Summary

Methyltransferases और cofactor analogues साथ न्यूक्लिक एसिड और प्रोटीन के अनुक्रम-विशिष्ट लेबलिंग

Published: November 22, 2014
doi:

Summary

डीएनए और प्रोटीन अनुक्रम-विशेष रूप से आकर्षण या डीएनए या प्रोटीन Methyltransferases और सिंथेटिक cofactor के analogues का उपयोग कर फ्लोरोसेंट संवाददाता समूहों के साथ लेबल रहे हैं। एंजाइमों, aziridine या डबल सक्रिय cofactor के analogues के cofactor के विशिष्टता के आधार पर एक या दो कदम लेबलिंग के लिए कार्यरत हैं।

Abstract

एस -Adenosyl एल मेथिओनिन (AdoMet या एसएएम) निर्भर Methyltransferases (MTase) डीएनए, आरएनए, प्रोटीन और छोटे biomolecules में विशिष्ट पदों के लिए AdoMet से सक्रिय मिथाइल समूह के हस्तांतरण को उत्प्रेरित। यह प्राकृतिक मेथिलिकरण प्रतिक्रिया सिंथेटिक cofactor के analogues का उपयोग कर alkylation प्रतिक्रियाओं की एक विस्तृत विविधता का विस्तार किया जा सकता है। एक aziridine की अंगूठी के साथ AdoMet की प्रतिक्रियाशील sulfonium केंद्र की रिप्लेसमेंट विभिन्न डीएनए MTases से डीएनए के साथ मिलकर किया जा सकता है, जो सहकारकों की ओर जाता है। ये aziridine सहकारकों एडिनाइन आधा भाग के विभिन्न पदों पर संवाददाता समूहों के साथ सुसज्जित है और मुझे लगता है कि डीएनए (मुस्कुराते हुए डीएनए) के एल हाबिल आईएनजी nduced ethyltransferase- एस equence-विशिष्ट M के लिए इस्तेमाल किया जा सकता है। एक विशिष्ट उदाहरण के रूप में हम डीएनए MTase M.BseCI और aziridine cofactor के 6BAz में साथ 5'-ATCG टी 3 'अनुक्रम में pBR322 प्लास्मिड डीएनए की biotinylation के लिए एक प्रोटोकॉल देएक कदम है। एक ctivated जी roups (mTAG) के एम ethyltransferase निर्देशित टी ransfer के लिए उपयोग किया जाता है जो AdoMet analogues के दूसरे वर्ग में असंतृप्त अल्काइल समूहों परिणामों के साथ सक्रिय मिथाइल समूह का विस्तार। विस्तारित पक्ष श्रृंखला sulfonium केंद्र और असंतृप्त बंधन से सक्रिय रहे हैं, इन सहकारकों डबल सक्रिय AdoMet analogues के कहा जाता है। इन analogues के aziridine सहकारकों तरह डीएनए MTases के लिए सहकारकों, के रूप में कार्य किया है, लेकिन यह भी शाही सेना, प्रोटीन और छोटे अणु MTases के लिए ही नहीं। वे आम तौर पर एक दूसरे रासायनिक चरण में संवाददाता समूहों के साथ चिह्नित कर रहे हैं, जो अद्वितीय कार्य समूहों के साथ MTase substrates के एंजाइमी संशोधन के लिए उपयोग किया जाता है। इस हिस्टोन H3 प्रोटीन की प्रतिदीप्ति लेबलिंग के लिए एक प्रोटोकॉल में उदाहरण है। एक छोटा सा propargyl समूह के लिए क्लिक करें लेबलिंग द्वारा पीछा हिस्टोन H3 लाइसिन 4 (H3K4) MTase Set7 / 9 से प्रोटीन के लिए cofactor के अनुरूप SeAdoYn से स्थानांतरित कर रहा हैTamra azide के साथ alkynylated हिस्टोन H3। Cofactor के analogues के साथ MTase की मध्यस्थता लेबलिंग पहचान और कार्यात्मक अध्ययन MTase substrates के रूप में अच्छी तरह के रूप में डीएनए जीनोटाइपिंग और मेथिलिकरण पता लगाने सहित कई रोमांचक अनुप्रयोगों के लिए एक प्रौद्योगिकी सक्षम है।

