Summary

Effektiv iPS cell Generation från Blood Använda episomer och HDAC inhibitorer

Published: October 28, 2014
doi:

Summary

Här beskriver vi ett protokoll för att generera mänskliga inducerade pluripotenta stamceller från perifert blod med hjälp av en episom baserad omprogrammering strategi och histondeacetylas hämmare.

Abstract

Detta manuskript illustrerar ett protokoll för effektivt skapa integrationsfria mänskliga inducerade pluripotenta stamceller (iPSCs) från perifert blod med hjälp av episomala plasmider och histondeacetylas (HDAC) -hämmare. Fördelarna med denna metod innefattar: (1) användning av en minimal mängd av perifert blod som utgångsmaterial; (2) nonintegrating omprogrammering vektorer; (3) en kostnadseffektiv metod för att generera vektorfria iPSCs; (4) en enda transfektion; och (5) användning av små molekyler för att underlätta epigenetisk omprogrammering. Kortfattat, perifera mononukleära blodceller (PBMC) isolerades från rutin flebotomi prover och odlades sedan i definierade tillväxtfaktorer för att ge ett starkt proliferativt erytrocyt populationen av progenitorceller som är anmärkningsvärt mottaglig för omprogrammering. Nonintegrating, nontransmissible episomala plasmider uttrycker Oct4, Sox2, Klf4, MYCL, LIN28A och en p53 kort hårnål (sh) RNA är introduced in de härledda erytroblaster via en enda nucleofection. Samtransfektion av en episom som uttrycker förbättrade grönt fluorescerande protein (EGFP) möjliggör enkel identifiering av transfekterade celler. En separat replikerande plasmid som uttrycker Epstein-Barr-kärnantigen 1 (EBNA1) sätts också till reaktionsblandningen för ökad expression av episomala proteiner. Transfekterade celler stryks sedan ut på ett skikt av bestrålat mus embryonala fibroblaster (iMEFs) för fortsatt omprogrammering. Så snart iPSC lika kolonier uppträder vid ungefär tolv dagar efter nucleofection, är HDAC-hämmare sättas till mediet för att underlätta epigenetisk ombyggnad. Vi har funnit att införlivandet av HDAC-hämmare rutinmässigt ökar alstringen av fullt omprogrammerade IPSC kolonier av 2-faldigt. När IPSC kolonier uppvisar typiska mänskliga embryonala stamceller (hESC) morfologi, de är försiktigt över till enskilda Imef-belagda vävnadsodlingsplattor för fortsatt tillväxt och expansion.

Introduction

iPSCs härrör från somatiska vävnader via ektopisk uttryck för en minimal uppsättning pluripotensbestämmande gener. Denna teknik var ursprungligen visas genom retroviral transduktion av humana fibroblaster med Oct4, Sox2, Klf4 och cMYC, som är mycket uttrycks i pluripotent tillstånd 1. Dessa övergående uttryckt "omprogrammering faktorer" förändrar målcellens epigenetisk landskapet och genuttryck profil analog med mänskliga embryonala stamceller 2. När du väl skapat, kan iPSCs potentiellt differentieras i någon vävnadstyp för vidare utredning. Således håller de lovande för användning inom regenerativ medicin, sjukdomsmodellering och genterapitillämpningar. Men stör genomet med integrerande virus har potential att förändra endogen genexpression, inflytande cellulär fenotyp, och i slutändan förspänna vetenskapliga resultat. Dessutom kan slump virala integrationer leda till skadlig cellulär effekter, bland annat möjligheten för malign transformation 3 eller åter uttryck av de onkogena transgener 4. Framtida kliniska applikationer kommer att kräva icke-integrerande iPSC generation.

