Summary

Hücre belirli alt gruplar RNA izolasyonu Hızlı immünoyaftalama ile birlikte Lazer yakalama mikrodiseksiyon kullanma

Published: April 11, 2015
doi:

Summary

Belirli bir doku hücrelerinin bir alt kümesi gen ifade analizi büyük bir sorun teşkil etmektedir. Bu makalede, lazer yakalama mikrodiseksiyon ile hızlı bir immün yöntemi birleştirerek belirli bir hücre popülasyonu yüksek kaliteli toplam RNA izole açıklamaktadır.

Abstract

Lazer yakalama mikrodiseksiyon (LCM) yüksek uzaysal çözünürlüğü ile ince doku bölümleri belirli hücrelerin izolasyonu sağlar. Etkili LCM heterojen doku hücreleri alt popülasyonlar hassas tanımlanmasını gerektirir. LCM ilgi hücrelerin tanımlanması, genellikle morfolojik kriterlere veya flöresanlı proteinin, muhabir dayanmaktadır. LCM ve hızlı immunolabeling kombinasyonu alternatif ve etkili bir araç özel hücre tiplerini görselleştirmek ve çevresindeki doku onları izole etmek için sunuyor. Kaliteli RNA daha sonra saf hücre popülasyonu elde edilmesi ve daha RNA dizileme, mikrotertibin veya Mah-PCR olmak üzere mansap uygulamalar için işlenmiş olabilir. Bu yaklaşım, daha önce gerçekleştirilen ve kısa bir süre az yayınlarda tarif edilmiştir. Bu makalenin amacı nasıl LCM kullanarak bu özel hücrelerin izole RNA bütünlüğünü tutarak, ve sırasında hücre popülasyonu hızla immün gerçekleştirmek için nasıl göstermek için. Burada, biz göstermekd immün ve bir günlük farelerden elde edilen beyin dokusu dopaminerjik hücrelerin yakalamak için bu çok aşamalı bir prosedür. Biz özel dikkat hak anahtar kritik adımlar vurgulayın. Bu protokol, doku ve ilgi çeşitli hücreler için adapte edilebilir. Farklı alanlardan gelen araştırmacılar büyük olasılıkla bu yaklaşımın gösterilmesi yararlanacaktır.

Introduction

Beyin, karmaşık ağlar oluşturan farklı nöron tiplerinin çok çeşitli oluşmaktadır. Bu nöronlar kendi morfolojisi, bağlantı ve gen ifadesi desen 1'e göre farklı gruplar ve alt organize edilmektedir. mikrodizileri gelişimi, yeni nesil dizileme ve Mah-PCR, farklı biyolojik bağlamlarda 1,2 nöronal nüfus gen ekspresyon profillerini karşılaştırma olanağı sundu. Bu hassas analizler RNA bütünlüğü 2-4 tutarken ilgi hücre tiplerinin kesin belirlenmesi ve izolasyon gerektirir. Floresan etkinleştirilmiş hücre tasnif (FACS) tekniği çok hücre yüzeyi işaretleri ve / veya morfolojiye göre özel hücre tiplerini izole etmek için kullanılmıştır. FACS uzamsal çözünürlük 5 tam bir kayıp ile sonuçlanır önce sıralama, bir hücre ayırma aşamasını gerektirir. Bir çok alt-popülasyonları bulunduğunu nöronal th anatomik dağılıma göre birbirlerinden ayırt edilirlerE beyin. İnce beyin bölümlerinde uygulanan lazer yakalama mikrodiseksiyon yüksek uzaysal çözünürlüğü 6-8 ile hücrelerin spesifik izolasyonu için uygun bir seçenek sunar. LCM önemli bir sınırlama, morfolojik kriterlere ya da genetik olarak hayvan modellerinde tasarlanmış floresan protein muhabir göre ilgi hücreleri belirlemek için bir ihtiyaç olmuştur. LCM ile kombinasyon halinde, bir RNA bütünlüğü korunur pratik immün yöntemleri gerçekleştirmek için yeni tekniklerin geliştirilmesi, hemen gen profil deney devam etmek için hücre alt izolasyonunu sağlar.

Bu yaklaşım, daha önce gerçekleştirilen ve kısa bir süre az sayıda yayın 1,9-13 tarif edilmiştir. Burada, biz LCM ile hızlı immün birleştirerek karmaşık bir doku yapısında belirli bir hücre alt kümesi yüksek kaliteli RNA elde etmek için detaylı bir prosedür ortaya koymaktadır. Biz maksimum RNA kurtarma elde etmek için anahtar kritik adımları uygulayın ve sig olabilir RNA bozulmasını önlemek için nasıl göstermekanlamlı ölçüde etki gen ekspresyon profili.