Introduction

न्यूक्लिक एसिड 1,2 और प्रोटीन 3,4 के विशिष्ट लेबलिंग कार्यात्मक अभिलक्षण, चिकित्सा निदान और (नैनो) जैव प्रौद्योगिकी के लिए प्रमुख ब्याज की है। यहाँ हम एस -adenosyl एल मेथिओनिन (AdoMet या एसएएम) निर्भर Methyltransferases (MTases) पर आधारित है जो इन बायोपॉलिमरों के लिए एक enzymatic लेबलिंग विधि प्रस्तुत करते हैं। एंजाइमों का यह वर्ग (ईसी 2.1.1।) न्यूक्लिक एसिड और प्रोटीन की विशिष्ट अवशेषों के भीतर व्यक्तिगत न्युक्लेओफ़िलिक पदों (नाइट्रोजन, ऑक्सीजन, सल्फर और कार्बन परमाणुओं) को लक्षित करता है और स्वाभाविक रूप cofactor के AdoMet (चित्रा 1 ए) 5 के सक्रिय मिथाइल समूह स्थानान्तरण। इसके अलावा, MTases आत्मीयता टैग, fluorophores या अन्य लेबल (चित्रा 1 बी) 6 के साथ विशिष्ट लेबलिंग के लिए सिंथेटिक cofactor के अनुरूप उपयोग कर सकते हैं। AdoMet analogues के दो वर्गों विकसित किया गया है: एस equence-विशिष्ट एम ethyltransferase- के लिए मैं Aziridine सहकारकों </strong> Nduced एल हाबिल आईएनजी (मुस्कुराते हुए) 7 और एक ctivated जी roups के मीटर ethyltransferase निर्देशित टी ransfer के लिए डबल सक्रिय AdoMet analogues (mTAG) 8।

चित्रा 1
चित्रा 1:।। Methyltransferases (MTases) डीएनए, आरएनए, प्रोटीन और छोटे जैवअणुओं सहित विभिन्न substrates के लिए प्राकृतिक cofactor के AdoMet (एसएएम) से मिथाइल समूह स्थानांतरण न्यूक्लिक एसिड और प्रोटीन की बी लेबल / functionalization (NNNNN = द्वारा उत्प्रेरित प्रतिक्रियाओं प्रोटीन के लिए शाही सेना और अमीनो एसिड के लिए आधार डीएनए के लिए जोड़े, न्यूक्लियोटाइड, सिंथेटिक cofactor के analogues के साथ हरे रंग में लक्ष्य छाछ) के साथ MTase की XXXXX = मान्यता अनुक्रम। एक पत्रकार समूह युक्त Aziridine सहकारकों (नीले क्षेत्र)विशेष रूप से लक्ष्य छाछ (बाएं) और डबल सक्रिय AdoMet analogues के साथ युग्मित अनुक्रम एडिनाइन अंगूठी करने के लिए कर रहे हैं संलग्न चरण में एक दूसरे bioorthogonal क्लिक प्रतिक्रिया से लेबल किया जा सकता है, जो एक रासायनिक संवाददाता वाई (दाएं) को ले जाने के लिए बढ़ाया अल्काइल श्रृंखला के हस्तांतरण के लिए सीसा। इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

