Her beskriver vi en protokoll for å generere menneskeskapte pluripotente stamceller fra perifert blod ved hjelp av en episom basert omprogrammering strategi og histondeacetylase hemmere.
Dette manuskriptet illustrerer en protokoll for effektivt å skape integrasjon frie menneskeskapte pluripotent stamceller (iPSCs) fra perifert blod ved hjelp episomale plasmider og histondeacetylase (HDAC) hemmere. Fordelene med denne tilnærming omfatter: (1) bruk av en minimal mengde av perifert blod som en kilde materiale; (2) nonintegrating omprogrammering vektorer; (3) en kostnadseffektiv fremgangsmåte for å generere vektor frie iPSCs; (4) en enkelt transfeksjon; og (5) anvendelse av små molekyler for å lette epigenetisk omprogrammering. I korthet, blir perifere mononukleære blodceller (PBMC) isolert fra flebotomi rutineprøver og deretter dyrket i definerte vekstfaktorer for å gi et sterkt proliferativ erytrocytt progenitor-cellepopulasjonen som er bemerkelsesverdig mottagelig for omprogrammering. Nonintegrating, nontransmissible episomale plasmider uttrykker OCT4, SOX2, KLF4, MYCL, LIN28A, og en p53 kort hårnål (sh) RNA er introduced inn i de avledet erytroblaster via en enkelt nucleofection. Kotransfeksjon av en episom som uttrykker forbedret grønt fluorescerende protein (EGFP) gir mulighet for enkel identifisering av transfekterte celler. En separat replikasjon-manglende plasmid som uttrykker Epstein-Barr-atom antigen 1 (EBNA1) blir også tilsatt til reaksjonsblandingen for økt ekspresjon av episomale proteiner. Transfekterte celler blir deretter sådd ut på et lag av bestrålte mus embryoniske fibroblaster (iMEFs) for fortsatt omprogrammering. Så snart IPSC-kolonier som vist på omtrent tolv dager etter nucleofection, er HDAC-inhibitorer tilsettes til mediet for å lette epigenetisk remodeling. Vi har funnet at inkludering av HDAC-inhibitorer øker rutinemessig generering av fullt omprogrammeres IPSC kolonier av 2-fold. Når IPSC kolonier utviser typisk humane embryonale stamceller (hESC) morfologi, de er forsiktig overført til individuelle iMEF-belagt vevskulturplater for fortsatt vekst og ekspansjon.
iPSCs er utledet fra somatiske vev via ektopisk uttrykk for et minimalt sett med pluripotency gener. Denne teknikken ble først demonstrert av retrovirale transduksjon av humane fibroblaster med OCT4, SOX2, KLF4, og cMYC, som er høyt uttrykt i pluripotent tilstand 1. Disse forbigående uttrykt "omprogrammering faktorer" endre målcellens epigenetisk landskapet og genuttrykk profil analogt til humane embryonale stamceller 2. Når den er laget, kan iPSCs potensielt bli differensiert i noen vevstype for videre etterforskning. Dermed holder de løftet for bruk i regenerativ medisin, sykdom modellering, og genterapi applikasjoner. Imidlertid, forstyrre genomet med integrerende viruser har potensial til å endre endogent gen-ekspresjon, påvirker cellulær fenotype, og til slutt å forspenne vitenskapelige resultater. Videre kan tilfeldige integreringer virale føre til skadelige cellulære effekter, inkludert muligheten for malign transformasjon tre eller re-uttrykk av de onkogene transgener 4. Fremtidige kliniske applikasjoner vil kreve ikke-integrere IPSC generasjon.
