Summary

Стратегии для слежения Воскресения, выживание феномен клеточной который меняет апоптоз

Published: February 16, 2015
doi:

Summary

The term anastasis refers to the phenomenon in which dying cells reverse a cell suicide process at a late stage, repair themselves, and ultimately survive. Here we demonstrate protocols for detecting and tracking cells that undergo anastasis.

Abstract

Воскресение Христово (греч для "растет к жизни") относится к восстановлению умирающих клеток. Прежде, чем эти клетки восстановить, они прошли через важные контрольно-пропускных пунктов апоптоза, в том числе митохондриальных фрагментации, освобождения митохондриального цитохрома С в цитозоль, активацией каспаз, конденсацию хроматина, повреждение ДНК, ядерной фрагментации, плазменные мембраны блеббинга, мобильный усадки, воздействия на клеточной поверхности фосфатидилсерина, и формирование апоптотических тел. Воскресение может произойти, если апоптические стимулы удаляются до смерти, позволяя тем самым умирающие клетки обратной апоптоз и потенциально другие механизмы смерти. Таким образом, Воскресение-видимому, включает физиологические процессы заживления, которые также могут поддержания поврежденные клетки не по назначению. Функции и механизмы Воскресения до сих пор неясны, препятствует частично ограниченных инструментов для обнаружения прошлые события, произошедшие после восстановления здоровых клеток. Стратегии для обнаружения AnastaSIS позволит исследования физиологических механизмов, опасности нежити клеток в патологии болезни и потенциальные терапевтические модулировать Воскресения. Здесь мы опишем эффективные стратегии с использованием живых микроскопии клеток и млекопитающих каспазы биосенсора для выявления и отслеживания Воскресения в клетках млекопитающих.

Introduction

Апоптоз (по-гречески "падения до смерти"), как правило, предполагается, что односторонний процесс заканчивается в самоубийство клеток 1-7. Генетический сбой про-смерти генов приводит к выживанию дополнительных клеток, которые могли бы умереть в целых животных, в том числе клеток, которые уже приступили к апоптоза 8,9. Кроме того, генетические манипуляции позволяют здоровые клетки млекопитающих, которые искусственно отображения "Съешь меня" сигналы или которые теряют адгезией к их внеклеточного матрикса, чтобы избежать смерти по всей фагоцитоза клеток или Энтоз, соответственно 10,11. Тем не менее, мы и другие показали, что без генетических манипуляций нормальных здоровых клетках млекопитающих и клеточные линии также может выйти из ранних стадиях апоптоза 12-15. Использование инструментов для отслеживания отдельных клеток, мы еще больше продемонстрировали восстановление от поздних стадиях апоптоза 12,13, после клетки были приняты важные контрольные точки, которые типичныLY отметить «точку невозврата» 2-6. Эти контрольно-пропускные пункты позднего апоптоза этапе, включают митохондриальную выпуск цитохрома С, активацию каспаз, фрагментация ядер, и формирование апоптотических телец. Мы приняли греческую составное слово "Воскресение", что означает "рост к жизни", чтобы описать это обращение апоптоза на грани гибели клеток 2-6.

Если весь процесс умирание-восстановление не наблюдалось изображений живых клеток, это вызов, чтобы отличить клетки, которые прошли Воскресения из клеток, которые никогда не испытывали апоптоза события. Десятилетия работы показали, что морфологические особенности клеток самоубийства путем апоптоза движет эволюционно консервативных биохимических и молекулярных событий 16-19. Эти мероприятия способствуют самоуничтожение клеток регулировать развития и homoeostatic процессы в одноклеточных и многоклеточных организмов путем устранения повреждения или dс опасными клетки 16-19. В то время как апоптотических клеток может быть легко отличить от стандартных морфологических, биохимических и молекулярных проявлений апоптоза 1,5,6,16,20, в настоящее время нет никакого известного маркера специфичные для Воскресения 12,13. Важно отметить, что клетки, которые подверглись анастасис оказаться нормальные здоровые клетки, и клетки, которые просто начать вспять апоптоз появляются как апоптические умирающих клеток 12,13. Таким образом, новые инструменты необходимы заключить с уверенностью сказать, что данный выживания клеток ранее испытывали активные апоптоза процессы.