Aziridine सहकारकों डीएनए MTases के साथ सबसे अच्छा काम करते हैं। वे एक नाइट्रोजन परमाणु 9 (या एक एन 10,11 -mustard) के बजाय sulfonium केंद्र के रूप में प्रतिक्रियाशील समूह के साथ एक तीन अंग का अंगूठी होते हैं। इस नाइट्रोजन परमाणु के Protonation डीएनए के साथ पूरे cofactor के युग्मन सहसंयोजक की ओर जाता है, जो लक्ष्य न्यूक्लियोटाइड द्वारा न्युक्लेओफ़िलिक हमले के लिए aziridine अंगूठी सक्रिय। एडिनाइन अंगूठी के लिए रिपोर्टर समूहों संलग्न द्वारा aziridine सहकारकों (एक कदम में डीएनए लेबल करने के लिए डीएनए MTases साथ संयोजन में उपयोग किया जा सकता है <stron जी> बाएं चित्रा 1 बी), 7,12। , 15 (एडिनाइन अंगूठी के 6 स्थिति से जुड़ी बायोटिन के साथ aziridine cofactor के) और बेसिलस stearothermophilus से एडिनाइन विशिष्ट डीएनए MTase (M.BseCI) 16 (चित्रा 2 यह 6BAz 13 के साथ डीएनए की biotinylation के लिए विस्तार से प्रदर्शन किया है ) डीएनए से एक कदम लेबलिंग aziridine सहकारकों के माध्यम से: प्रोटोकॉल खंड 2 देखें। हेमोफिलस heamolyticus से M.BseCI (5'-ATCG टी 3 'मान्यता अनुक्रम), Thermus aquaticus (M.TaqI, 5'-टीसीजी -3 से डीएनए MTases'), के अलावा (M.HhaI, 5 'जी सी जी सी-3') और Spiroplasma (M.SssI से, 5'- सी जी-3 ') सफलतापूर्वक 6BAz 17 के साथ डीएनए biotinylate करने के लिए इस्तेमाल किया गया है। इसके अलावा, aziridine सहकारकों एक कदम प्रतिदीप्ति डीएनए लेबलिंग 18,19 के लिए नियोजित किया जा सकता है।

ontent "के लिए: रख-together.within पृष्ठ =" हमेशा "> चित्रा 2
चित्रा 2:। M.BseCI और 6BAz साथ डीएनए के अनुक्रम विशिष्ट एक कदम biotinylation डीएनए MTase M.BseCI डबल असहाय डीएनए अनुक्रम 5'-ATCG टी 3 'को पहचानता है और स्वाभाविक रूप से दूसरे एडिनाइन के अमीनो समूह methylates छाछ (हरा) AdoMet का उपयोग कर। Aziridine cofactor के 6BAz के साथ प्रतिक्रिया की दिशा बदल दी है और M.BseCI लक्ष्य एडिनाइन साथ बायोटिन (नीला) सहित पूरे cofactor के युग्मन द्वारा विशिष्ट डीएनए biotinylation अनुक्रम की ओर जाता है। यह आंकड़ा का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

डबल सक्रिय AdoMet analogues के असंतृप्त पक्ष श्रृंखला के बजाय sulfonium केंद्र में एक मिथाइल समूह (चित्रा 1 बी विस्तारित होते </stronG>, दाएं) 20। sulfonium केंद्र के लिए β-स्थिति में असंतृप्त डबल या ट्रिपल बंधन को इलेक्ट्रॉनिक conjugative स्थिरीकरण द्वारा संक्रमण राज्य के भीतर प्रतिकूल steric प्रभाव compensates। Sulfonium केंद्र और असंतृप्त बांड दोनों एंजाइमी हस्तांतरण के लिए पक्ष श्रृंखला को सक्रिय करने के बाद, इन सहकारकों डबल सक्रिय AdoMet analogues के नाम थे। आमतौर पर, वे एक दूसरे कदम 8,21 में केमो-चयनात्मक लेबलिंग के लिए, अमीनो, alkyne और azide के समूहों की तरह अद्वितीय रासायनिक समूहों (रासायनिक संवाददाताओं से), के साथ पक्ष श्रृंखला स्थानांतरित करने के लिए उपयोग किया जाता है। आरएनए और प्रोटीन की अतिरिक्त लेबलिंग की अनुमति के 28 – सामान्य में, डबल सक्रिय AdoMet analogues के शाही सेना MTases 22,23 डीएनए MTases 8,20,21 के लिए, लेकिन यह भी के लिए सहकारकों और प्रोटीन MTases 24 के रूप में न केवल कार्य कर सकते हैं। हालांकि, विस्तारित पक्ष श्रृंखला sterically अधिक एक मिथाइल समूह की तुलना में मांग और इंजीनियरिंग बहुधा है प्रोटीन से MTase सक्रिय साइटों विस्तार कर रहे हैंएन कुशल अंतरण दर प्राप्त करने के लिए आवश्यक है। कॉपर द्वारा रासायनिक संशोधनों के बाद के लिए एंजाइमी स्थानांतरण के दौरान संक्रमण राज्य के 1. स्थिरीकरण और 2. प्रतिक्रियाशील हैंडल: इस समस्या के लिए एक और समाधान के लिए एक छोटा सा propargyl टर्मिनल alkyne दो कार्यों में कार्य करता है जहां समूह (तीन कार्बन) के साथ एक AdoMet अनुरूप उपयोग करने के लिए है उत्प्रेरित azide-alkyne cycloaddition (CuAAC) रसायन शास्त्र क्लिक करें। यह जिसके परिणामस्वरूप propargylic AdoMet अनुरूप 29 तटस्थ या थोड़ा बुनियादी शर्तों के अधीन है और केवल सीमित उपयोग की काफी अस्थिर है कि बाहर कर दिया। इस खामी सेलेनियम के साथ सल्फर परमाणु जगह से तय किया जा सकता है। जिसके परिणामस्वरूप cofactor के 5 '- [(एसई) [(3) एस -3 अमीनो-3-carboxypropyl] सहारा-2-ynylselenonio] -5'-deoxyadenosine (SeAdoYn, चित्रा 3) जंगली प्रकार के डीएनए द्वारा स्वीकार किया जाता है, आरएनए और प्रोटीन MTases 30 – कई मामलों में प्रोटीन इंजीनियरिंग के लिए की जरूरत रद्द जो 32। इस प्रतिदीप्ति समर्थक द्वारा उदाहरण है हिस्टोन H3 लाइसिन साथ Tein लेबलिंग 4 (H3K4) MTase Set7 / 9 33 (: डबल सक्रिय सहकारकों के माध्यम से दो कदम प्रोटीन लेबलिंग चित्रा 3, प्रोटोकॉल धारा 3 देखें)।