Episomer, som är extra kromosom cirkulära DNA-molekyler, har en strategi för att skapa kostnadseffektiva, integration fria iPSCs 5. Kombinationen av episomala vektorer som visas i tabell 1 uttrycka omprogrammeringen faktorer Oct4, Sox2, Klf4, MYCL och LIN28A. Den pCXLE_hOCT3 / 4-shp53-F-plasmiden innehåller även ett p53 shRNA för tillfällig suppression av TP53 för att förbättra cellulär omprogrammering 6. Den replikerande pCXWB-EBNA1 vektor främjar amplifieringen av omprogrammeringsinstruktioner faktorer och ökad omprogrammering effektivitet genom att tillhandahålla en övergående ökning av EBNA1 expression 7. Den pCXLE_EGFP plasmiden kan tillsättas till den nucleofection blandningen i syfte att determining transfektionseffektiviteten eller för cellsorteringstillämpningar. Med undantag för p CXWB-EBNA1 de episomala plasmider som används i detta protokoll innehåller Epstein-Barr-virus ursprung av viral replikation och EBNA1-genen, som medierar replikation och delning av episom under delning av värdcellen 8. De episomer spontant förlorade med successiv iPSC expansionen 7. Subkloning och karakterisering av iPSCs med episomal vektor förlust, vilket kan utläsas av förlust av EGFP uttryck, kan leda till helt integrations fria iPSCs för framtida kliniska tillämpningar.

Inneboende till processen för iPSC generation är undertryckande av härstamning specifika gener och reaktivering av pluripotens-associerade gener. Reglering av genuttryck sker på flera nivåer i kärnan, inbegripet ändringar DNA och kromatin att tillåta transkriptionsfaktorer, regulatoriska DNA-element, och RNA-polymeras tillgång till målgener. Ombyggnad av den epigenetiska landskapet via globala kromatin ändringar är en viktig komponent för att åter uttryck för pluripotens genetiska programmet. En specifik kromatin modifiering som är viktig i regleringen av genuttryck är acetylering av histoner vid särskilda lysinrester, vilket ger tillgång till målet gener genom minskad spänning histon-DNA pole. HDAC-hämmare är små molekyler som har visat sig öka iPSC omprogrammering och hESC självförnyelse 9,10, sannolikt på grund av att stödja den acetylerade staten 11. Protokollet som beskrivs nedan, anpassad från en tidigare publikation med hjälp av integrerande lentiviruses 12, ger en steg-för-steg metod för optimerad iPSC generering från perifert blod med hjälp episomer och HDAC-hämmare. Koncentrationerna HDAC-inhibitor som används här är hälften av de som beskrivs av Ware et al., 9, och har rutinmässigt lett till en 2-faldig ökning i fullt omprogrammerade IPSC kolonier över standardenepisomala omprogrammering protokoll utan HDAC-hämmare. Denna nivå av omprogrammering är i nivå med effektiviteten som vi observerar med lentivirala metoder. Med hjälp av detta protokoll, har vi på ett effektivt sätt genererat iPSC från individer som gamla som 87 år.

Protocol

Skriftligt informerat samtycke, som godkänts av Institutional Review Boards för Fred Hutchinson Cancer Research Center och Children "s Hospital of Philadelphia, erhölls från patienter innan samla perifera blodprover. Alla institutionella riktlinjer observerades. Alla djurförsök inklusive MEF generation och teratom bildningen godkändes av Institutional Animal Care och användning kommittén. 1. Ficoll Separation av PBMC och Expansion av erytroblaster – Dag 0 Späd perif…

Representative Results

Tre dagar efter nucleofection och före utstrykning av nucleofected celler på iMEFs bör effektiviteten av framgångsrik nucleofection uppskattas genom fluorescensmikroskopi för EGFP. Figur 1 visar en typisk nucleofection experiment med ungefär 5-10% av den totala cellpopulationen som uttrycker EGFP. Omprogrammerade IPSC kolonier kommer att börja visas ungefär två veckor efter nucleofection. Kolonierna är generellt cirkulär med väldefinierade gränser och kan identi…

Discussion

För framgångsrik iPSC generation när du använder detta protokoll, finns det flera viktiga förbehåll som bör beaktas. Under erytroblast expansionsfasen, bör medieförändringen schemat följas strikt, eftersom avvikelser kan leda till ineffektiva stimulering av målet stamceller befolkning och en lägre verkningsgrad iPSC generation. Det är viktigt att göra nya expansionen medium med färska dexametason med varje medieförändring; och QBSF-60 basmedium och dexametason bör skyddas från ljus under lagring. Und…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill erkänna följande bidrag från NIH för att stödja denna forskning: K08DK082783 (AR), P30DK56465 (BTS), U01HL099993 (BTS), T32HL00715036 (SKS), och K12HL0806406 (SKS); och JP McCarthy Foundation (AR).