Bu protokolün gösteri için, bir günlük fare orta beyin dopaminerjik nöronlar hedef alındı. Dopaminerjik nöronlar, tirosin hidroksilaz (TH) karşı yönlendirilmiş bir antikor, dopamin sentezi için oran-sınırlayıcı enzim kullanılarak imüno edilebilir. TH immun boyama sonra, tek tek ya da dopaminerjik nöronların grupları daha sonra LCM kullanılarak izole edilebilir. Microdissected hücreler lizis tamponu içinde toplanır ve RNA, RNA izolasyon kiti kullanılarak ekstre edilir. Kalite ve çıkarılan RNA miktarı Bioanalyzer 5 kullanılarak ölçülmektedir. Kullanılarak gen tanımının diğer analizleri: RNA sıralanması, mikrodizi veya qRT-PCR, daha sonra 2,4,6 gerçekleştirilebilir. Bir örnek olarak, bir iki-aşamalı QRT-PCR lazer yakalanan izole dopaminerjik etki ile gösterilmiştir. Iki dopaminerjik nöron marker genlerinin ekspresyon seviyeleri rölatif ölçümü, bu protokol seçicilik göstermektedir.

Protocol

NOT: Deneyler Laboratuar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kanada Kılavuzu'na uygun olarak yapıldı ve Université Laval Hayvanları Koruma Komitesi tarafından kabul edildi. 1. Numune Hazırlama NOT: Bu örnekte, doğum sonrası 1. günde, fare beyni kullanılır. 3 yavrular için en az 4 için ezilmiş buz hipotermi anestezi kullanın, sonra buz gibi soğuk L15 ortamında mümkün olduğunca çabuk beyinleri teşrih. 2 dakika içinde bu a…

Representative Results

Bu hızlı immün prosedürü RNA bütünlüğünü koruyarak ilgi hücrelerin görselleştirme sağlar. 1 RNA ekstraksiyon öncesi doku hazırlık aşamaları göstermektedir Şekil. Cryosectioning sonra, dopaminerjik nöronların tirosin hidroksilaz karşı yönelik bir antikor (işaretlenmiş nöronlar kahverengi görünür) ile etiketlenmiştir. Deney Söz bağlı olarak, tek bir hücre ya da ilgi daha büyük bölge LCM kullanılarak izole edilebilir (Şekil 1D – <…

Discussion

Bu yöntemin en kritik nokta RNA bozulmasını önlerken ilgi hücreleri etiketleme oluşur. RNases sulu çözeltilerde aktif olarak kuluçka süreleri azalan RNA koruma 11,15 geliştirir. Kullanılan tüm çözümler RNases inaktive DEPC ile tedavi edilmelidir. Tüm malzemeler ve yüzeyler RNaz'larına kirlenmeyi önlemek için bir yüzey RNaz dekontaminasyon solüsyonu ile muamele edilmesi gerekir. Son olarak, bu koşullar altında, her Çözeltilerin RNaz inhibitörü ilave bozunmadan RNA koruma etkili…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

This work is supported by a grant from the Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC: 418391-2012). AC receives a scholarship from the Centre thématique de recherche en Neurosciences (CTRN). HDB is funded by a scholarship from the Fonds de Recherche en Santé du Québec (FRSQ) and ML is a FRSQ Chercheur-Boursier.

Materials

Name of Material/ Equipment Company Catalog Number Comments/Description
Membrane coated slides  Leica Biosystems 11505158 MembraneSlides PEN-Membrane 2,0 µm; 50 pcs
Surface RNAse decontamination solution Life technologies AM9780 RNaseZap
Fixative 70% Ethanol kept at -20 °C
Anti-TH  Pel-Freez P40101  1:25
RNAse free buffer DEPC PBS + 1% BSA+0.02% triton
RNAse inhibitor Promega N2615 Rnasine Plus Rnase Inhibitor 40 kU/ml (stock)
Anti-rabbit biotinylated Vector Laboratories BA-1000
Vectastain Elite ABC kit Standard Vector Laboratories PK-6100 8µl/ml
DAB Peroxidase Substrate Kit  Vector Laboratories SK-4100
RNA isolation kit Life technologies KIT0204 Arcturus PicoPure RNA Isolation Kit
H2O2 30% Sigma HC4060
Ethanol absolute
Laser microdissection system Leica microsystems Model AS-LMD
DEPC Alfa Aesar B22753-14
Bioanalyzer Agilent Agilent 2100 Bioanalyzer
Embedding mold  Leica Biosystems 14702218311 6x8mm
Hydrophobic barrier pen  Vector Laboratories H-4000
Frozen tissue embedding media Tissue-Tek 4583
Bioanalyzer chip Aligent Technologies 5067-1513 RNA 6000 Pico LabChip used with Agilent 2100 Bioanalyzer
Hot start reaction mix for quantitative PCR Roche 6402712001 Fast Start Essential DNA Green Master
Reverse transcriptase Life technologies 11752-050 SuperScript III First-Strand Synthesis SuperMix for qRT-PCR