Апоптоз, как правило, рассматривается в качестве необратимой каскада, потому что это быстрое и массовое процесса уничтожения. В то время как это может занять несколько минут до нескольких дней для некоторых клеток, чтобы начать апоптоз, как только митохондрии выпустили апоптогенных такие факторы, как цитохром С в цитозоль 21,22, каспазы может быть активирована в течение 5 минут 23,24, а затем цитоплазматических иядерная конденсация течение 10 мин 25-27, и гибель клеток вскоре после 25-27. Активированные каспазы организовать апоптоз путем расщепления и инактивации ключевых структурных и функциональных компонентов для целей клеточной сноса 2,28, такие как эндонуклеазы ингибитора DFF45 / ИАП 29,30. Каспазы активировать проапоптотического факторы, такие как член BID BCL-2 семейства, которые транслоцируется митохондрий содействовать митохондрий высвобождается цитохром С. 31-32. Активность каспазы также приводит к воздействию клеточной поверхности фосфатидилсерина, как «Съешь меня» сигнала для продвижения полном охвате смерти клеток макрофагами или соседними клетками посредством фагоцитоза 33. Кроме того, апоптические события оказывают митохондрии неблагополучных, нарушая клеточные биоэнергетику и метаболизм 34,35,36. Таким образом, выход из такого уничтожения интуитивно кажется маловероятным.

В отличие от оригинала ожидатьдимости клетки могут повернуть вспять процесс апоптоза клеточной смерти, даже на поздней стадии. Путем непрерывного мониторинга судьбу умирают клетки в культуре, мы наблюдали обратимость конце стадии апоптоза в диапазоне первичных клеток и клеточных линий 12,13. Удаление смертной стимула позволила восстановить от явных признаков апоптоза, таких как митохондриальной фрагментации, конденсации хроматина, повреждение ДНК, плазматической мембраны, блеббинга, клеточной поверхности контакта фосфатидилсерина, выпуск митохондриальной цитохром с, активации каспазы, ядерной фрагментации, мобильный усадки, и формирование апоптотических телец. Эти наблюдения поднять без ответов вопросы, касающиеся функций, последствий и механизмов Воскресения. Для решения этих вопросов, условием является, чтобы надежно идентифицировать клетки, которые прошли Воскресения. Здесь мы опишем живые методы микроскопии и каспазы биосенсора для выявления клеток, которые ранее обратную поздней стадии апоптоза и еан выжил.

Protocol

1. Подготовка клетки для живых клеток изображений Для облегчения обнаружения морфологических изменений, выберите прилипшие клетки, такие как клетки HeLa (рак шейки матки человек) клеток, которые являются плоскими на подложке, чтобы лучше визуализировать изменение плазматической м…

Representative Results

Для изучения разворот апоптоза, культуры тканей клетки сначала подвергаются смертной стимул, чтобы вызвать апоптоз. Когда клетки отображения признаки апоптоза, свежую культуральную среду затем применяется, чтобы смыть стимул, а затем инкубируют умирающие клетки, чтобы позволить восс…

Discussion

Воскресение Христово относится к явлению, когда клетки, у которых активирована гибель клеток пути впоследствии обратить вспять процесс смерти и выжить. Здесь мы показали, что визуализация живых клеток могут быть использованы для подтверждения того, что одни и те же индивидуальные кле?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы благодарим преподобный д-р Ральф Больмана и преподобный д-р Джеймс Voelz за предложение слово "Воскресение", чтобы описать разворот апоптоза; Дуглас Р. Зеленый для HeLa клеток, стабильно экспрессирующих цитохром с -GFP; Чарльз М. Рудин и Эрик Э. Гарднер для H446 клеток; Хизер агнец для помощи в мультяшном рисунок в видео; Йи Хуэй Йео за ценные обсуждения этой рукописи. Эта работа была поддержана сэра Эдварда Youde Мемориальной стипендии (ГВУ), стипендии доктор Уолтер Szeto Мемориал (ГВУ), грант Фулбрайта 007-2009 (ГВУ), науки о жизни Research Foundation общения (ГВУ), NIH предоставляет NS037402 (JMH) и NS083373 (JMH) и Комитет университет грантов Гонконга AoE / B-07/99 (MCF). Хо Лам Тан Shurl и Кей Курки Фонд сотрудник Научно-исследовательского Фонда наук о жизни.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
LSM780 confocal microscopy Carl Zeiss /
Glass bottom culture dish MatTek Corporation P35G-0-14-C
Transparent CultFoi Carl Zeiss 000000-1116-084
CO2 independent medium Life Technologies 18045-088
CellTracker Life Technologies C34552
Mitotracker Red CMXRos Life Technologies M-7512
Hoechst 33342 Life Technologies H1399
Fluorescently labeled annexin V Biovision K201