चित्रा 3
चित्रा 3:। Set7 / 9 के साथ हिस्टोन H3 के अनुक्रम विशिष्ट दो कदम प्रतिदीप्ति लेबलिंग, SeAdoYn और Tamra azide के प्रोटीन MTase Set7 / 9 स्वाभाविक रूप से AdoMet का उपयोग करते हुए हिस्टोन H3 में लाइसिन 4 के अमीनो समूह (H3K4, हरा) methylates। डबल सक्रिय cofactor के साथ SeAdoYn MTase लाइसिन अवशेषों को एक छोटे से propargyl समूह (लाल) स्थानान्तरण। संलग्न टर्मिनल ट्रिपल बंधन तो चुनिंदा azide-derivatized Tamra (tetramethylrhodamine, नीला) फ्लोरोफोरे के साथ एक bioorthogonal क्लिक प्रतिक्रिया (तांबा-उत्प्रेरित azide-alkyne cycloaddition, CuAAC) में संशोधित किया गया है।लोड / 52,014 / 52014fig3highres.jpg "लक्ष्य =" _blank "> इस आंकड़े का एक बड़ा संस्करण देखने के लिए यहां क्लिक करें।

Protocol

1. सामान्य निर्देश स्टोर aziridine cofactor (DMSO में) 6BAz और प्रोटीन MTase -80 डिग्री सेल्सियस पर Set7 / 9 और डबल सक्रिय cofactor के SeAdoYn और डीएनए MTase M.BseCI -20 डिग्री सेल्सियस पर (50% में ग्लिसरॉल) सहित अन्य सभी अभिकर्मकों। विआयनीकृत पान?…

Representative Results

Aziridine Cofactors के माध्यम से डीएनए के एक कदम लेबल यह उदाहरण प्रतिक्रिया डबल असहाय 5'-ATCG ए टी 3 'अनुक्रम के भीतर दूसरा एडिनाइन अवशेषों को संशोधित और pBR322 प्लाज्मिड (चित्रा -4 ए) पर एक मान्य?…

Discussion

डीएनए MTases और aziridine सहकारकों (मुस्कुराते हुए डीएनए) के साथ डीएनए से एक कदम लेबलिंग एक मजबूत तरीका है, लेकिन प्रयोग की योजना बनाते समय कुछ पहलुओं पर विचार किया जाना चाहिए।

Aziridine cofactor: M.BseCI के साथ डीए?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

The authors thank Kerstin Glensk for preparing the MTases M.BseCI and Set7/9 and gratefully acknowledge funding by the Excellence Initiative of the German Federal and State Governments and RWTH Aachen University. The authors are happy to provide 6BAz and SeAdoYn or other cofactor analogues for collaborative research.

