643, 26-37 (2009).
  36. Arinaga, K., Rant, U., Tornow, M., Fujita, S., Abstreiter, G., Yokoyama, N. The role of surface charging during the coadsorption of mercaptohexanol to DNA layers on gold: Direct observation of desorption and layer reorientation. Langmuir. 22, 5560-5562 (2006).
  37. Katz, E., Willner, I. Probing biomolecular interactions at conductive and semiconductive surfaces by impedance spectroscopy: Routes to impedimetric immunosensors, DNA-sensors, and enzyme biosensors. Electroanalysis. 15, 913-947 (2003).
check_url/51797?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ben-Yoav, H., Dykstra, P. H., Gordonov, T., Bentley, W. E., Ghodssi, R. A Microfluidic-based Electrochemical Biochip for Label-free DNA Hybridization Analysis. J. Vis. Exp. (91), e51797, doi:10.3791/51797 (2014).

View Video