Summary

Använda Skräddarsydda Galvanotaxis Chambers att studera Directional Migration av prostataceller

Published: December 07, 2014
doi:

Summary

We present a method to apply a physiological electric field to migrating, immortalized prostate cells in a custom-made galvanotaxis chamber. Using this method, we demonstrate that 2 lines of non-tumorigenic prostate cells demonstrate different degrees of migration directionality in the field.

Abstract

Den fysiologiska elektriska fältet tjänar specifika biologiska funktioner, såsom att rikta cellmigration i embryoutvecklingen, neuronal utväxt och epitelial sårläkning. Att ansluta en likström elektriskt fält till odlade celler in vitro inducerar riktad cellmigrering, eller galvanotaxis. Den två-dimensionella galvanotaxis metod vi demonstrera här är modifierad med skräddarsydd poly (vinylklorid) (PVC) kammare, glasytan, platinaelektroder och användning av en motoriserad scen på vilken cellerna avbildas. PVC kammare och platinaelektroder uppvisar låg cytotoxicitet och är prisvärda och återanvändbara. Den glasytan och det motoriserade mikroskop skede förbättra kvaliteten på bilder och tillåta eventuella ändringar av glasytan och behandlingar till cellerna. Vi filmade galvanotaxis av två icke-tumörframkallande, SV40-odödligprostata cellinjer, PRNS-1-1 och PNT2. Dessa två cellinjer visar liknande migrationshastigheter och båda vandrar motkatoden, men de visar olika grad av riktnings i galvanotaxis. De resultat som erhölls via detta protokoll tyder på att PRN-1-1 och cellinjer PNT2 kan ha olika inneboende egenskaper som styr deras riktningsflytt svar.

Introduction

Endogena elektriska fält detekteras i olika vävnader, såsom hud 1, 32, 33 och hjärna 2. Den fysiologiska elektriska fältet tjänar specifika biologiska funktioner, inklusive styra embryoutveckling 3, 4, styra utväxt av neuronala processer 5, 6 och främja epitelial och hornhinnans sårtillslutning 1, 7. In vitro applicering av en likström elektriskt fält till odlade celler härmar fysiologiska elektriska fält och inducerar riktad cellmigration, eller galvanotaxis. Galvanotaxis har studerats hos fibroblaster 8, fisk keratinocyter 9, mänsklig epitelial och hornhinnan keratinocyter 10-12, lymfocyter 13, neuroblaster 2 och neuronala stamceller 14. När de utsätts för den pålagda fältet, de flesta studerade celler migrerar riktnings mot katod (-) pol. Ändå flera cancerceller, inklusive mycket metastatiskahumana bröstcancerceller och den humana prostatacancer-cellinje PC-3M, flytta till anodala (+) polen 15, 16. föreslås Flera mekanismer för att mediera galvanotaxis eller att förklara förmågan hos cellerna att avkänna det elektriska fältet, inklusive aktivering av EGF-receptorer 12, epitelial natriumkanalen 17, PI3K och PTEN 18, och frisättning av kalciumjoner 15, 19. Mekanismen är ännu inte helt klarlagt och det är möjligt att multipla signalvägar är involverade i galvanotaxis.

Den två-dimensionella galvanotaxis metod vi demonstrera här är användbar för att karakterisera den riktnings migration av vidhäftande, motila celler, antingen för att övervaka enskilda cellmigration 10, 12, 17 eller migrering av ett ark av konfluenta celler 18, 20. Denna teknik är modifierad från al. Peng och Jaffe 21, och Nishimura et 10 med skräddarsydda, klara PVC kammare, med avtagbar coverslips vilket möjliggör enkel cell hämtning efter galvanotaxis för sekundäranalys, såsom immun fluorescens avbildning. Den glasyta galvanotaxis kamrarna är optisk-kompatibel, vilket möjliggör inspelningen vid hög förstoring och med fluorescensmärkta celler. Det gör också den experimentella designen med modifiering av glasytan, till exempel att ändra ytbeläggningen eller avgifter. Distanser gjorda av nr 1 täckglas används i kamrarna för att minimera strömflödet över cellerna; därför den Joule-uppvärmning, som är proportionell mot kvadraten på strömflödet, inte skulle överhettas cellerna under experimentet. De anslut agar broar förhindra direkt kontakt av elektroderna med cellerna och förhindra förändring av mediets pH eller jonkoncentration under galvanotaxis.