Episomer, som er ekstra kromosom sirkulære DNA-molekyler, har en strategi for å generere kostnadseffektive, integrasjon frie iPSCs 5. Kombinasjonen av episomale vektorer som er vist i tabell 1 uttrykke omprogrammering faktorer OCT4, SOX2, KLF4, MYCL, og LIN28A. Den pCXLE_hOCT3 / 4-shp53-F-plasmidet inneholder også en p53 shRNA for midlertidig undertrykkelse av TP53 å forbedre mobilnettet omprogrammering 6. Replikering mangel pCXWB-EBNA1 vektor fremmer forsterkning av omprogrammering faktorer og økt omprogrammering effektivitet ved å tilby en forbigående økning i EBNA1 uttrykk 7. Den pCXLE_EGFP plasmid kan legges til nucleofection blandingen i den hensikt å Determining transfeksjonseffektiviteten eller cellesorterings anvendelser. Med unntak av p-CXWB EBNA1, de episomale plasmider anvendt i denne protokollen inneholder Epstein-Barr virus opprinnelse av viral replikasjon og EBNA1-genet, som formidler replikasjon og oppdeling av episom under delingen av vertscellen 8. De episomer er spontant tapt med påfølgende IPSC ekspansjon 7. Subkloning og karakterisering av iPSCs med episomal vektor tap, som kan utledes fra tap av EGFP uttrykk, kan føre til helt integrering gratis iPSCs for fremtidige kliniske applikasjoner.
Iboende til prosessen med IPSC generasjon er undertrykkelse av avstamning spesifikke gener og reaktivering av pluripotency assosierte gener. Regulering av gen-ekspresjon forekommer på flere nivåer i kjernen, herunder modifiseringer av DNA og kromatin å tillate transkripsjonsfaktorer, regulatoriske DNA-elementer, og RNA-polymerase tilgang til måletgener. Ombygging av epigenetisk landskapet via globale kromatin modifikasjoner er en viktig komponent for å re-uttrykk for pluripotency genetisk program. En spesifikk modifikasjon kromatin som er viktig i reguleringen av genekspresjon er acetylering av histoner på bestemte lysinrester, som tillater tilgang til målgener ved redusert spenning av histon-DNA-spiral. HDAC hemmere er små molekyler som har vist seg å forbedre IPSC omprogrammering og hESC selvfornyelse 9,10, trolig på grunn av støtte acetylerte staten 11. Protokollen er beskrevet nedenfor, tilpasset fra en tidligere publikasjon hjelp integrere lentiviruses 12, gir en trinn-for-trinn metode for optimalisert IPSC generasjon fra perifert blod ved hjelp episomer og HDAC hemmere. De HDAC-inhibitor-konsentrasjoner som brukes her, er halvparten av de som er beskrevet av Ware, et al. 9, og har rutinemessig ført til en to gangers økning i fullt omprogrammerte IPSC kolonier enn standardepisomale omprogrammering protokoller uten HDAC hemmere. Dette nivået av omprogrammering er på linje med effektiviteten vi observerer med lentiviral metoder. Ved hjelp av denne protokollen, har vi effektivt generert IPSC fra enkeltpersoner så gammel som 87 år.
For vellykket IPSC generasjon når du bruker denne protokollen, er det flere viktige begrensninger som bør vurderes. Under erytroblast utvidelse scenen, bør media endring planen følges nøye, som avvik kan føre til ineffektiv stimulering av målet stamcelle befolkning og en lavere virkningsgrad på IPSC generasjon. Det er viktig å lage nye utvidelsen medium med frisk deksametason med hver medie endring; og QBSF-60 basismedium og deksametason bør beskyttes mot lys under lagring. Under nucleofection, er DPBS vaske k…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne ønsker å erkjenne følgende tilskudd fra NIH for å støtte denne forskningen: K08DK082783 (AR), P30DK56465 (BTS), U01HL099993 (BTS), T32HL00715036 (SKS), og K12HL0806406 (SKS); og JP McCarthy Foundation (AR).
