Summary

RNA Isolering från Cell Specifika Subpopulationer Använda Laser-capture Microdissection Kombinerat med Rapid immunomärkning

Published: April 11, 2015
doi:

Summary

Genuttryck analys av en delmängd av celler i en specifik vävnad utgör en stor utmaning. I artikeln beskrivs hur du isolera högkvalitativa total-RNA från en specifik cellpopulation genom att kombinera en snabb immunomärkning metod med laser capture microdissection.

Abstract

Laser capture microdissection (LCM) möjliggör isolering av specifika celler från tunna sektioner vävnad med hög rumslig upplösning. Effektiv LCM kräver exakt identifiering av celler subpopulationer från en heterogen vävnad. Identifiering av celler av intresse för LCM är vanligtvis baserad på morfologiska kriterier eller fluorescerande protein reportrar. Kombinationen av LCM och snabb immunomärkning erbjuder ett alternativt och effektivt sätt att visualisera specifika celltyper och att isolera dem från omgivande vävnad. Högkvalitativ RNA kan sedan extraheras från en ren cellpopulation och bearbetas vidare för tillämpningar efter, inklusive RNA-sekvensering, microarray eller QRT-PCR. Detta synsätt har tidigare utförts och kortfattat beskrivet i några publikationer. Målet med denna artikel är att belysa hur man utför en snabb immunomärkning av en cellpopulation samtidigt RNA integritet, och hur man kan isolera dessa specifika celler med hjälp LCM. Häri vi illustrerad detta förfarande i flera steg genom immunomärkning och fånga dopaminerga celler i hjärnvävnad från en dag gamla möss. Vi belysa viktiga kritiska steg som förtjänar särskild uppmärksamhet. Detta protokoll kan anpassas till en variation av vävnader och celler av intresse. Forskare från olika områden kommer sannolikt gynnas av demonstration av denna strategi.

Introduction

Hjärnan består av ett stort utbud av olika neuron typer bildar komplexa nätverk. Dessa nervceller är organiserade i olika grupper och undergrupper enligt deras morfologi, uppkoppling och genuttryck mönster 1. Utvecklingen av mikroarrayer, nästa generations sekvensering, och QRT-PCR erbjöd möjligheten att jämföra genuttrycksprofilerna av neuronala populationer i olika biologiska sammanhang 1,2. Dessa känsliga analyser kräver exakt identifiering och isolering av celltyper av intresse samtidigt hålla RNA integritet 2-4. Fluorescensaktiverad cellsortering (FACS) teknik har använts i stor omfattning för att isolera specifika celltyper baserade på markörer och / eller morfologi på cellytan. FACS kräver en cell dissociation steg före sortering, vilket resulterar i en fullständig förlust av rumslig upplösning 5. Många neuronala subpopulationer särskiljs från varandra enligt deras anatomiska distribution i the hjärnan. Laser capture microdissection appliceras på tunna hjärnsektioner ger ett lämpligt alternativ för specifik isolering av celler med hög rumslig upplösning 6-8. En viktig begränsning av LCM har varit behovet att identifiera celler av intresse baserade på morfologiska kriterier eller fluorescerande protein reportrar genmanipulerade i djurmodeller. Utvecklingen av nya tekniker för att utföra snabba immunomärkning metoder som bevarade RNA integritet, i kombination med LCM, gör det nu möjligt isolering av cellpopulationer att gå vidare med gen-profileringsexperiment.

Detta synsätt har tidigare utförts och beskrivs kortfattat i några publikationer 1,9-13. Här visar vi ett detaljerat förfarande för att få hög kvalitet RNA från en särskild undergrupp av celler i en komplex vävnadsstruktur genom att kombinera snabb immunomärkning med LCM. Vi visar hur du utför viktiga kritiska åtgärder för att få maximal RNA återhämtning och undvika RNA nedbrytning eftersom det kan SIGligt slag genuttryck profilering.