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Ficoll-Paque PLUS Fisher Scientific 45-001-750 Store at 4°C. Warm to room temperature before use.
DPBS Life Technologies 14190-250 Store at 4°C.
RPMI 1640 Life Technologies 11875-093 Store at 4°C.
fetal bovine serum (FBS) Life Technologies 10437028 Store at -20°C until needed. Thaw, aliquot, store at 4°C.
dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich 154938 Store at room temperature.
QBSF-60 serum-free medium Fisher Scientific 50-983-234 Store at 4°C.
penicillin/streptomycin Life Technologies 15140122 Store at 4°C.
Cell Line Nucleofector Kit V Lonza VCA-1003 Store at 4°C.
2% gelatin solution Sigma-Aldrich G1393 Store at 4°C, liquify in 37°C water bath before use.
Hank's Balanced Saline Solution (HBSS) Life Technologies 14175-103 Store at 4°C.
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Life Technologies 11965-092 Store at 4°C.
Iscove's Modified Dulbecco's Medium (IMDM) Life Technologies 12440-061 Store at 4°C.
L-glutamine, 200 mM Life Technologies 25030-081 Aliquot, freeze at -20°C.
non-essential amino acids (NEAA), 100X Life Technologies 11140-050 Store at 4°C, away from light.
DMEM/Ham's F12, 1:1 Fisher Scientific SH30023.02 Store at 4°C.
KnockOut Serum Replacement Life Technologies 10828-028 Aliquot, freeze at -20°C.
sodium pyruvate, 100 mM Life Technologies 11360-070 Store at 4°C.
sodium bicarbonate, 7.5% Life Technologies 25080094 Store at 4°C.
basic fibroblast growth factor (bFGF) Life Technologies PHG0263 Make 10 mg/mL stock in DPBS, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C.
sodium butyrate  Sigma-Aldrich B5887-1G Make 2000X stock (400 mM) in DPBS, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C.
hES Cell Cloning & Recovery Supplement Stemgent 01-0014-500 Store at -20°C until needed. Once thawed, store at 4°C.
ESC-qualified BD matrigel BD Biosciences 35-4277 Thaw overnight on ice at 4°C, aliquot into pre-chilled tubes using pre-chilled pipette tips. Store at -20°C until needed. Thaw at 4°C, use immediately.
StemSpan SFEM  STEMCELL Technologies 9650 Aliquot, freeze at -20°C.
ascorbic acid, powdered Sigma-Aldrich A4403-100MG Make 5 mg/mL stock in DPBS, sterile filter, store at 4°C.
recombinant human stem cell factor (SCF) R & D Systems 255-SC-010 Make 100 μg/mL stock in SFEM, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C.
recombinant human interleukin 3 (IL-3) R & D Systems 203-IL-010 Make 100 μg/mL stock in SFEM, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C.
erythropoietin (EPO) R & D Systems 287-TC-500 Make 1000 U/mL stock in SFEM, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C.
recombinant human insulin-like growth factor 1 (IGF-1) R & D Systems 291-G1-200 Make 100 μg/mL stock in SFEM, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C.
β-mercaptoethanol Sigma-Aldrich M7522 Make 1000X stock (100 mM) in DPBS.
dexamethasone Sigma-Aldrich D4902-25MG Make 50X stock (50 μM) in DPBS, sterile filter, store at 4°C.
SAHA (vorinostat) Cayman Chemical 149647-78-9 Make 2000X stock (400 mM) in DPBS, aliquot, freeze at -20°C. Once thawed, store at 4°C.
12 well tissue culture plate Fisher Scientific 08-772-29
15 mL conical tube Sarstedt 62553002
1.5 mL Eppendorf tube Fisher Scientific 05-408-129
6 well tissue culture plate Fisher Scientific 08-772-1B
35 mm tisue culture plates BD Biosciences 353001
10 mL disposable serological pipettes Fisher Scientific 13-675-20
5 mL disposable serological pipettes Fisher Scientific 13-675-22
2 mL disposable serological pipettes Fisher Scientific 13-675-17
20 μL pipette tips, barrier tips Genessee 24-404
glass Pasteur pipettes Fisher Scientific 13-678-20D
pipette aid Fisher Scientific 13-681-15
pCXLE-hOCT3/4-shp53-F Addgene 27077
pCXLE-hSK Addgene 27078
pCXLE-hUL Addgene 27080
pCXLE-EGFP Addgene 27082
pCXWB-EBNA1 Addgene 37624