Name of Reagent/ Equipment | Company | Catalog Number | Comments/Description |
Ficoll-Paque PLUS | Fisher Scientific | 45-001-750 | Store at 4°C. Warm to room temperature before use. |
DPBS | Life Technologies | 14190-250 | Store at 4°C. |
RPMI 1640 | Life Technologies | 11875-093 | Store at 4°C. |
fetal bovine serum (FBS) | Life Technologies | 10437028 | Store at -20°C until needed. Thaw, aliquot, store at 4°C. |
dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma-Aldrich | 154938 | Store at room temperature. |
QBSF-60 serum-free medium | Fisher Scientific | 50-983-234 | Store at 4°C. |
penicillin/streptomycin | Life Technologies | 15140122 | Store at 4°C. |
Cell Line Nucleofector Kit V | Lonza | VCA-1003 | Store at 4°C. |
2% gelatin solution | Sigma-Aldrich | G1393 | Store at 4°C, liquify in 37°C water bath before use. |
Hank's Balanced Saline Solution (HBSS) | Life Technologies | 14175-103 | Store at 4°C. |
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) | Life Technologies | 11965-092 | Store at 4°C. |
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) | Life Technologies | 12440-061 | Store at 4°C. |
L-glutamine, 200 mM | Life Technologies | 25030-081 | Aliquot, freeze at -20°C. |
non-essential amino acids (NEAA), 100X | Life Technologies | 11140-050 | Store at 4°C, away from light. |
DMEM/Ham's F12, 1:1 | Fisher Scientific | SH30023.02 | Store at 4°C. |
KnockOut Serum Replacement | Life Technologies | 10828-028 | Aliquot, freeze at -20°C. |
sodium pyruvate, 100 mM | Life Technologies | 11360-070 | Store at 4°C. |
sodium bicarbonate, 7.5% | Life Technologies | 25080094 | Store at 4°C. |
basic fibroblast growth factor (bFGF) | Life Technologies | PHG0263 | Make 10 mg/mL stock in DPBS, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C. |
sodium butyrate | Sigma-Aldrich | B5887-1G | Make 2000X stock (400 mM) in DPBS, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C. |
hES Cell Cloning & Recovery Supplement | Stemgent | 01-0014-500 | Store at -20°C until needed. Once thawed, store at 4°C. |
ESC-qualified BD matrigel | BD Biosciences | 35-4277 | Thaw overnight on ice at 4°C, aliquot into pre-chilled tubes using pre-chilled pipette tips. Store at -20°C until needed. Thaw at 4°C, use immediately. |
StemSpan SFEM | STEMCELL Technologies | 9650 | Aliquot, freeze at -20°C. |
ascorbic acid, powdered | Sigma-Aldrich | A4403-100MG | Make 5 mg/mL stock in DPBS, sterile filter, store at 4°C. |
recombinant human stem cell factor (SCF) | R & D Systems | 255-SC-010 | Make 100 μg/mL stock in SFEM, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C. |
recombinant human interleukin 3 (IL-3) | R & D Systems | 203-IL-010 | Make 100 μg/mL stock in SFEM, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C. |
erythropoietin (EPO) | R & D Systems | 287-TC-500 | Make 1000 U/mL stock in SFEM, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C. |
recombinant human insulin-like growth factor 1 (IGF-1) | R & D Systems | 291-G1-200 | Make 100 μg/mL stock in SFEM, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C. |
β-mercaptoethanol | Sigma-Aldrich | M7522 | Make 1000X stock (100 mM) in DPBS. |
dexamethasone | Sigma-Aldrich | D4902-25MG | Make 50X stock (50 μM) in DPBS, sterile filter, store at 4°C. |
SAHA (vorinostat) | Cayman Chemical | 149647-78-9 | Make 2000X stock (400 mM) in DPBS, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C. |
12 well tissue culture plate | Fisher Scientific | 08-772-29 | |
15 mL conical tube | Sarstedt | 62553002 | |
1.5 mL Eppendorf tube | Fisher Scientific | 05-408-129 | |
6 well tissue culture plate | Fisher Scientific | 08-772-1B | |
35 mm tisue culture plates | BD Biosciences | 353001 | |
10 mL disposable serological pipettes | Fisher Scientific | 13-675-20 | |
5 mL disposable serological pipettes | Fisher Scientific | 13-675-22 | |
2 mL disposable serological pipettes | Fisher Scientific | 13-675-17 | |
20 μL pipette tips, barrier tips | Genessee | 24-404 | |
glass Pasteur pipettes | Fisher Scientific | 13-678-20D | |
pipette aid | Fisher Scientific | 13-681-15 | |
pCXLE-hOCT3/4-shp53-F | Addgene | 27077 | |
pCXLE-hSK | Addgene | 27078 | |
pCXLE-hUL | Addgene | 27080 | |
pCXLE-EGFP | Addgene | 27082 | |
pCXWB-EBNA1 | Addgene | 37624 |