Summary

Utnytte Spesialdesignede Galvanotaxis Chambers å studere Retnings Migrasjon av prostata celler

Published: December 07, 2014
doi:

Summary

We present a method to apply a physiological electric field to migrating, immortalized prostate cells in a custom-made galvanotaxis chamber. Using this method, we demonstrate that 2 lines of non-tumorigenic prostate cells demonstrate different degrees of migration directionality in the field.

Abstract

Den fysiologiske elektriske feltet serverer spesifikke biologiske funksjoner, som for eksempel å dirigere celle migrasjon i embryo utvikling, nevronale utvekst og epitel sårtilheling. Påføring av en likestrøm elektrisk felt til dyrkede celler in vitro induserer retningscellemigrering eller galvanotaxis. Den to-dimensjonale galvanotaxis metode demonstrerer vi her er modifisert med skreddersydd poly (vinylklorid) (PVC) kammer, glassoverflaten, platinaelektroder, og bruk av en motorisert stadium hvor cellene er avbildet. PVC kamre og platina elektroder viser lav cytotoksisitet og er rimelig og re-brukbar. Glassoverflaten og den motoriserte objektbord forbedre kvaliteten av bildene og tillate mulige modifikasjoner av glassoverflaten og behandlinger til cellene. Vi filmet galvanotaxis av to ikke-tumorigene, SV40-udødelig prostata cellelinjer, pRNS-1-1 og PNT2. Disse to cellelinjer viser lignende migrasjons hastigheter og begge migrere motkatoden, men de viser en annen grad av retnings i galvanotaxis. Resultatene oppnådd via denne protokollen resultatene tyder på at pRNS-1-1 og PNT2 cellelinjer kan ha ulike iboende egenskaper som styrer sine retnings trekkende svar.

Introduction

Endogene elektriske felt blir detektert i forskjellige vev, slik som hud 1, 32, 33 og hjerne 2. Den fysiologiske elektriske felt tjener spesifikke biologiske funksjoner, inkludert dirigere embryoutvikling 3, 4, føring av utvekst av neuronal prosesser 5, 6 og fremme epitelial og hornhinnen til lukking av sår 1, 7. In vitro anvendelse av et likestrøms elektrisk felt til dyrkede celler ligner den fysiologiske elektrisk felt og induserer retningscellemigrasjon, eller galvanotaxis. Galvanotaxis har blitt studert i fibroblaster 8, fisk keratinocytter 9, menneskelig epitel og hornhinnen keratinocytter 10-12, lymfocytter 13, neuroblasts to, og nevrale stamceller 14. Når de utsettes for den påtrykte felt, de fleste undersøkte celler migrerer retnings mot katodisk (-) pol. Likevel, flere kreftceller, inkludert svært metastatiskhumane brystcancer-celler og den humane prostatacancercellelinje PC-3M, går til anodisk (+) pol 15, 16. Flere mekanismer er foreslått å mediere galvanotaxis eller for å forklare evnen til cellene for å avføle det elektriske felt, inkludert aktivering av EGF-reseptorer 12, epithelial natriumkanal 17, PI3K og PTEN 18, og frigjøring av kalsiumioner 15, 19. Mekanismen er ennå ikke fullt ut forstått, og det er mulig at flere signalveier er involvert i galvanotaxis.

Den to-dimensjonale galvanotaxis metode demonstrerer vi her er nyttig for å karakterisere retnings migrasjon av fastsittende, bevegelige celler, enten for å overvåke enkeltcellemigrering 10, 12, 17 eller migrering av en plate av konfluente celler 18, 20. Denne teknikken er modifisert fra Peng og Jaffe 21, og Nishimura et al. 10 med skreddersydde, klare PVC kamre, med avtagbart coverslips muliggjør enkel celle gjenfinning etter galvanotaxis for sekundær analyse, for eksempel immuno-fluorescens bildebehandling. Glassoverflaten av galvanotaxis kamrene er optisk-kompatibel, noe som gjør det mulig for filming ved høy forstørrelse og med fluoresceinmerkede celler. Den gjør også eksperimentell design med modifisering av glassoverflaten, for eksempel endring av overflatebelegg eller avgifter. Avstandsstykker laget av No. en dekkglass brukes i kamrene for å redusere strømflyten over cellene; derfor joule-varme, som er proporsjonal med kvadratet av strømmen som føres, ikke ville bli overopphetet cellene i løpet av eksperimentet. Forbindelses agar broer forhindre direkte kontakt av elektroder med cellene og hindre endring av pH i mediet eller ion konsentrasjon under galvanotaxis.