References

  1. Kerr, J. F., Wyllie, A. H., Currie, A. R. Apoptosis: a basic biological phenomenon with wide-ranging implications in tissue kinetics. British Journal of Cancer. 26, 239-257 (1972).
  2. Riedl, S. J., Shi, Y. Molecular mechanisms of caspase regulation during apoptosis. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 5, 897-907 (2004).
  3. Green, D. R., Kroemer, G. The pathophysiology of mitochondrial cell death. Science. 305, 626-629 (2004).
  4. Chipuk, J. E., Bouchier-Hayes, L., Green, D. R. Mitochondrial outer membrane permeabilization during apoptosis: the innocent bystander scenario. Cell Death and Differentiation. 13, 1396-1402 (2006).
  5. Kroemer, G., et al. Classification of cell death recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death 2009. Cell Death and Differentiation. 16, 3-11 (2009).
  6. Galluzzi, L., et al. Molecular definitions of cell death subroutines: recommendations of the Nomenclature Committee on Cell Death 2012. Cell Death and Differentiation. 19, 107-120 (2012).
  7. Holland, A. J., Cleveland, D. W. Chromoanagenesis and cancer: mechanisms and consequences of localized, complex chromosomal rearrangements. Nature Medicine. 18, 1630-1638 (2012).
  8. Reddien, P. W., Cameron, S., Horvitz, H. R. Phagocytosis promotes programmed cell death in C. elegans. Nature. 412, (2001).
  9. Hoeppner, D. J., Hengartner, M. O., Schnabel, R. Engulfment genes cooperate with ced-3 to promote cell death in Caenorhabditis elegans. Nature. 412, 202-206 (2001).
  10. Segawa, K., et al. Caspase-mediated cleavage of phospholipid flippase for apoptotic phosphatidylserine exposure. Science. 344, 1164-1168 (2014).
  11. Overholtzer, M., et al. A nonapoptotic cell death process, entosis, that occurs by cell-in-cell invasion. Cell. 131, 966-979 (2007).
  12. Tang, H. L., Yuen, K. L., Tang, H. M., Fung, M. C. Reversibility of apoptosis in cancer cells. British Journal of Cancer. 100, (2009).
  13. Tang, H. L., et al. Cell survival, DNA damage, and oncogenic transformation after a transient and reversible apoptotic response. Molecular Biology of the Cell. 23, 2240-2252 (2012).
  14. Hammill, A. K., Uhr, J. W., Scheuermann, R. H. Annexin V staining due to loss of membrane asymmetry can be reversible and precede commitment to apoptotic death. Experimental Cell Research. 251, (1999).
  15. Geske, F. J., Lieberman, R., Strange, R., Gerschenson, L. E. Early stages of p53-induced apoptosis are reversible. Cell Death and Differentiation. 8, 182-191 (2001).
  16. Jacobson, M. D., Weil, M., Raff, M. C. Programmed cell death in animal development. Cell. 88, 347-354 (1997).
  17. Hardwick, J. M., Cheng, W. C. Mitochondrial programmed cell death pathways in yeast. Developmental Cell. 7, 630-632 (2004).
  18. Frohlich, K. U., Fussi, H., Ruckenstuhl, C. Yeast apoptosis-from genes to pathways. Seminars in Cancer Biology. 17, 112-121 (2007).
  19. Fuchs, Y., Steller, H. Programmed cell death in animal development and disease. Cell. 147, 742-758 (2011).
  20. Taylor, R. C., Cullen, S. P., Martin, S. J. Apoptosis: controlled demolition at the cellular level. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 9, 231-241 (2008).
  21. Wang, X. The expanding role of mitochondria in apoptosis. Genes & Development. 15, 2922-2933 (2001).
  22. Galluzzi, L., Kepp, O., Kroemer, G. Mitochondria: master regulators of danger signalling. Nature Reviews Molecular Cell Biolog. 13, 780-788 (2012).
  23. Goldstein, J. C., Waterhouse, N. J., Juin, P., Evan, G. I., Green, D. R. The coordinate release of cytochrome c during apoptosis is rapid, complete and kinetically invariant. Nature Cell Biology. 2, 156-162 (2000).
  24. Goldstein, J. C., et al. Cytochrome c is released in a single step during apoptosis. Cell Death and Differentiation. 12, 453-462 (2005).
  25. Tyas, L., Brophy, V. A., Pope, A., Rivett, A. J., Tavare, J. M. Rapid caspase-3 activation during apoptosis revealed using fluorescence-resonance energy transfer. EMBO Reports. 1, 266-270 (2000).
  26. Takemoto, K., Nagai, T., Miyawaki, A., Miura, M. Spatio-temporal activation of caspase revealed by indicator that is insensitive to environmental effects. The Journal of Cell Biology. 160, 235-243 (2003).
  27. Albeck, J. G., et al. Quantitative analysis of pathways controlling extrinsic apoptosis in single cells. Molecular Cell. 30, 11-25 (2008).
  28. Luthi, A. U., Martin, S. J. The CASBAH: a searchable database of caspase substrates. Cell Death and Differentiation. 14, 641-650 (2007).
