Summary

Threespineトゲウオにおける遺伝子導入およびゲノム編集のためのマイクロインジェクション

Published: May 13, 2016
doi:

Summary

トランスジェニック操作およびゲノムの編集は、機能的遺伝子とシス -regulatory要素の役割をテストするために重要です。ここでは、ゲノム(Tol2の媒介蛍光レポーター導入遺伝子構築物を含む、TALENs、およびCRISPRs)の変更を生成するための詳細なマイクロインジェクションプロトコルが緊急モデルの魚のために提示され、イトヨ。

Abstract

イトヨの魚は、形態的、生理的、および行動の表現型の多様な遺伝的基礎を研究するための強力なシステムとして登場しました。海洋集団は、海洋と淡水のフォームを横断遺伝学は進化の特性を制御するゲノム領域をマッピングするために使用することができる希少な脊椎動物のシステムを提供する能力と組み合わせて無数の淡水環境に適応するように進化してき著しく多様な表現型。優秀なゲノムリソースが進化し変化の分子遺伝学的解剖を容易に利用できるようになりました。マッピング実験は興味深い候補遺伝子のリストを生成しながら、機能的な遺伝子操作は、これらの遺伝子の役割を試験するために必要とされます。遺伝子調節はTol2のトランスポザーゼシステムを用いて、ゲノムに組み込まれたトランスジェニックレポータープラスミドおよびBACを用いて研究することができます。特定の候補遺伝子およびシス -regulatory要素の機能は、標的誘導することによって評価することができますTALENおよびCRISPR / Cas9ゲノム編集試薬と突然変異。すべての方法は、受精1細胞トゲウオ胚に核酸を導入する必要が、タスクはトゲウオ胚と比較的小さく、薄い割球の厚い絨毛膜によって挑戦しました。ここでは、トゲウオ胚への核酸のマイクロインジェクションのための詳細なプロトコルは、トランスジェニックゲノム編集の遺伝子発現と機能を研究するためのアプリケーション、ならびに形質転換の成功を評価し、安定した株を回収する技術について記載されています。

Introduction

生物多様性が生じたどのように理解する1つの基本的な構成要素は、自然の中で進化した表現型変化の遺伝と発達拠点を決定することです。イトヨの魚、Gasterosteusアクレータスは 、進化の遺伝的基礎を研究するための優れたモデルとして登場しました。トゲウオは、海水魚は北半球の周りに無数の淡水環境を植民地化してきたように劇的な形態的、生理的で、その結果、多くの適応進化的変化を遂げ、としている行動の変化1。 20個の-1つのトゲウオ集団からの個人のゲノムを配列決定し、組み立て、及び高密度連鎖地図は、さらに、アセンブリ2,3を改善するために生成されているされています。遺伝的マッピング実験は、進化した表現型を4基礎となるゲノム領域を同定した 6を 、そしていくつかのケースでは、特定の候補遺伝子の機能的役割は、7,8をテストされています。形態学的変化の根底にあるゲノム領域の数は、有望な候補遺伝子と同定されているが、これらの候補者はまだ機能的に9試験されていない 12。また、トゲウオは集団遺伝学/ゲノミクス13,14、分化15、動作1、内分泌学16、生態毒性17、免疫学18および寄生虫19の研究のための一般的なモデルです。これらの各フィールドにおける今後の研究では、トゲウオで機能的な遺伝子操作を実行する能力の恩恵を受ける。そのコード配列を操作することに加えて、候補遺伝子の役割は、それらのシス -regulatory配列を研究することによって、および機能的に、増加減少、または候補遺伝子の発現を排除することによって評価することができます。トゲウオにおけるマイクロインジェクションおよび遺伝子導入方法がよく7,8,20を確立されており、最初に使用して開発されたメガヌクレアーゼ媒介方法21は、第1メダカ22に記載します。ここで紹介する修正されたマイクロインジェクション法はTol2の媒介遺伝子導入およびTALENsとCRISPRs含む最近開発されたゲノム編集試薬の両方に最適化されています。