To ikke-tumorigene humane prostatacellelinjer ble undersøkt for sin respons galvanotaxis i denne studien. De pRNS-1-1 22 og PNT2 23 er både SV40-udødeliggjort, vekstfaktoravhengige cellelinjer som uttrykker de epiteliale markører cytokeratin 5, 8, 18 og 19 med lav eller ingen ekspresjon av prostata spesifikt antigen (PSA). Begge cellelinjer opprettholde polygonal morfologi av normale epitelceller, men kromosom abnormalitet ble observert i karyotypering 22, 24. Selv pRNS-1-1 og PNT2 dele lignende adferd i de fleste eksperimenter, de viser forskjeller i dannelsen av acinar struktur og i galvanotaxis. På en 3-D matrise, Matrigel, de pRNS-1-1 cellene danner hul acinar strukturer med lumen likner den normale vevet prostatakjertelen 25. Imidlertid PNT2 cellene danne faste kuler uten hulrom eller polarisert epitel 26. De pRNS-1-1 celler også demonstrere en høyere galvanotactic respons enn PNT2 i den aktuelle studien. Korrelasjonen mellom dannelsen av acinar struktur og galvanotaxis i pRNS-1-1 tyder på at de galvanotactic signaler kan spille en rolle i organiseringen av prostate kjertel vev bevegelser i respons til endogene elektriske felt, og gir ytterligere egenskaper for å diskriminere mellom disse to cellelinjer.

Protocol

1. Dyrking Prostata Cells Kultur de pRNS-1-1 og PNT2 prostata celler på 100 mm kultur retter i RPMI 1640 medium supplert med 10% FBS og Antibiotika fungal ved 37 ° C med 5% CO 2. Oppdatere dyrkingsmediumet hver dag frem til cellene nå 80% confluency for galvanotaxis eksperimenter. 2. Montere Galvanotaxis Chambers Montering bunn kamre Tørk en plast galvanotaxis kammer med 2-propanol. Påfør marine grade silisium sealer rundt sirkulære åpn…

Representative Results

To linjer med prostata celler (pRNS-1-1 og PNT2) ble undersøkt med denne metoden. Celler i begge linjer migrere ved lignende hastigheter på 1,0 +/- 0,3 mikron / min i løpet av 2 timer (figur 5A). Imidlertid er den retnings til det elektriske felt på 0,7 +/- 0,3 for pRNS-1-1-linjen, og 0,2 +/- 0,8 for PNT2 linjen (figur 5B). Resultatene viser en betydelig forskjell i galvanotaxis av disse to cellelinjer (p <0,01, ble 100 celler spores), noe som tyder på at de har forskjellige cel…

Discussion

Analysen av en celles galvanotaxis responsen har vært en viktig funksjonell indikator for mange mobil trekkfugl eller vekstprosesser 27, 28. Her bruker vi en skreddersydd kammer med glassoverflate for å filme to prostata cellelinjer. Disse cellelinjene viste forskjellige grader av galvanotaxis, og vi spekulerer i at den intracellulære lokalisering eller aktivering av galvanotaxis-medierende proteiner kan bli forstyrret i løpet av prosessen med å generere de udødelige cellelinjer, noe som resulterer i de…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De prostata cellelinjer er vennlig levert av Dr. Ling-Yu Wang og Dr. Hsing-Jien Kung ved Cancer Center, UC Davis. Dette prosjektet er støttet av NIH galvanotaxis stipend 4R33AI080604.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Cells
pRNS-1-1 prostate cells Lee et. al., (1994)
PNT2 prostate cells Sigma-Aldrich 95012613-1VL Berthon et al., (1995)
Medium and solutions
RPMI 1640 medium  Invitrogen 11875-093 warm up to 37°C before use
Fetal Bovine Serum – Premium Atlanta Biologicals S11150 10% in PBS, warm up to 37°C before use
Antibiotic-Antimycotic (100x) Life Technologies 15240 add 5mL to 500mL medium
2-propanol VWR BDH1133-5GL
PBS 137mM NaCl, 2.7mM KCl, 4.3mM Na2HPO4 and 1.5mM KH2PO4 in 1000mL of H2O, pH to 7.4 and autoclaved, warm up to 37°C before use
0.25% Trypsin-EDTA  Invitrogen 25200-056 warm up to 37°C before use, treat cells for 3-5 min at 37°C
Galvanotaxis device
Galvanotaxis chambers Precision Plastics Inc, CA custom-designed (1/4" X 2" X 3.5"), non-toxic, clear PVC chambers
Galvanotaxis electrodes UCD electric shop platinum coiled electrodes with flexable cords
Galvanotaxis power box Substrate Engineering, CA custom-designed DC power output with voltmeter
Microscope Cover Glass, Large, 45X50mm-No. 1.5 Fisher 12-544-F
Microscope Cover Glass, small, 25X25mm, No. 1 ThermoScientific 3307
Diamond point marker ThermoScientific 750
Marine grade silicon sealer, clear 3M 051135-08019
High vacuum grease Dow Corning 2021846-0807
6mL syringe Fisher Scientific 05-561-64
Nichiryo Syringe, 1.5mL Nichiryo SG-M
Cotton applicators Purtian Medical Products 806-WC
Qtips Johnson & Johnson 729389
Nalgene 180 PVC tubing  Nalgene 8000-9030 503/16 ID x 5/16 OD x 1/16 Wall
Bacto-Agar Difco 0140-01 make 2% agar solution
Razor Blade Personna 74-0001
Equipments and Software
Benchtop Centrifuge Eppendorf 5810R operated with an A-4-62 rotor
Cellometer Auto T4 Nexcelom Auto T4
Cellometer counting chambers Nexcelom CHT4-SD100-002 load 20uL cell solutions to count
Culture Temp Warming plate Bel-Art Scienceware 370150000 to keep the galvanotaxis chambers at 37°C 
Eclipse TE-2000 microscope with motorized stage and environmental chamber Nikon
Plan Fluor 10X/0.30 objective len Nikon
Retiga EX CCD camera  Qimaging Cooled CCD camara, mono-color, 12-bit
Compressed air with 5% CO2  Airgas special order
Volocity 6.3 PerkinElmer Image acquiring software
Improvision OpenLab 5.5.2 PerkinElmer Cell tracking software and customized to measure migration angles
FileMaker Pro Advanced, 8.0 FileMaker
Microsoft Excel 2008 for Mac Microsoft