Materials

Name of Reagent/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
6BAz Synthesized according to Weinhold et al., Patent number US 8,129,106, published March 6, 2012.
β-Mercaptoethanol Serva 28625
Acetic acid Fisher Scientific 10304980
Acrylamide/Bis Solution, 37.5:1 Serva 10688
UltraPure Agarose Invitrogen 16500100
Ammonium persulfate (APS) Serva 13375
Bis-Tris Gerbu 1304
Boric acid Gerbu 1115
Bromophenol blue Na salt Serva 15375
Copper(II) sulfate Aldrich C1297
Chloroform Fisher Scientific 10020090
Coomassie Brilliant Blue Serva 17525
EDTA disodium salt Gerbu 1034
Ethanol Merck 100983
GelRed (10000x in water) Biotium 41003
Glycerol (99.5%) Gerbu 2006
FastRuler Low Range DNA Ladder Thermo Scientific SM1103
Histone H3 Expressionplasmid obtained from Dr. Philipp Voigt and Prof. Danny Reinberg; expression and isolation according to T. J. Richmond et al., J. Mol. Biol. 1997, 272, 301-311.
M.BseCI Expressionplasmid obtained from Dr. Michael Kokkinidis; expression and isolation according to Kapetaniou et al., Acta Cryst. 2006, F63, 12-14.
Methanol Fisher Scientific 10675112
Magnesiumchloride  hexahydrate J.T. Baker 4003
MOPS Gerbu 1081
Sodium chloride Gerbu 1112
pH strip (Neutralit) Merck 1,095,330,001
pBR322 Thermo Scientific SD0041
R.TaqI (10u/µl) Thermo Scientific ER0671
SeAdoYn Synthesized according to Willnow et al., ChemBioChem 2012, 13, 1167-1173.
Set7/9 Expressionplasmid obtained from Prof. Danny Reinberg, expression and isolation according to D. Reinberg et al., Genes Dev.2002, 16, 479-489.
Streptavidin Gerbu 3058
(+)-Sodium L-ascorbate Sigma Life Science A7631
SDS Granular Gerbu 1833
di-Sodiumhydrogenphosphat Merck 106,586
TAMRA-azide
TaqI buffer (10x) Thermo Scientific B28
N,N,N',N'-Tetramethylethylenediamine (TEMED) Acros Organics 42058
Tris-HCl Gerbu 1028
Tris-X (TRIS-base) Gerbu 1018
Tris(3-hydroxypropyltriazolyl-methyl)amine (THPTA) Sigma-Aldrich 762342