References

  1. Takahashi, K., et al. Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors. Cell. 131 (5), 861-872 (2007).
  2. Koche, R. P., et al. Reprogramming factor expression initiates widespread targeted chromatin remodeling. Cell Stem Cell. 8 (1), 96-105 (2011).
  3. Baum, C., Kustikova, O., Modlich, U., Li, Z., Fehse, B. Mutagenesis and oncogenesis by chromosomal insertion of gene transfer vectors. Human Gene Therapy. 17 (3), 253-263 (2006).
  4. Okita, K., Ichisaka, T., Yamanaka, S. Generation of germline-competent induced pluripotent stem cells. Nature. 448 (7151), 313-317 (2007).
  5. Yu, J., et al. Human induced pluripotent stem cells free of vector and transgene sequences. Science. 324 (5928), 797-801 (2009).
  6. Hong, H., et al. Suppression of induced pluripotent stem cell generation by the p53-p21 pathway. Nature. 460 (7259), 1132-1135 (2009).
  7. Okita, K., et al. A more efficient method to generate integration-free human iPS cells. Nature Methods. 8 (5), 409-412 (2011).
  8. Yates, J. L., Warren, N., Sugden, B. Stable replication of plasmids derived from Epstein-Barr virus in various mammalian cells. Nature. 313 (6005), 812-815 (1985).
  9. Ware, C. B., et al. Histone deacetylase inhibition elicits an evolutionarily conserved self-renewal program in embryonic stem cells. Cell Stem Cell. 4 (4), 359-369 (2009).
  10. Mali, P., et al. Butyrate greatly enhances derivation of human induced pluripotent stem cells by promoting epigenetic remodeling and the expression of pluripotency-associated genes. Stem Cells. 28 (4), 713-720 (2010).
  11. Azuara, V., et al. Chromatin signatures of pluripotent cell lines. Nature Cell Biology. 8 (5), 532-538 (2006).
  12. Sommer, A. G., et al. Generation of human induced pluripotent stem cells from peripheral blood using the STEMCCA lentiviral vector. J. Vis. Exp. (68), e4327 (2012).
  13. Yoshida, Y., Takahashi, K., Okita, K., Ichisaka, T., Yamanaka, S. Hypoxia enhances the generation of induced pluripotent stem cells. Cell Stem Cell. 5, 237-241 (2009).
  14. Abbondanzo, S. J., Gadi, I., Stewart, C. L. Derivation of Embryonic Stem Cell Lines. Methods in Enzymology. 225, 803-823 (1993).
  15. Kim, H. J., Bae, S. C. Histone deacetylase inhibitors: molecular mechanisms of action and clinical trials as anti-cancer drugs. American Journal of Translational Research. 3 (2), 166-179 (2011).
check_url/52009?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Hubbard, J. J., Sullivan, S. K., Mills, J. A., Hayes, B. J., Torok-Storb, B. J., Ramakrishnan, A. Efficient iPS Cell Generation from Blood Using Episomes and HDAC Inhibitors. J. Vis. Exp. (92), e52009, doi:10.3791/52009 (2014).

View Video