References

  1. Reid, B., Nuccitelli, R., Zhao, M. Non-invasive measurement of bioelectric currents with a vibrating probe. Nat Protoc. 2 (3), 661-669 (2007).
  2. Cao, L., et al. Endogenous electric currents might guide rostral migration of neuroblasts. EMBO Rep. 14 (2), 184-190 (2013).
  3. Hotary, K. B., Robinson, K. R. Endogenous electrical currents and voltage gradients in Xenopus embryos and the consequences of their disruption. Dev Biol. 166 (2), 789-800 (1994).
  4. Hotary, K. B., Robinson, K. R. Evidence of a role for endogenous electrical fields in chick embryo development. Development. 114 (4), 985-996 (1992).
  5. Yamashita, M. Electric axon guidance in embryonic retina: galvanotropism revisited. Biochem Biophys Res Commun. 431 (2), 280-283 (2013).
  6. Wood, M. D., Willits, R. K. Applied electric field enhances DRG neurite growth: influence of stimulation media, surface coating and growth supplements. J Neural Eng. 6 (4), 046003 (2009).
  7. Kucerova, R., et al. The role of electrical signals in murine corneal wound re-epithelialization. J Cell Physiol. 226 (6), 1544-1553 (2011).
  8. Sillman, A. L., Quang, D. M., Farboud, B., Fang, K. S., Nuccitelli, R., Isseroff, R. R. Human Dermal fibroblasts do not exhibit directional migration on collagen I in direct-current electric fields of physiological strength. Exp Dermatol. 12 (4), 396-402 (2003).
  9. Allen, G. M., Mogilner, A., Theriot, J. A. Electrophoresis of cellular membrane components creates the directional cue guiding keratocyte galvanotaxis. Curr Biol. 23 (7), 560-568 (2013).
  10. Nishimura, K. Y., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R. Human keratinocytes migrate to the negative pole in direct current electric fields comparable to those measured in mammalian wounds. J Cell Sci. 109 (1), 199-207 (1996).
  11. Farboud, B., Nuccitelli, R., Schwab, I. R., Isseroff, R. R. DC electric fields induce rapid directional migration in cultured human corneal epithelial cells. Exp Eye Res. 70 (5), 667-673 (2000).
  12. Fang, K. S., Ionides, E., Oster, G., Nuccitelli, R., Isseroff, R. R. Epidermal growth factor receptor relocalization and kinase activity are necessary for directional migration of keratinocytes in DC electric fields. J Cell Sci. 112 (12), 1967-1978 (1999).
  13. Li, J., et al. Activated T lymphocytes migrate toward the cathode of DC electric fields in microfluidic devices. Lab Chip. 11 (7), 1298-1304 (2011).
  14. Meng, X., Arocena, M., Penninger, J., Gage, F. H., Zhao, M., Song, B. PI3K mediated electrotaxis of embryonic and adult neural progenitor cells in the presence of growth factors. Exp Neurol. 227 (1), 210-217 (2011).
  15. Wu, D., Ma, X., Lin, F. DC Electric Fields Direct Breast Cancer Cell Migration, Induce EGFR Polarization, and Increase the Intracellular Level of Calcium Ions. . Cell Biochem Biophys. 67 (3), 1115-1125 (2013).
  16. Martin-Granados, C., et al. A role for PP1/NIPP1 in steering migration of human cancer cells. PLoS One. 7 (7), 40769 (2012).
  17. Yang, H. Y., Charles, R. P., Hummler, E., Baines, D. L., Isseroff, R. R. The epithelial sodium channel mediates the directionality of galvanotaxis in human keratinocytes. J Cell Sci. 126 (9), 1942-1951 (2013).
  18. Zhao, M., et al. Electrical signals control wound healing through phosphatidylinositol-3-OH kinase-gamma and PTEN. Nature. 442 (7101), 457-460 (2006).