References

  1. Gottfried, A., Weinhold, E. Sequence-specific covalent labelling of DNA. Biochem. Soc. Trans. 39, 623-628 (2011).
  2. Zohar, H., Muller, S. J. Labeling DNA for single-molecule experiments: methods of labeling internal specific sequences on double-stranded DNA. Nanoscale. 3, 3027-3039 (2011).
  3. Hinner, M. J., Johnsson, K. How to obtain labeled proteins and what to do with them. Curr. Opin. Biotechnol. 21, 766-776 (2010).
  4. Wua, Y. -. W., Goody, R. S. Probing protein function by chemical modification. J. Pept. Sci. 16, 514-523 (2010).
  5. Struck, A. -. W., Thompson, M. L., Wong, L. S., Micklefield, J. S-Adenosyl-methionine-dependent methyltransferases: Highly versatile enzymes in biocatalysis, biosynthesis and other biotechnological applications. ChemBioChem. 13, 2642-2655 (2012).
  6. Klimasauskas, S., Weinhold, E. A new tool for biotechnology: AdoMet-dependent methyltransferases. Trends Biotechnol. 25, 99-104 (2007).
  7. Pljevaljcic, G., Schmidt, F., Weinhold, E. Sequence-specific Methyltransferase-Induced Labeling of DNA (SMILing DNA). ChemBioChem. 5, 265-269 (2004).
  8. Lukinavicius, G., Lapiene, V., Stasevskij, Z., Dalhoff, C., Weinhold, E., Klimasauskas, S. Targeted labeling of DNA by methyltransferase-directed Transfer of Activated Groups (mTAG). J. Am. Chem. Soc. 129, 2758-2759 (1021).
  9. Pignot, M., Siethoff, C., Linscheid, M., Weinhold, E. Coupling of a nucleoside with DNA by a methyltransferase. Angew. Chem. Int. Ed. 37, 2888-2891 (1998).
  10. Weller, R. L., Rajski, S. R. Design, synthesis, and preliminary biological evaluation of a DNA methyltransferase-directed alkylating agent. ChemBioChem. 7, 243-245 (2006).
  11. Du, Y., Hendrick, C. E., Frye, K. S., Comstock, L. R. Fluorescent DNA Labeling by N-Mustard Analogues of S-adenosyl-l-methionine. ChemBioChem. 13, 2225-2233 (2012).
  12. Pljevaljcic, G., Schmidt, F., Scheidig, A. J., Lurz, R., Weinhold, E. Quantitative labeling of long plasmid DNA with nanometer precision. ChemBioChem. 8, 1516-1519 (1002).
  13. Wilkinson, S., et al. Molecular scale architecture: engineered three- and four-way junctions. Bioconjugate Chem. 19, 470-475 (2008).
  14. Braun, G., et al. Enzyme-directed positioning of nanoparticles on large DNA templates. Bioconjugate Chem. 19, 476-479 (2008).
  15. Kim, S., et al. Enzymatically incorporated genomic tags for optical mapping of DNA binding proteins. Chem. Int. Ed. 51, 3578-3581 (2012).
  16. Rina, M., Bouriotis, V. Cloning purification and characterization of the BseCI DNA methyltransferase from Bacillus stearothermophilus. Gene. 133, 91-94 (1993).
  17. Weinhold, E., Meier, T., Düfel, H., Markert-Hahn, C., Schmuck, R. Sequence-specific detection of methylation in biomolecules. US Patent. , (2012).
  18. Pljevaljcic, G., Pignot, M., Weinhold, E. Design of a new fluorescent cofactor for DNA methyltransferases and sequence-specific labeling of DNA. J. Am. Chem. Soc. 125, 3492-3410 (2003).
  19. Schmidt, F. H. -. G., Hüben, M., Gider, B., Renault, F., Teulade-Fichou, M. -. P., Weinhold, E. Sequence-specific Methyltransferase-Induced Labelling (SMILing) of plasmid DNA for studying cell transfection. Bioorg. Med. Chem. 16, 40-48 (2008).
  20. Dalhoff, C., Lukinavicius, G., Klimasauskas, S., Weinhold, E. Direct transfer of extended groups from synthetic cofactors by DNA methyltransferases. Nat. Chem. Biol. 2, 31-32 (2006).
  21. Lukinavicius, G., Tomkuviene, M., Masevicius, V., Klimasauskas, S. Enhanced chemical stability of AdoMet analogues for improved methyltransferase-directed labeling of DNA. ACS Chem. Biol. 8, 1134-1139 (2013).
  22. Motorin, Y., et al. Expanding the chemical scope of RNA:methyltransferases to site-specific alkynylation of RNA for click labeling. Nucleic Acids Res. 39, 1943-1952 (1943).
  23. Schulz, D., Holstein, J. M., Rentmeister, A. A chemo-enzymatic approach for site-specific modification of the RNA cap. Angew. Chem. Int. Ed. 52, 7874-7878 (2013).
  24. Peters, W., et al. Enzymatic site-specific functionalization of protein methyltransferase substrates with alkynes for click labeling. Angew. Chem. Int. Ed. 49, 5170-5173 (2010).