シス -regulatory変化が変異23を符号化の負の多面的な結果を回避することができるようにシス -regulatory要素への変更は、形態学的進化に重要であると考えられています。そのため、テストと推定されるシス -regulatory配列を比較することは、進化の研究の増加の中心的な目標となっています。加えて、ほとんどのヒト疾患のバリアントは、調節変異体24,25であり、モデル脊椎動物系が痛ん-regulatory要素の機能及びロジックシス研究するために必要とされます。大量に外部に彼らの胚を受精魚はシス -regulationを研究するための強力な脊椎動物システムを提供しています。 Tol2のトランスポゾンシステム、内forei28 ゲノムに組み込まれるべきGN DNAはTol2のトランスポザーゼ結合部位とTol2のトランスポザーゼmRNAと同時注入により隣接され、成功した魚のゲノム26にプラスミド構築物を統合するための高効率で動作します。典型的には、潜在的なエンハンサーはTol2の骨格中に(例えば、29 hsp70lなど)基本プロモーターならびにEGFP(強化緑色蛍光タンパク質)またはmCherryを、蛍光レポーター遺伝子の上流にクローニングし、トランスポザーゼmRNAの26に注入されます。蛍光レポーターの、いずれかの注入した胚または安定に組み込まれた導入遺伝子を持つ子孫における発現の観察は、推定されるエンハンサーにより駆動される遺伝子発現の時空間制御に関する情報を提供します。さらなる実験では、検証エンハンサーは、目的の遺伝子の組織特異的過剰発現を駆動するために使用することができます。

より大きなシス -regulatory地域、高品質の大インサートGENOMの分析のために細菌人工染色体(BACの)を使用してICのライブラリは、両方の海洋および淡水トゲウオ30のために構築されてきました。これらのBACは、大規模(150〜200キロバイト)のゲノム領域31の文脈における蛍光レポーター遺伝子と遺伝子を交換するrecombineeredすることができます。 BAC内の調節配列によって決定される蛍光レポーターは、次いで、時空間パターンで発現されます。魚類での研究のために、Tol2の部位は、ゲノム組込み32,33を容易にするためにBACに添加することができます。 in situハイブリダイゼーション技術的に困難である場合トゲウオの骨形成タンパク質6(BMP6)20のために示されているように、開発の後期段階では、BACの蛍光読み出しは、遺伝子発現のパターンを研究するために使用することができます。また、個々の蛍光の発現パターンは、in situハイブリダイゼーションを用いて達成することができない、時間をかけて追跡することができます。 BACがまたadditionaを追加するために使用することができますゲノム領域のL個のコピーは、目的の遺伝子の投与量を増加させます。

遺伝子機能の研究のために、ゲノム編集生物34の多種多様なゲノム配列を標的とする変化を生成するために使用することができる爆発拡張フィールドです。転写活性化因子のようなエフェクターヌクレアーゼ(TALENs)もともと正確な選択のゲノム配列に直接結合し、二本鎖切断35,36を生成するように操作することができる植物病原体から単離されたモジュラー、配列特異的ヌクレアーゼです。クラスタ化された定期的interspaced短いパリンドローム反復(CRISPR)/ CASシステムは、もともと細菌で発見され、ガイド37と相補的な標的DNA配列の中断を生成するために、ガイドRNAとCas9タンパク質を使用しました。標的配列の機能を破壊することができ、多くの場合、小さな挿入または欠失を残すTALENsとCRISPRsの両方で作成された二本鎖切断のその後の修理、35-37。トゲウオにおいて、TALENsエンハンサー20を標的とすることによって、遺伝子発現を破壊するために使用されており、TALENsとCRISPRs両方が正常配列(未発表データ)を符号化における変異を作製しています。ゼブラフィッシュにおける使用のためのCRISPRsの生成のための詳細なプロトコールは、トゲウオ38 CRISPRsを開発するためのガイドラインとして使用することができます。

トランスジェニックゲノム編集の実験は、新たに受精した単細胞胚への核酸の導入を必要とします。開発の初期段階における導入遺伝子またはゲノム編集ツールを導入することにより、胚における遺伝子操作された娘細胞の数が最大化されます。注入した胚を視覚的蛍光についてスクリーニングまたは分子ゲノム修飾についてスクリーニングされます。生殖系列に寄与する細胞が正常に標的化される場合、導入遺伝子または変異は、ポスト噴射致死性が高い場合であっても、子孫のサブセットへ渡すことができます。モザイク魚は外部交配することができますかインタークロスとその子孫は、突然変異対立遺伝子または関心の安定に組み込まれた導入遺伝子を回復するためにスクリーニングしました。このプロトコルは、1セルトゲウオ胚に導入遺伝子およびゲノム編集の試薬を導入し、成功したゲノム修飾をモニタリングするための方法を説明します。