  29. Liu, X., Zou, H., Slaughter, C., Wang, X. DFF, a heterodimeric protein that functions downstream of caspase-3 to trigger DNA fragmentation during apoptosis. Cell. 89, 175-184 (1997).
  30. Enari, M., et al. A caspase-activated DNase that degrades DNA during apoptosis, and its inhibitor ICAD. Nature. 391, 43-50 (1998).
  31. Li, H., Zhu, H., Xu, C. J., Yuan, J. Cleavage of BID by caspase 8 mediates the mitochondrial damage in the Fas pathway of apoptosis. Cell. 94, 491-501 (1998).
  32. Slee, E. A., Keogh, S. A., Martin, S. J. Cleavage of BID during cytotoxic drug and UV radiation-induced apoptosis occurs downstream of the point of Bcl-2 action and is catalysed by caspase-3: a potential feedback loop for amplification of apoptosis-associated mitochondrial cytochrome c release. Cell Death and Differentiation. 7, 556-565 (2000).
  33. Suzuki, J., Denning, D. P., Imanishi, E., Horvitz, H. R., Nagata, S. Xk-related protein 8 and CED-8 promote phosphatidylserine exposure in apoptotic cells. Science. 341, 403-406 (2013).
  34. Kroemer, G., Martin, S. J. Caspase-independent cell death. Nature Medicine. 11, 725-730 (2005).
  35. Chipuk, J. E., Green, D. R. Do inducers of apoptosis trigger caspase-independent cell death. Nature Reviews Molecular Cell Biolog. 6, 268-275 (2005).
  36. Tait, S. W., Green, D. R. Mitochondria and cell death: outer membrane permeabilization and beyond. Nature Reviews Molecular Cell Biology. 11, 621-632 (2010).
  37. Claycomb, W. C., et al. HL-1 cells: a cardiac muscle cell line that contracts and retains phenotypic characteristics of the adult cardiomyocyte. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95, 2979-2984 (1998).
  38. Zhang, G., Gurtu, V., Kain, S. R., Yan, G. Early detection of apoptosis using a fluorescent conjugate of annexin V. BioTechniques. 23, 525-531 (1997).
  39. Fenech, M. Cytokinesis-block micronucleus cytome assay. Nature Protocols. 2, 1084-1104 (2007).
  40. Fenech, M., et al. Molecular mechanisms of micronucleus, nucleoplasmic bridge and nuclear bud formation in mammalian and human cells. Mutagenesis. 26, 125-132 (2011).
  41. Gordon, D. J., Resio, B., Pellman, D. Causes and consequences of aneuploidy in cancer. Nature Reviews Genetics. 13, (2012).
  42. Poreba, M., Strozyk, A., Salvesen, G. S., Drag, M. Caspase substrates and inhibitors. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 5, a008680 (2013).
  43. Talanian, R. V., et al. Substrate specificities of caspase family proteases. The Journal of Biological Chemistry. 272, 9677-9682 (1997).
  44. Logue, S. E., Elgendy, M., Martin, S. J. Expression, purification and use of recombinant annexin V for the detection of apoptotic cells. Nature Protocols. 4, 1383-1395 (2009).
  45. Kenis, H., et al. Annexin A5 uptake in ischemic myocardium: demonstration of reversible phosphatidylserine externalization and feasibility of radionuclide imaging. Journal of Nuclear Medicine. 51, 259-267 (2010).
  46. Ruegg, U. T., Staurosporine Burgess, G. M. K-252 and UCN-01: potent but nonspecific inhibitors of protein kinases. Trends in Pharmacological Sciences. 10, 218-220 (1989).
  47. Bertrand, R., Solary, E., O’Connor, P., Kohn, K. W., Pommier, Y. Induction of a common pathway of apoptosis by staurosporine. Experimental Cell Research. 211, 314-321 (1994).
  48. Chae, H. J., et al. Molecular mechanism of staurosporine-induced apoptosis in osteoblasts. Pharmacological Research. 42, 373-381 (2000).
  49. Takemoto, K., et al. Local initiation of caspase activation in Drosophila salivary gland programmed cell death in vivo. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 13367-13372 (2007).
  50. Bardet, P. L., et al. A fluorescent reporter of caspase activity for live imaging. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 13901-13905 (2008).
  51. Florentin, A., Arama, E. Caspase levels and execution efficiencies determine the apoptotic potential of the cell. The Journal of Cell Biology. 196, 513-527 (2012).
  52. Chihara, T., et al. Caspase inhibition in select olfactory neurons restores innate attraction behavior in aged Drosophila. PLoS Genetics. 10, e1004437 (2014).
check_url/51964?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Tang, H. L., Tang, H. M., Hardwick, J. M., Fung, M. C. Strategies for Tracking Anastasis, A Cell Survival Phenomenon that Reverses Apoptosis. J. Vis. Exp. (96), e51964, doi:10.3791/51964 (2015).

View Video