Summary

Analysera effekterna av stromaceller celler på rekrytering av leukocyter från Flow

Published: January 07, 2015
doi:

Summary

Förmågan hos inflammerat endotel att rekrytera leukocyter från flödet regleras av mesenkymala stromaceller. Vi beskriver två in vitro-modeller innehåller primära humana celler som kan användas för att bedöma neutrofila rekrytering från flödet och undersöka vilken roll mesenkymala stromaceller spela i regleringen av denna process.

Abstract

Stromalceller reglerar rekryteringen av cirkulerande leukocyter under inflammation genom överhörning med grann endotelceller. Här beskriver vi två in vitro "kärl" modeller för att studera rekrytering av cirkulerande neutrofiler från flödet av inflammerade endotelceller. En stor fördel med dessa modeller är förmågan att analysera varje steg i leukocytadhesionen kaskad i ordning, som skulle uppträda in vivo. Vi beskriver också hur båda modellerna kan anpassas för att studera rollen av stromaceller, i detta fall mesenkymala stamceller (MSC), i regleringen av leukocytrekrytering.

Primära endotelceller odlades ensamma eller tillsammans med humant MSC i direkt kontakt på Ibidi microslides eller på motsatta sidor av en Transwell-filter under 24 timmar. Kulturer stimulerades med tumömekrosfaktor alfa (TNFa) under 4 h och införlivas i en flödesbaserad vidhäftningsanalys. En bolus av neutrofiler perfunderadesöver endotelet under 4 min. Fångst av flödande neutrofiler och deras interaktioner med endotelet visualiserades genom faskontrastmikroskopi.

I båda modellerna, ökad cytokin-stimulering endothelial rekrytering av flödande neutrofiler i ett dosberoende sätt. Analys av beteendet av rekryterade neutrofiler uppvisade en dosberoende minskning i valsning och en dosberoende ökning av transmigration genom endotelet. I co-kultur, MSC tryckt neutrofiladhesion till TNF-stimulerad endotel.

Våra flödesbaserade-vidhäftningsmodeller likna de inledande faserna av leukocytrekrytering från cirkulationen. Förutom leukocyter, kan de användas för att undersöka rekrytering av andra celltyper, såsom terapeutiskt administrerade MSC eller cirkulerande tumörceller. Våra flerskiktade co-kultur-modeller har visat att MSC kommunicerar med endotel att ändra sitt svar på pro-inflammatoriska cytokiner, Altering rekrytering av neutrofiler. Ytterligare forskning med hjälp av sådana modeller krävs för att till fullo förstå hur stromaceller från olika vävnader och villkor (inflammatoriska sjukdomar eller cancer) påverka rekryteringen av leukocyter under inflammation.

Introduction

Inflammation är ett skyddande svar på mikrobiell infektion eller vävnadsskada som kräver tät reglering av leukocyt inträde i och utträde ur den inflammerade vävnaden att tillåta upplösning 1,2. Överhörning mellan endotelceller (EG) att linje blodkärl, cirkulerande leukocyter och vävnads bosatt stromaceller är avgörande för att samordna denna process 3. Men okontrollerad rekrytering av leukocyter och deras ineffektiva avslut främja utvecklingen av kroniska inflammatoriska sjukdomar 4. Vår nuvarande förståelse av leukocytrekrytering i hälsa och sjukdom är ofullständig och mer robusta modeller behövs för att analysera denna process.

De mekanismer som stöder rekryteringen av leukocyter från blod genom kärl EG i postkapillära venoler har väl beskrivits 1,2,5. Cirkulerande leukocyter fångas av specialiserade receptorer (t.ex. VCAM-1, E-selektin, P-selektin), vilkaär uppreglerat på inflammerat endotel. Dessa transienta interaktioner tillåter leukocyter att interagera med ytan bundna kemokiner och lipid-härledda mediatorer (antingen endotelceller eller stromala ursprung) som aktiverar integriner som uttrycks av leukocyter 6- 11. Detta i sin tur stabiliserar vidhäftning och enheter migration över endotelet och in i vävnaden 12- 15. Inom mjukpapper, rekryterade leukocyter utsätts för stromala-härledda ämnen som påverkar deras rörlighet, funktion och överlevnad 16,17. Växande bevis tyder starkt på att signaler som tas emot i varje skede av rekryteringsprocessen villkor leukocyter för nästa. Dock kvarstår vår förståelse av leukocytrekrytering ofullständig och mycket lite är känt om komponenter formande leukocyt rörelse inom mjukpapper.