För demonstration av detta protokoll, var dopaminerga neuroner från en-dag-gamla mus mitthjärnan riktade. Dopaminerga neuroner kan immunolabeled användning av en antikropp riktad mot tyrosinhydroxylas (TH), det hastighetsbegränsande enzymet för dopaminsyntes. Efter TH immunfärgning, enskilda eller grupper av dopaminerga nervceller kan sedan isoleras med hjälp av LCM. Microdissected Cellerna uppsamlas i lysbuffert, och RNA extraheras med användning av ett RNA-isoleringskit. Kvalitet och kvantitet av extraherat RNA mäts med hjälp av en bioanalyzer 5. Ytterligare analys av genuttryck använder: RNA-sekvensering, microarray, eller QRT-PCR kan därefter utföras 2,4,6. Som ett exempel, är en två-stegs QRT-PCR demonstrerade på laser fångade isolerade dopaminerga domäner. Relativ kvantifiering av expressionsnivåer av två dopaminerga neuron markörgener illustrerar selektivitet detta protokoll.

Protocol

OBS: Experimenten utfördes i enlighet med den kanadensiska Guide för skötsel och användning av försöksdjur och godkändes av Université Laval djurskyddskommitté. 1. Provframställning OBS: I det här exemplet har vi använt mushjärnor på postnatal dag 1. Använd hypotermi anestesi i krossad is i 3 till 4 min för valpar, sedan dissekera hjärnor så fort som möjligt i iskallt L15 medium. Utför detta steg inom 2 min. Överför diss…

Representative Results

Detta snabbförfarande immunomärkning möjliggör visualisering av celler av intresse och samtidigt hålla RNA integritet. Figur 1 visar stegen förberedelser vävnad innan RNA-extraktion. Efter cryosectioning är dopaminerga neuroner märkta med användning av en antikropp riktad mot tyrosinhydroxylas (märkta neuroner visas i brunt). Beroende av den experimentella frågan, kan enstaka celler eller större område av intresse isoleras med hjälp av LCM (Figur 1D – E)….

Discussion

Den mest kritiska punkten av denna metod består i att märka celler av intresse samtidigt förhindra RNA nedbrytning. Som RNAs är aktiva i vattenlösningar, minskar inkubationstider förbättrar RNA bevarande 11,15. Alla lösningar som används måste behandlas med DEPC att inaktivera RNAs. Alla material och ytor måste behandlas med en yta RNAs dekontamineringslösning att förhindra RNAs kontamination. Slutligen, under dessa förhållanden, är tillsatsen av RNAs-inhibitor i alla lösningar effektiva i at…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work is supported by a grant from the Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC: 418391-2012). AC receives a scholarship from the Centre thématique de recherche en Neurosciences (CTRN). HDB is funded by a scholarship from the Fonds de Recherche en Santé du Québec (FRSQ) and ML is a FRSQ Chercheur-Boursier.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Membrane coated slides  Leica Biosystems 11505158 MembraneSlides PEN-Membrane 2,0 µm; 50 pcs
Surface RNAse decontamination solution Life technologies AM9780 RNaseZap
Fixative 70% Ethanol kept at -20 °C
Anti-TH  Pel-Freez P40101  1:25
RNAse free buffer DEPC PBS + 1% BSA+0.02% triton
RNAse inhibitor Promega N2615 Rnasine Plus Rnase Inhibitor 40 kU/ml (stock)
Anti-rabbit biotinylated Vector Laboratories BA-1000
Vectastain Elite ABC kit Standard Vector Laboratories PK-6100 8µl/ml
DAB Peroxidase Substrate Kit  Vector Laboratories SK-4100
RNA isolation kit Life technologies KIT0204 Arcturus PicoPure RNA Isolation Kit
H2O2 30% Sigma HC4060
Ethanol absolute
Laser microdissection system Leica microsystems Model AS-LMD
DEPC Alfa Aesar B22753-14
Bioanalyzer Agilent Agilent 2100 Bioanalyzer
Embedding mold  Leica Biosystems 14702218311 6x8mm
Hydrophobic barrier pen  Vector Laboratories H-4000
Frozen tissue embedding media Tissue-Tek 4583
Bioanalyzer chip Aligent Technologies 5067-1513 RNA 6000 Pico LabChip used with Agilent 2100 Bioanalyzer
Hot start reaction mix for quantitative PCR Roche 6402712001 Fast Start Essential DNA Green Master
Reverse transcriptase Life technologies 11752-050 SuperScript III First-Strand Synthesis SuperMix for qRT-PCR