Undersöktes Två icke-tumorigena humana prostatacellinjer för sin galvanotaxis svar i denna studie. De PRN-1-1 22 och PNT2 23 är både SV40-immortaliserade, tillväxtfaktorberoende cellinjer som uttrycker de epiteliala markörer cytokeratin 5, 8, 18 och 19 med låg eller ingen expression av prostataspecifikt antigen (PSA). Båda cellinjerna bibehålla den polygonala morfologi av normala epitelceller, men kromosom abnormitet observerades i karyotypning 22, 24. Fastän PRN-1-1 och PNT2 delar liknande beteenden i de flesta experiment, de visar skillnader i bildningen av acinar struktur och i galvanotaxis. På en 3-D-matris, Matrigel, de PRN-1-1 celler bildar ihåliga acinära strukturer med lumen liknar den normala prostatakörteln vävnad 25. Men de PNT2 cellerna bilda fasta sfäroider utan lumen eller polariserad epitel 26. De PRN-1-1 celler visar också en högre galvanotactic respons än den PNT2 i den aktuella studien. Korrelationen mellan bildandet av acinar struktur och galvanotaxis i PRN-1-1 antyder att de galvanotactic signalerna kan spela en roll i att organisera prostate körtel vävnad rörelser som svar på endogena elektriska fält, och ger ytterligare egenskaper för att skilja mellan dessa två cellinjer.

Protocol

1. Odling prostateceller Kultur de PRN-1-1 och PNT2 prostateceller på 100 mm odlingsskålar i RPMI 1640-medium kompletterat med 10% FBS och Antibiotika Antimykotisk vid 37 ° C med 5% CO2. Uppdatera odlingsmediet varje dag tills cellerna når 80% konfluens för galvanotaxis experiment. 2. Montering Galvanotaxis Chambers Hopsättning bottenkamrarna Torka en plast galvanotaxis kammare med 2-propanol. Applicera marint kisel sealer runt de cirkul?…

Representative Results

Två rader av prostataceller (PRN-1-1 och PNT2) undersöktes med denna metod. Celler i båda linjerna migrera vid liknande hastigheter på 1.0 +/- 0,3 mikrometer / min under loppet av 2 timmar (Figur 5A). Emellertid, den riktverkan till det elektriska fältet är 0,7 +/- 0,3 för PRN-1-1 linje, och 0,2 +/- 0,8 för PNT2 linjen (figur 5B). Resultaten visar en signifikant skillnad i galvanotaxis av dessa två cellinjer (p <0,01, var 100 celler spåras), vilket tyder på att de har olik…

Discussion

Analysen av en cells galvanotaxis svar har varit en viktig funktionell indikator för många cell vandrande eller tillväxt processer 27, 28. Här använder vi en skräddarsydd kammare med glasytan att filma två prostata cellinjer. Dessa cellinjer har visat olika grad av galvanotaxis, och vi spekulera i att den intracellulära lokaliseringen eller aktiveringen av galvanotaxis förmedlande proteiner kan störas under processen för att generera de odödliga cellinjer, vilket resulterar i den observerade skill…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De prostata cellinjer vänligen tillhandahålls av Dr Ling-Yu Wang och Dr. Hsing-Jien Kung på Cancer Center, UC Davis. Projektet stöds av NIH galvanotaxis bidrag 4R33AI080604.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Cells
pRNS-1-1 prostate cells Lee et. al., (1994)
PNT2 prostate cells Sigma-Aldrich 95012613-1VL Berthon et al., (1995)
Medium and solutions
RPMI 1640 medium  Invitrogen 11875-093 warm up to 37°C before use
Fetal Bovine Serum – Premium Atlanta Biologicals S11150 10% in PBS, warm up to 37°C before use
Antibiotic-Antimycotic (100x) Life Technologies 15240 add 5mL to 500mL medium
2-propanol VWR BDH1133-5GL
PBS 137mM NaCl, 2.7mM KCl, 4.3mM Na2HPO4 and 1.5mM KH2PO4 in 1000mL of H2O, pH to 7.4 and autoclaved, warm up to 37°C before use
0.25% Trypsin-EDTA  Invitrogen 25200-056 warm up to 37°C before use, treat cells for 3-5 min at 37°C
Galvanotaxis device
Galvanotaxis chambers Precision Plastics Inc, CA custom-designed (1/4" X 2" X 3.5"), non-toxic, clear PVC chambers
Galvanotaxis electrodes UCD electric shop platinum coiled electrodes with flexable cords
Galvanotaxis power box Substrate Engineering, CA custom-designed DC power output with voltmeter
Microscope Cover Glass, Large, 45X50mm-No. 1.5 Fisher 12-544-F
Microscope Cover Glass, small, 25X25mm, No. 1 ThermoScientific 3307
Diamond point marker ThermoScientific 750
Marine grade silicon sealer, clear 3M 051135-08019
High vacuum grease Dow Corning 2021846-0807
6mL syringe Fisher Scientific 05-561-64
Nichiryo Syringe, 1.5mL Nichiryo SG-M
Cotton applicators Purtian Medical Products 806-WC
Qtips Johnson & Johnson 729389
Nalgene 180 PVC tubing  Nalgene 8000-9030 503/16 ID x 5/16 OD x 1/16 Wall
Bacto-Agar Difco 0140-01 make 2% agar solution
Razor Blade Personna 74-0001
Equipments and Software
Benchtop Centrifuge Eppendorf 5810R operated with an A-4-62 rotor
Cellometer Auto T4 Nexcelom Auto T4
Cellometer counting chambers Nexcelom CHT4-SD100-002 load 20uL cell solutions to count
Culture Temp Warming plate Bel-Art Scienceware 370150000 to keep the galvanotaxis chambers at 37°C 
Eclipse TE-2000 microscope with motorized stage and environmental chamber Nikon
Plan Fluor 10X/0.30 objective len Nikon
Retiga EX CCD camera  Qimaging Cooled CCD camara, mono-color, 12-bit
Compressed air with 5% CO2  Airgas special order
Volocity 6.3 PerkinElmer Image acquiring software
Improvision OpenLab 5.5.2 PerkinElmer Cell tracking software and customized to measure migration angles
FileMaker Pro Advanced, 8.0 FileMaker
Microsoft Excel 2008 for Mac Microsoft