I Birmingham har vi utvecklat flera in vitro "kärl" modeller för att studera rekrytering av leukocyter frånflöde 9,18,19. Vi förstår nu att vaskulär EG agera som omedelbara regulatorer av leukocytrekrytering reagera på förändringar i sin lokala mikromiljö. Specifikt kan vävnads bosatt stromaceller aktivt reglera det inflammatoriska svaret, delvis av att samtala med grannkärl EG att påverka sin roll i rekryteringen 3. Vi har tidigare visat att olika stromaceller modulera förmågan hos EG att stödja adhesion och migration av leukocyter i ett vävnadsspecifikt sätt, och att dessa effekter blir förändrad i kroniska sjukdomar 13,16,20,21. Således stromaceller etablera vävnads "adress-koder" som definierar ramen för varje inflammatoriskt svar 22. På senare tid har vi visat att benmärg härledd MSC (BMMSC) potent nedreglera svaret från EG till cytokiner, vilket leder till en minskning av rekrytering av både neutrofiler och lymfocyter 23.

Mekanismerna governing rekrytering klar in vitro har i stor utsträckning använt analyser innehåller en enda celltyp (t.ex. EG) eller protein isolerat. Men dessa studier inte hänsyn till effekterna av den lokala vävnadsmiljön (dvs. förekomst av stromaceller) om rekrytering av leukocyter och deras efterföljande migration in i vävnaden. Här beskriver vi två flödesbaserade metoder där stromaceller, speciellt mesenkymala stamceller (MSC), samar odlade med EG 23. Sådana modeller tillåter oss att undersöka effekten av stromal cell på endotelceller svar, särskilt deras förmåga att stödja leukocytrekrytering från flödet.

Protocol

1. Isolering och odling av primära humana endotelceller och mesenkymala stamceller Isolering och odling av humana umbilikalvensendotelceller (HUVEC): Sätt navelsträngen på en bricka med hushållspapper och spraya med 70% etanol. Placera i en vävnadskultur huva. Identifiera venen och kanylera i båda ändar. Placera ett buntband runt kanyl änden för att fästa den. Skölj venöst blod med PBS med hjälp av en spruta. Fyll sprutan med luft och passera genom venen för att ta bort och k…

Representative Results

Inledningsvis analyserade vi effekten av att stimulera EG med TNF på rekrytering av neutrofiler från flödet med hjälp av Micromodellen Ibidi (avsnitt 7-9). I frånvaro av TNF, lite om några neutrofiler följs endothelial monolager (Figur 2A). Detta var väntat, eftersom obehandlad / vila EG uttrycker inte de nödvändiga adhesionsmolekyler (selektiner) eller kemokiner att stödja bindande 25,26. I motsats, cytokin-stimulering ökade signifikant neutrofil vidhäftning til…

Discussion

Här beskriver vi två in vitro "kärl" modeller för att studera rekrytering av cirkulerande neutrofiler med inflammerat endotel. En stor fördel med dessa modeller är förmågan att analysera varje steg i leukocytadhesionen kaskad i ordning, som skulle uppträda in vivo. Vi har tidigare observerat en dosberoende ökning av neutrofiladhesion till och själa genom TNF-stimulerad EG 9,29. Vi beskriver också hur de båda modellerna kan anpassas för att studera effekterna av stroma…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Umbilical cords were collected with the assistance of the Birmingham Women’s Health Care NHS Trust. HMM was supported by an Arthritis Research UK Career Development Fellowship (19899) and Systems Science for Health, University of Birmingham (5212).