  19. Shanley, L. J., Walczysko, P., Bain, M., MacEwan, D. J., Zhao, M. Influx of extracellular Ca2+ is necessary for electrotaxis in Dictyostelium. J Cell Sci. 119 (22), 4741-4748 (2006).
  20. Zhao, M., Agius-Fernandez, A., Forrester, J. V., McCaig, C. D. Directed migration of corneal epithelial sheets in physiological electric fields. Invest Ophthalmol Vis Sci. 37 (13), 2548-2558 (1996).
  21. Peng, H. B., Jaffe, L. F. Polarization of fucoid eggs by steady electrical fields. Dev Biol. 53 (2), 277-284 (1976).
  22. Lee, M., et al. Characterization of adult human prostatic epithelial-cells immortalized by polybrene-induced DNA transfection with a plasmid containing an origin-defective sv40-genome. Int J Oncol. 4 (4), 821-830 (1994).
  23. Berthon, P., Cussenot, O., Hopwood, L., Leduc, A., Maitland, N. Functional expression of sv40 in normal human prostatic epithelial and fibroblastic cells – differentiation pattern of non-tumorigenic cell-lines. Int J Oncol. 6 (2), 333-343 (1995).
  24. Aurich-Costa, J., Vannier, A., Grégoire, E., Nowak, F., Cherif, D. IPM-FISH, a new M-FISH approach using IRS-PCR painting probes: application to the analysis of seven human prostate cell lines. Genes Chromosomes Cancer. 30 (2), 143-160 (2001).
  25. Tyson, D. R., Inokuchi, J., Tsunoda, T., Lau, A., Ornstein, D. K. Culture requirements of prostatic epithelial cell lines for acinar morphogenesis and lumen formation in vitro: role of extracellular calcium. Prostate. 67 (15), 1601-1613 (2007).
  26. Lang, S. H., Sharrard, R. M., Stark, M., Villette, J. M., Maitland, N. J. Prostate epithelial cell lines form spheroids with evidence of glandular differentiation in three-dimensional Matrigel cultures. Br J Cancer. 85 (4), 590-599 (2001).
  27. Babona-Pilipos, R., Popovic, M. R., Morshead, C. M. A galvanotaxis assay for analysis of neural precursor cell migration kinetics in an externally applied direct current electric field. J Vis Exp. (68), (2012).
  28. Meng, X., et al. Electric field-controlled directed migration of neural progenitor cells in 2D and 3D environments. J Vis Exp. (60), (2012).
  29. Pullar, C. E., Isseroff, R. R. Cyclic AMP mediates keratinocyte directional migration in an electric field. J Cell Sci. 118 (9), 2023-2034 (2005).
  30. Sheridan, D. M., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R. Imposition of a physiologic DC electric field alters the migratory response of human keratinocytes on extracellular matrix molecules. J Invest Dermatol. 106 (4), 642-646 (1996).
  31. Feng, J. F., et al. Guided migration of neural stem cells derived from human embryonic stem cells by an electric field. Stem Cells. 30 (2), 349-355 (2012).
  32. Mukerjee, E. V., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R., Collins, S. D., Smith, R. L. Microneedle array for measuring wound generated electric fields. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 1, 4326-4328 (2006).
  33. Nuccitelli, R., Nuccitelli, P., Li, C., Narsing, S., Pariser, D. M., Lui, K. The electric field near human skin wounds declines with age and provides a noninvasive indicator of wound healing. Wound Rep. and Reg. 19, 645-655 (2011).
check_url/51973?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yang, H., Dinh La, T., Isseroff, R. R. Utilizing Custom-designed Galvanotaxis Chambers to Study Directional Migration of Prostate Cells. J. Vis. Exp. (94), e51973, doi:10.3791/51973 (2014).

View Video