References

  1. Reid, B., Nuccitelli, R., Zhao, M. Non-invasive measurement of bioelectric currents with a vibrating probe. Nat Protoc. 2 (3), 661-669 (2007).
  2. Cao, L., et al. Endogenous electric currents might guide rostral migration of neuroblasts. EMBO Rep. 14 (2), 184-190 (2013).
  3. Hotary, K. B., Robinson, K. R. Endogenous electrical currents and voltage gradients in Xenopus embryos and the consequences of their disruption. Dev Biol. 166 (2), 789-800 (1994).
  4. Hotary, K. B., Robinson, K. R. Evidence of a role for endogenous electrical fields in chick embryo development. Development. 114 (4), 985-996 (1992).
  5. Yamashita, M. Electric axon guidance in embryonic retina: galvanotropism revisited. Biochem Biophys Res Commun. 431 (2), 280-283 (2013).
  6. Wood, M. D., Willits, R. K. Applied electric field enhances DRG neurite growth: influence of stimulation media, surface coating and growth supplements. J Neural Eng. 6 (4), 046003 (2009).
  7. Kucerova, R., et al. The role of electrical signals in murine corneal wound re-epithelialization. J Cell Physiol. 226 (6), 1544-1553 (2011).
  8. Sillman, A. L., Quang, D. M., Farboud, B., Fang, K. S., Nuccitelli, R., Isseroff, R. R. Human Dermal fibroblasts do not exhibit directional migration on collagen I in direct-current electric fields of physiological strength. Exp Dermatol. 12 (4), 396-402 (2003).
  9. Allen, G. M., Mogilner, A., Theriot, J. A. Electrophoresis of cellular membrane components creates the directional cue guiding keratocyte galvanotaxis. Curr Biol. 23 (7), 560-568 (2013).
  10. Nishimura, K. Y., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R. Human keratinocytes migrate to the negative pole in direct current electric fields comparable to those measured in mammalian wounds. J Cell Sci. 109 (1), 199-207 (1996).
  11. Farboud, B., Nuccitelli, R., Schwab, I. R., Isseroff, R. R. DC electric fields induce rapid directional migration in cultured human corneal epithelial cells. Exp Eye Res. 70 (5), 667-673 (2000).
  12. Fang, K. S., Ionides, E., Oster, G., Nuccitelli, R., Isseroff, R. R. Epidermal growth factor receptor relocalization and kinase activity are necessary for directional migration of keratinocytes in DC electric fields. J Cell Sci. 112 (12), 1967-1978 (1999).
  13. Li, J., et al. Activated T lymphocytes migrate toward the cathode of DC electric fields in microfluidic devices. Lab Chip. 11 (7), 1298-1304 (2011).
  14. Meng, X., Arocena, M., Penninger, J., Gage, F. H., Zhao, M., Song, B. PI3K mediated electrotaxis of embryonic and adult neural progenitor cells in the presence of growth factors. Exp Neurol. 227 (1), 210-217 (2011).
  15. Wu, D., Ma, X., Lin, F. DC Electric Fields Direct Breast Cancer Cell Migration, Induce EGFR Polarization, and Increase the Intracellular Level of Calcium Ions. . Cell Biochem Biophys. 67 (3), 1115-1125 (2013).
  16. Martin-Granados, C., et al. A role for PP1/NIPP1 in steering migration of human cancer cells. PLoS One. 7 (7), 40769 (2012).
  17. Yang, H. Y., Charles, R. P., Hummler, E., Baines, D. L., Isseroff, R. R. The epithelial sodium channel mediates the directionality of galvanotaxis in human keratinocytes. J Cell Sci. 126 (9), 1942-1951 (2013).
  18. Zhao, M., et al. Electrical signals control wound healing through phosphatidylinositol-3-OH kinase-gamma and PTEN. Nature. 442 (7101), 457-460 (2006).