Materials

Collagenase Type Ia Sigma C2674 Dilute in 10ml PBS to get a final concentration of 10mg/ml. Store at -20°C in 1ml aliquots.
Dulbecco's PBS Sigma D8662 With calcium and magnesium chloride. Keep sterile and store at room temperature.
1X Medium M199 Gibco 31150-022 Warm in 37 °C water bath before use.
Gentamicin sulphate Sigma G1397 Store at 4°C. Add to M199 500ml bottle.
Human epidermal growth factor Sigma E9644 Store at -20°C in 10µl aliquots.
Fetal calf serum (FCS) Sigma F9665 FCS must be batch tested to ensure the growth and viability of isolated EC. Heat inactivate at 56°C. Store in 10ml aliquots at -20°C.
Amphotericin B Gibco 15290-026 Potent and becomes toxic within a week so fresh complete HUVEC medium must be made up every week. Store at -20°C in 1ml aliquots.
Hydrocortisone Sigma H0135 Stock is in ethanol. Store at -20°C in 10µl aliquots.
Collagenase Type II Sigma C6885 Dilute stock in PBS to a final concentration of 100mg/ml. Store at -20°C in 100µl aliquots.
Hyaluronidase Sigma H3631 Dilute stock in PBS to a final concentration of 20,000U/ml. Store at -20°C in 100µl aliquots.
100µm cell strainer for 50ml centifuge tube Scientific Lab Supplies (SLS) 352360 Other commercially available cell strainers (e.g. Greiner bio-one) can also be used.
DMEM low glucose Biosera LM-D1102/500 Warm in 37 °C water bath before use.
Penicillin/Streptomycin mix Sigma P4333 Store at -20°C in 1ml aliquots.
25cm2 tissue culture flask SLS 353109
75cm2 tissue culture flask SLS 353136
Bone marrow mesenchymal stem cells vial Lonza PT-2501 Store in liquid nitrogen upon arrival. Cells are at passage 2 upon arrival but are designated passage 0. Exapand to passage 3 and store in liquid nitrogen for later use.
Mesenchymal stem cell growth medium (MSCGM) Lonza PT-3001 Warm in 37 °C water bath before use. For Cell Tracker Green staining use medium without FCS.
EDTA (0.02%) solution Sigma E8008 Store at 4°C. Warm in 37°C water bath before use.
Trypsin solution Sigma T4424 Store at -20°C in 2ml aliquots. Thaw at room temperature and use immediately.
Cryovials Greiner bio-one 2019-02 Keep on ice before adding before adding cell suspension.
Mr. Frosty Freezing Container Nalgene 5100-0001 Store at room temperature. When adding cryovials with cells store at -80°C for 24h before transfrring cells to liquid nitrogen.
Ibidi u-Slide VI (0.4), T/C treated, sterile Ibidi IB-80606 Alternative models include glass capillaries, Cellix Biochips (www.cellixltd.com), BioFlux Plates (www.fluxionbio.com/bioflux/) and GlycoTech parallel plate flow chambers (http://www.glycotech.com/apparatus/parallel.html).
Cell tracker green dye Life technologies C2925 Store in 5µl aliquots at -20°C. Dilute in 5ml prewarmed (at 37°C) MSCGM.
Cell counting chambers Nexcelom SD-100 Alternatively a haemocytometer can be used.
Cellometer auto T4 cell counter Nexcelom Auto T4-203-0238
Tumor necrosis factor α (TNFα) R&D Systems 210-TA-100 Dilute stock in PBS to a final concentration of 100,000U/ml. Store at -80°C in 10µl aliquots.
6-well, 0.4µm PET Transwell filters SLS 353090
K2-EDTA in 10ml tubes Sarstedt Store at room temperature.
Histopaque 1119 Sigma 11191 Store at 4°C. Warm to room temperature before use.
Histopaque 1077 Sigma 10771 Store at 4°C. Warm to room temperature before use.
10ml round bottomed tube Appleton Woods SC211 142 AS
7.5% BSA Fraction V solution Life technologies 15260-037 Store at 4°C.
20ml Plastipak syringes BD falcon 300613
5ml Plastipak syringes BD falcon 302187
2ml Plastipak syringes BD falcon 300185
3M hypo-allergenic surgical tape 9m x 2.5cm Micropore 1530-1 Use to secure the syringe tap onto the wall of the perspex chamber.
Silicon rubber tubing, internal diameter/external diameter (ID/OD) of 1/3mm (thin tubing) Fisher Scientific FB68854 Cut silicon tubing to the appropriate size. All tubing leading directly to the electronic microvalve must be thin.
Silicon rubber tubing ID/OD of 2/4mm (thick tubing) Fisher Scientific FB68855
Portex Blue Line Manometer tubing Smiths 200/495/200 Tubing leading to the syringe pump.
3-way stopcock BOC Ohmeda AB
Glass 50ml syringe for pump Popper Micromate 550962 Must be primed prior to use by removing any air bubbles.
Glass coverslip Raymond A Lamb 26x76mm coverslips made to order. Lot number 2440980.
Parafilm gasket American National Can Company Cut a 26x76mm piece of parafilm using an aluminium template and cut a 20x4mm slot into it using a scalpel 10a. Gasket thickness is approximately 133µm.
Two perspex parallel plates Wolfson Applied Technology Laboratory Specially designed chamber consisting of parallel plates held together by 8 screws. The lower plate has a viewing slot cut out in the middle and a shallow recess milled to allow space for the coverslip, filter and gasket. The upper perspex plate has an inlet and outlet hole positioned over the flow channel.
Electronic 3-way microvalve with min. dead space Lee Products Ltd. LFYA1226032H Electronically connected to a 12 volt DC power supply.
Syringe pump for infusion/withdrawal (PHD2000) Harvard Apparatus 70-2001 Set the diameter to 29mm and refill (flow) rate.
L-shaped connector Labhut LE876 To attach to the inlet and outlet ports onto the Ibidi microslide channel.
Video camera Qimaging 01-QIC-F-M-12-C Connected to a computer which enables digitall videos to be recorded.
Image-Pro Plus 7.0 Media Cybernetics 41N70000-61592 For data analysis. Manually tag cells displaying the different behaviors. Track cells for analysis of rolling and migration velocities.
Refer to product datasheets for details on hazards of using the reagents described here.