  25. Islam, K., Zheng, W., Yu, H., Deng, H., Luo, M. Expanding cofactor repertoire of protein lysine methyltransferase for substrate labeling. ACS Chem. Biol. 6, 679-684 (2011).
  26. Wang, R., Zheng, W., Yu, H., Deng, H., Luo, M. Labeling substrates of protein arginine methyltransferase with engineered enzymes and matched S-adenosyl-l-methionine analogues. J. Am. Chem. Soc. 133, 7648-7651 (2011).
  27. Islam, K., et al. Bioorthogonal profiling of protein methylation using azido derivative of S-adenosyl-l-methionine. J. Am. Chem. Soc. 134, 5909-5915 (2012).
  28. Islam, K., et al. Defining efficient enzyme-cofactor pairs for bioorthogonal profiling of protein methylation. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 110, 16778-16783 (2013).
  29. Binda, O., Boyce, M., Rush, J. S., Palaniappan, K. K., Bertozzi, C. R., Gozani, O. A chemical method for labeling lysine methyltransferase substrates. ChemBioChem. 12, 330-334 (2011).
  30. Willnow, S., Martin, M., Lüscher, B., Weinhold, E. A selenium-based click AdoMet analogue for versatile substrate labeling with wild-type protein methyltransferases. ChemBioChem. 13, 1167-1173 (2012).
  31. Bothwell, I. R., et al. Se-Adenosyl-l-selenomethionine cofactor analogue as a reporter of protein methylation. J. Am. Chem. Soc. 134, 14905-14912 (2012).
  32. Tomkuviene, M., Clouet-d’Orval, B., Cerniauskas, I., Weinhold, E., Klimasauskas, S. Programmable sequence-specific click-labeling of RNA using archaeal box C/D RNP methyltransferases. Nucleic Acids Res. 40, 6765-6773 (2012).
  33. Nishioka, K., et al. Set9, a novel histone H3 methyltransferase that facilitates transcription by precluding histone tail modifications required for heterochromatin formation. Genes Dev. 16, 479-489 (2002).
  34. Clark, P. M., et al. Direct in-gel fluorescence detection and cellular imaging of O-GlcNAc-modified proteins. J. Am. Chem. Soc. 130, (2008).
  35. Lukinavicius, G., Lapinaite, A., Urbanaviciute, G., Gerasimaite, R., Klimasauskas, S. Engineering the DNA cytosine-5 methyltransferase reaction for sequence-specific labeling of DNA. Nucleic Acids Res. 40, 11594-11602 (2012).
  36. Neely, R. K., Dedecker, P., Hotta, J., Urbanaviciute, G., Klimasauskas, S., Hofkens, J. DNA fluorocode: A single molecule, optical map of DNA with nanometre resolution. Chem. Sci. 1, 453-460 (2010).
  37. Roberts, R. J., Vincze, T., Posfai, J., Macelis, D. REBASE-a database for DNA restriction and modification: enzymes, genes and genomes. Nucleic Acids Res. 38, 234-236 (2010).
  38. Petrossian, T. C., Clarke, S. G. Uncovering the human methyltransferasome. Mol. Cell. Proteomics. 10, 1-12 (2011).
  39. Kriukiene, E., et al. DNA unmethylome profiling by covalent capture of CpG sites. Nat. Commun. 4, 2190 (2013).
  40. Wang, R., et al. Profiling genome-wide chromatin methylation with engineered posttranslation apparatus within living cells. J. Am. Chem. Soc. 135, 1048-1056 (2013).
  41. Zhang, C., Weller, R. L., Thorson, J. S., Rajski, S. R. Natural product diversification using a non-natural cofactor analogue of S-adenosyl-l-methionine. J. Am. Chem. Soc. 128, 2760-2761 (2006).
  42. Stecher, H., et al. Biocatalytic Fiedel-Crafts alkylation using non-natural cofactors. Angew. Chem. Int. Ed. 48, 9546-9548 (2009).
  43. Lee, B. W. K., Sun, H. G., Zang, T., Kim, B. J., Alfaro, J. F., Zhou, Z. S. Enzyme-catalyzed transfer of a ketone group from an S-adenosylmethionine analogue: A tool for the functional analysis of methyltransferases. J. Am. Chem. Soc. 132, 3642-3643 (2010).
  44. Winter, J. M., et al. Expanding the structural diversity of polyketides by exploring the cofactor tolerance of an inline methyltransferase domain. Org. Lett. 15, 3774-3777 (2013).

Play Video

Cite This Article
Hanz, G. M., Jung, B., Giesbertz, A., Juhasz, M., Weinhold, E. Sequence-specific Labeling of Nucleic Acids and Proteins with Methyltransferases and Cofactor Analogues. J. Vis. Exp. (93), e52014, doi:10.3791/52014 (2014).

View Video