  19. Shanley, L. J., Walczysko, P., Bain, M., MacEwan, D. J., Zhao, M. Influx of extracellular Ca2+ is necessary for electrotaxis in Dictyostelium. J Cell Sci. 119 (22), 4741-4748 (2006).
  20. Zhao, M., Agius-Fernandez, A., Forrester, J. V., McCaig, C. D. Directed migration of corneal epithelial sheets in physiological electric fields. Invest Ophthalmol Vis Sci. 37 (13), 2548-2558 (1996).
  21. Peng, H. B., Jaffe, L. F. Polarization of fucoid eggs by steady electrical fields. Dev Biol. 53 (2), 277-284 (1976).
  22. Lee, M., et al. Characterization of adult human prostatic epithelial-cells immortalized by polybrene-induced DNA transfection with a plasmid containing an origin-defective sv40-genome. Int J Oncol. 4 (4), 821-830 (1994).
  23. Berthon, P., Cussenot, O., Hopwood, L., Leduc, A., Maitland, N. Functional expression of sv40 in normal human prostatic epithelial and fibroblastic cells – differentiation pattern of non-tumorigenic cell-lines. Int J Oncol. 6 (2), 333-343 (1995).
  24. Aurich-Costa, J., Vannier, A., Grégoire, E., Nowak, F., Cherif, D. IPM-FISH, a new M-FISH approach using IRS-PCR painting probes: application to the analysis of seven human prostate cell lines. Genes Chromosomes Cancer. 30 (2), 143-160 (2001).
  25. Tyson, D. R., Inokuchi, J., Tsunoda, T., Lau, A., Ornstein, D. K. Culture requirements of prostatic epithelial cell lines for acinar morphogenesis and lumen formation in vitro: role of extracellular calcium. Prostate. 67 (15), 1601-1613 (2007).
  26. Lang, S. H., Sharrard, R. M., Stark, M., Villette, J. M., Maitland, N. J. Prostate epithelial cell lines form spheroids with evidence of glandular differentiation in three-dimensional Matrigel cultures. Br J Cancer. 85 (4), 590-599 (2001).
  27. Babona-Pilipos, R., Popovic, M. R., Morshead, C. M. A galvanotaxis assay for analysis of neural precursor cell migration kinetics in an externally applied direct current electric field. J Vis Exp. (68), (2012).
  28. Meng, X., et al. Electric field-controlled directed migration of neural progenitor cells in 2D and 3D environments. J Vis Exp. (60), (2012).
  29. Pullar, C. E., Isseroff, R. R. Cyclic AMP mediates keratinocyte directional migration in an electric field. J Cell Sci. 118 (9), 2023-2034 (2005).
  30. Sheridan, D. M., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R. Imposition of a physiologic DC electric field alters the migratory response of human keratinocytes on extracellular matrix molecules. J Invest Dermatol. 106 (4), 642-646 (1996).
  31. Feng, J. F., et al. Guided migration of neural stem cells derived from human embryonic stem cells by an electric field. Stem Cells. 30 (2), 349-355 (2012).
  32. Mukerjee, E. V., Isseroff, R. R., Nuccitelli, R., Collins, S. D., Smith, R. L. Microneedle array for measuring wound generated electric fields. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 1, 4326-4328 (2006).
  33. Nuccitelli, R., Nuccitelli, P., Li, C., Narsing, S., Pariser, D. M., Lui, K. The electric field near human skin wounds declines with age and provides a noninvasive indicator of wound healing. Wound Rep. and Reg. 19, 645-655 (2011).
check_url/51973?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Yang, H., Dinh La, T., Isseroff, R. R. Utilizing Custom-designed Galvanotaxis Chambers to Study Directional Migration of Prostate Cells. J. Vis. Exp. (94), e51973, doi:10.3791/51973 (2014).

View Video