References

  1. Springer, T. A. Traffic signals on endothelium for lymphocyte recirculation and leukocyte emigration. Ann. Rev. Physiol. 57, 827-872 (1995).
  2. Ley, K., Laudanna, C., Cybulsky, M. I., Nourshargh, S. Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated. Nature reviews. Immunology. 7 (9), 678-689 (2007).
  3. McGettrick, H. M., Butler, L. M., Buckley, C. D., Rainger, G. E., Nash, G. B. Tissue stroma as a regulator of leukocyte recruitment in inflammation. Journal of leukocyte biology. 91 (3), 385-400 (2012).
  4. Serhan, C. N., Savill, J. Resolution of inflammation: the beginning programs the end. Nature immunology. 6 (12), 1191-1197 (2005).
  5. Schmidt, S., Moser, M., Sperandio, M. The molecular basis of leukocyte recruitment and its deficiencies. Molecular immunology. 55, 49-58 (2013).
  6. Luu, N. T., Rainger, G. E., Nash, G. B. Differential Ability of Exogenous Chemotactic Agents to Disrupt Transendothelial Migration of Flowing Neutrophils. The Journal of Immunology. 164 (11), 5961-5969 (2000).
  7. Smith, C. W., Rothlein, R., et al. Recognition of an endothelial determinant for CD 18-dependent human neutrophil adherence and transendothelial migration. The Journal of clinical investigation. 82 (5), 1745-1756 (1988).
  8. Luscinskas, F. W., Brock, A. F., Arnaout, M. A., Gimbrone, M. A. Endothelial-leukocyte adhesion molecule-1-dependent and leukocyte (CD11/CD18)-dependent mechanisms contribute to polymorphonuclear leukocyte adhesion to cytokine-activated human vascular endothelium. J. Immunol. 142 (7), (1989).
  9. Bahra, P., Rainger, G. E., Wautier, J. L., Nguyet-Thin, L., Nash, G. B. Each step during transendothelial migration of flowing neutrophils is regulated by the stimulatory concentration of tumour necrosis factor-alpha. Cell adhesion and communication. 6 (6), 491-501 (1998).
  10. Piali, L., Weber, C., et al. The chemokine receptor CXCR3 mediates rapid and shear-resistant adhesion-induction of effector T lymphocytes by the chemokines IP10 and Mig. European journal of immunology. 28 (3), 961-972 (1998).
  11. McGettrick, H. M., Smith, E., et al. Fibroblasts from different sites may promote or inhibit recruitment of flowing lymphocytes by endothelial cells. European journal of immunology. 39 (1), 113-125 (2009).
  12. McGettrick, H. M., Hunter, K., Moss, P. a., Buckley, C. D., Rainger, G. E., Nash, G. B. Direct observations of the kinetics of migrating T cells suggest active retention by endothelial cells with continual bidirectional migration. Journal of leukocyte biology. 85 (1), 98-107 (2009).
  13. McGettrick, H. M., Buckley, C. D., Filer, A., Rainger, G. E., Nash, G. B. Stromal cells differentially regulate neutrophil and lymphocyte recruitment through the endothelium. Immunology. 131 (3), 357-370 (2010).
  14. Tull, S. P., Yates, C. M., et al. Omega-3 Fatty acids and inflammation: novel interactions reveal a new step in neutrophil recruitment. PLoS biology. 7 (8), e1000177 (2009).
  15. Ahmed, S. R., McGettrick, H. M. Prostaglandin D2 regulates CD4+ memory T cell trafficking across blood vascular endothelium and primes these cells for clearance across lymphatic endothelium. Journal of immunology. 187 (3), 1432-1439 (2011).