References

  1. Chung, C. Y., et al. The transcription factor orthodenticle homeobox 2 influences axonal projections and vulnerability of midbrain dopaminergic neurons. Brain : a journal of neurology. 133 (Pt 7), 2022-2031 (2010).
  2. Cheng, L., et al. Laser-assisted microdissection in translational research: theory, technical considerations, and future applications. Applied immunohistochemistry & molecular morphology : AIMM / official publication of the Society for Applied Immunohistochemistry. 21 (1), 31-47 (2013).
  3. Decarlo, K., Emley, A., Dadzie, O. E., Mahalingam, M. Laser capture microdissection: methods and applications. Methods in molecular biology. 755, 1-15 (2011).
  4. Espina, V., Heiby, M., Pierobon, M., Liotta, L. A. Laser capture microdissection technology. Expert review of molecular diagnostics. 7 (5), 647-657 (2007).
  5. Fend, F., Raffeld, M. Laser capture microdissection in pathology. Journal of clinical pathology. 53 (9), 666-672 (2000).
  6. Chadi, G., Maximino, J. R., de Oliveira, G. P. The importance of molecular histology to study glial influence on neurodegenerative disorders. Focus on recent developed single cell laser microdissection. Journal of molecular histology. 40 (4), 241-250 (2009).
  7. Liu, A. Laser capture microdissection in the tissue biorepository. Journal of biomolecular techniques : JBT. 21 (3), 120-125 (2010).
  8. Baskin, D. G., Bastian, L. S. Immuno-laser capture microdissection of rat brain neurons for real time quantitative PCR. Methods in molecular biology. 588, 219-230 (2010).
  9. Brown, A. L., Smith, D. W. Improved RNA preservation for immunolabeling and laser microdissection. RNA. 15 (12), 2364-2374 (2009).
  10. Brown, A. L., Brown, A. L., Day, T. A., Dayas, C. V., Smith, D. W. Purity and enrichment of laser-microdissected midbrain dopamine neurons. BioMed research international. 2013, 747938 (2013).
  11. Murakami, H., Liotta, L., Star, R. A. IF-LCM: laser capture microdissection of immunofluorescently defined cells for mRNA analysis rapid communication. Kidney international. 58 (3), 1346-1353 (2000).
  12. Greene, J. G., Dingledine, R., Greenamyre, J. T. Gene expression profiling of rat midbrain dopamine neurons: implications for selective vulnerability in parkinsonism. Neurobiology of disease. 18 (1), 19-31 (2005).
  13. Chung, C. Y., Koprich, J. B., Endo, S., Isacson, O. An Endogenous Serine/Threonine Protein Phosphatase Inhibitor, G-Substrate, Reduces Vulnerability in Models of Parkinson’s Disease. Journal of Neuroscience. 27 (31), 8314-8323 (2007).
  14. Pfaffl, M. Chapter 3, Quantification strategies in real-time. AZ of quantitative PCR. , (2004).
  15. Smolinski, D., Blessenohl, M., Neubauer, C., Kalies, K., Gebert, A. Validation of a novel ultra-short immunolabeling method for high-quality mRNA preservation in laser microdissection and real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction). The Journal of MolecularDiagnostics. 8 (2), 246-253 (2006).
  16. Podgornyĭ, O. V., Lazarev, V. N., Govorun, V. M. Laser microdissection for biology and medicine. Tsitologiia. 54 (5), 381-389 (2012).
  17. Vandewoestyne, M., ewoestyne & Deforce, D. Laser capture microdissection in forensic research: a review. International journal of legal medicine. 124 (6), 513-521 (2010).
  18. Shapiro, J. P., et al. A quantitative proteomic workflow for characterization of frozen clinical biopsies: laser capture microdissection coupled with label-free mass spectrometry. Journal of. 77, 433-4340 (2012).
  19. Domazet, B., Maclennan, G. T., Lopez-Beltran, A., Montironi, R., Cheng, L. Laser capture microdissection in the genomic and proteomic era: targeting the genetic basis of cancer. International journal of clinical and experimental pathology. 1 (6), 475-488 (2008).
check_url/52510?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Chabrat, A., Doucet-Beaupré, H., Lévesque, M. RNA Isolation from Cell Specific Subpopulations Using Laser-capture Microdissection Combined with Rapid Immunolabeling. J. Vis. Exp. (98), e52510, doi:10.3791/52510 (2015).

View Video