References

  1. Chung, C. Y., et al. The transcription factor orthodenticle homeobox 2 influences axonal projections and vulnerability of midbrain dopaminergic neurons. Brain : a journal of neurology. 133 (Pt 7), 2022-2031 (2010).
  2. Cheng, L., et al. Laser-assisted microdissection in translational research: theory, technical considerations, and future applications. Applied immunohistochemistry & molecular morphology : AIMM / official publication of the Society for Applied Immunohistochemistry. 21 (1), 31-47 (2013).
  3. Decarlo, K., Emley, A., Dadzie, O. E., Mahalingam, M. Laser capture microdissection: methods and applications. Methods in molecular biology. 755, 1-15 (2011).
  4. Espina, V., Heiby, M., Pierobon, M., Liotta, L. A. Laser capture microdissection technology. Expert review of molecular diagnostics. 7 (5), 647-657 (2007).
  5. Fend, F., Raffeld, M. Laser capture microdissection in pathology. Journal of clinical pathology. 53 (9), 666-672 (2000).
  6. Chadi, G., Maximino, J. R., de Oliveira, G. P. The importance of molecular histology to study glial influence on neurodegenerative disorders. Focus on recent developed single cell laser microdissection. Journal of molecular histology. 40 (4), 241-250 (2009).
  7. Liu, A. Laser capture microdissection in the tissue biorepository. Journal of biomolecular techniques : JBT. 21 (3), 120-125 (2010).
  8. Baskin, D. G., Bastian, L. S. Immuno-laser capture microdissection of rat brain neurons for real time quantitative PCR. Methods in molecular biology. 588, 219-230 (2010).
  9. Brown, A. L., Smith, D. W. Improved RNA preservation for immunolabeling and laser microdissection. RNA. 15 (12), 2364-2374 (2009).
  10. Brown, A. L., Brown, A. L., Day, T. A., Dayas, C. V., Smith, D. W. Purity and enrichment of laser-microdissected midbrain dopamine neurons. BioMed research international. 2013, 747938 (2013).
  11. Murakami, H., Liotta, L., Star, R. A. IF-LCM: laser capture microdissection of immunofluorescently defined cells for mRNA analysis rapid communication. Kidney international. 58 (3), 1346-1353 (2000).
  12. Greene, J. G., Dingledine, R., Greenamyre, J. T. Gene expression profiling of rat midbrain dopamine neurons: implications for selective vulnerability in parkinsonism. Neurobiology of disease. 18 (1), 19-31 (2005).
  13. Chung, C. Y., Koprich, J. B., Endo, S., Isacson, O. An Endogenous Serine/Threonine Protein Phosphatase Inhibitor, G-Substrate, Reduces Vulnerability in Models of Parkinson’s Disease. Journal of Neuroscience. 27 (31), 8314-8323 (2007).
  14. Pfaffl, M. Chapter 3, Quantification strategies in real-time. AZ of quantitative PCR. , (2004).
  15. Smolinski, D., Blessenohl, M., Neubauer, C., Kalies, K., Gebert, A. Validation of a novel ultra-short immunolabeling method for high-quality mRNA preservation in laser microdissection and real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction). The Journal of MolecularDiagnostics. 8 (2), 246-253 (2006).
  16. Podgornyĭ, O. V., Lazarev, V. N., Govorun, V. M. Laser microdissection for biology and medicine. Tsitologiia. 54 (5), 381-389 (2012).
  17. Vandewoestyne, M., ewoestyne & Deforce, D. Laser capture microdissection in forensic research: a review. International journal of legal medicine. 124 (6), 513-521 (2010).
  18. Shapiro, J. P., et al. A quantitative proteomic workflow for characterization of frozen clinical biopsies: laser capture microdissection coupled with label-free mass spectrometry. Journal of. 77, 433-4340 (2012).
  19. Domazet, B., Maclennan, G. T., Lopez-Beltran, A., Montironi, R., Cheng, L. Laser capture microdissection in the genomic and proteomic era: targeting the genetic basis of cancer. International journal of clinical and experimental pathology. 1 (6), 475-488 (2008).
check_url/52510?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chabrat, A., Doucet-Beaupré, H., Lévesque, M. RNA Isolation from Cell Specific Subpopulations Using Laser-capture Microdissection Combined with Rapid Immunolabeling. J. Vis. Exp. (98), e52510, doi:10.3791/52510 (2015).

View Video