  16. Bradfield, P. F., Amft, N., et al. Rheumatoid fibroblast-like synoviocytes overexpress the chemokine stromal cell-derived factor 1 (CXCL12), which supports distinct patterns and rates of CD4+ and CD8+ T cell migration within synovial tissue. Arthritis and rheumatism. 48 (9), 2472-2482 (2003).
  17. Filer, A., Parsonage, G., et al. Differential survival of leukocyte subsets mediated by synovial, bone marrow, and skin fibroblasts: site-specific versus activation-dependent survival of T cells and neutrophils. Arthritis and rheumatism. 54 (7), 2096-2108 (2006).
  18. Lally, F., Smith, E., et al. A novel mechanism of neutrophil recruitment in a coculture model of the rheumatoid synovium. Arthritis and rheumatism. 52 (11), 3460-3490 (2005).
  19. Chakravorty, S. J., McGettrick, H. M., Butler, L. M., Buckley, C. D., Rainger, G. E., Nash, G. B. An in vitro. model for analysing neutrophil migration into and away from the sub-endothelial space: Roles of flow and CD31. Biorheology. 43 (1), 71-82 (2006).
  20. Rainger, G. E., Nash, G. B. Cellular Pathology of Atherosclerosis Smooth Muscle Cells Prime Cocultured Endothelial Cells for Enhanced Leukocyte Adhesion. Circulation Research. 88 (6), 615-622 (2001).
  21. Kuravi, S. J., McGettrick, H. M. Podocytes regulate neutrophil recruitment by glomerular endothelial cells via IL-6-mediated crosstalk. Journal of immunology. 193 (1), 234-243 (2004).
  22. Parsonage, G., Filer, A. D. A stromal address code defined by fibroblasts. Trends in immunology. 26 (3), 150-156 (2005).
  23. Luu, N. T., McGettrick, H. M. Crosstalk between mesenchymal stem cells and endothelial cells leads to downregulation of cytokine-induced leukocyte recruitment. Stem cells. 31 (12), 2690-2702 (2013).
  24. Bevilacqua, M. P., Nelson, R. M., Mannori, G., Cecconi, O. Endothelial-leukocyte adhesion molecules in human disease. Annual review of medicine. 45, 361-378 (1994).
  25. Stanness, K. A., Beatty, P. G., Ochs, H. D., Harlan, J. M. An endothelial cell surface factor(s) induced in vitro. 136 (12), 4548-4553 (1986).
  26. Burton, V. J., Butler, L. M. Delay of migrating leukocytes by the basement membrane deposited by endothelial cells in long-term culture. Experimental cell research. 317 (3), 276-292 (2011).
  27. Luu, N. T., Rainger, G. E., Buckley, C. D., Nash, G. B. CD31 Regulates Direction and Rate of Neutrophil Migration over and under Endothelial Cells. Journal of Vascular Research. 40 (5), 467-479 (2003).
  28. McGettrick, H. M., Buckley, C. D., Ed Rainger, G., Nash, G. B. Influence of stromal cells on lymphocyte adhesion and migration on endothelial cells. Methods in molecular biology. 616, 49-68 (2010).
  29. Butler, L. M., McGettrick, H. M., Nash, G. B. Static and dynamic assays of cell adhesion relevant to the vasculature. Methods in molecular biology. 467, 211-228 (2009).
  30. Jeffery, H. C., Buckley, C. D., Moss, P., Rainger, G. E., Nash, G. B., McGettrick, H. M. Analysis of the effects of stromal cells on the migration of lymphocytes into and through inflamed tissue using 3-D culture models. Journal of immunological methods. 400-401, 45-57 (2013).
check_url/52480?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Munir, H., Rainger, G. E., Nash, G. B., McGettrick, H. Analyzing the Effects of Stromal Cells on the Recruitment of Leukocytes from Flow. J. Vis. Exp. (95), e52480, doi:10.3791/52480 (2015).

View Video