Protocol

すべての魚の作業は、カリフォルニア大学バークレー校の施設内動物管理使用委員会(プロトコル番号R330)によって承認されました。 1.注射用核酸を準備します (フィッシャー26から適応)Tol2のプラスミド遺伝子導入。 線形化するために37℃で1時間、供給されたバッファに10μgのトランスポザーゼプラスミド(PCS-TP)10 U NotIで39をカットします。 …

Representative Results

エンハンサー活性を有するレポーター遺伝子導入遺伝子は、成功した注射は、導入遺伝子の特異的な細胞性発現( 図4A、4C)をもたらすであろう。注入された魚は、安定した線( 図4Bに示されるBAC安定線の一例)を生成するために外部交配することができます。トゲウオ胚にDNAを注入することは、典型的に単独のRNAよりもはるか?…

Discussion

遺伝子導入またはゲノム編集のための注入1細胞トゲウオ胚は、3つの主要な課題を提示します。まず、ゼブラフィッシュの胚に比べて、トゲウオ胚絨毛膜はタフであり、しばしば針を中断します。この問題を部分的に厚くて強いガラスマイクロピペットを使用して漿膜に垂直注入することによって克服することができる(プロトコール、 図2を参照)。できるだけ少量の水が(絨?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

この作品は、NIH R01#DE021475(CTM)、NIH博士号を取得する前のトレーニンググラント5T32GM007127(PAE)、およびNSF大学院研究フェローシップ(NAE)によって部分的に資金を供給されました。私たちは、注入プロトコル上で役に立つフィードバックのためにCRISPRサンガー配列決定データを生成するためのBACのリコンビや注射、ニックDondeを実行するためのケビン・シュヴァルバッハ、とキャサリンリーパリに感謝します。

Materials

Stereomicroscope with transillumination Leica S6e/ KL300 LED
Manual micromanipulator Applied Scientific Instrumentation MM33 Marzhauser M33 Micromanipulator
Pressure Injecion system Applied Scientific Instrumentation MPPI-3
Back pressure unit Applied Scientific Instrumentation BPU
Micropipette holder kit Applied Scientific Instrumentation MPIP
Magnetic base holder Applied Scientific Instrumentation Magnetic base
Foot switch Applied Scientific Instrumentation FSW
Iron plate (magnetic base) Narishige IP
Flaming/Brown Micropipette Puller Sutter Instrument P-97
Disposable transfer pipettes Fisher 13-711-7M
0.5% phenol red in DPBS Sigma  P0290 injection tracer
#5 forceps, biologie dumoxel  Fine Science Tools 11252-30 for needle breaking
Micropipette Storage Jar World Precision Instruments E210 holds needles
6", 6 teeth per inch plaster drywall saw Lenox 20571 (S636RP) hold eggs for injection
13 cm x 13 cm glass plate any hardware store
Borosilicate glass capillaries, 1.0 mm OD/0.58 mm ID  World Precision Instruments 1B100-F4 *harder glass than zebrafish injection capillaries
150 x 15mm petri dish Fisher FB0875714 raise stickleback embryos
35 x 10mm petri dish Fisher 08-757-100A store eggs pre-injection
Instant Ocean Salt Instant Ocean SS15-10
Sodium Bicarbonate Sigma S5761-500G
Tricaine methanesulfonate/MS-222 Western Chemical Inc MS222 fish anaesthesia/euthanasia
Sp6 transcription kit Ambion AM1340 For transcription of TALENs and transposase mRNA
RNeasy cleanup kit Qiagen 74104 purify transposase or TALEN RNA
QiaQuick PCR cleanup kit Qiagen 28104 clean up plasmids for injection
Proteinase K 20 mg/ml Ambion AM2546 for DNA preparation
Nucleobond BAC 100 kit Clontech 740579 for BAC DNA preparation
NotI NEB R0189L
Phusion polymerase Fisher F-530L
Qiagen PlasmidPlus Midi kit Qiagen 12943 contains endotoxin rinse buffer
QIAQuick Gel Extraction Qiagen 28704  for sequencing induced mutations
Phenol:chloroform:Isoamyl alcohol Sigma P2069-100ML
Sodium acetate Sigma S2889-250G
Ethanol (molecular biology grade) Sigma E7023-500ML
Agarose Sigma A9539
50X Tris-acetate-EDTA buffer ThermoFisher B49
0.5-10KbRNA ladder ThermoFisher 15623-200
Nanodrop  Spectrophotometer Thermo Scientific Nanodrop 2000
Paraformaldehyde Sigma 158127-500G
10X PBS ThermoFisher 70011-044
1kb Plus DNA Ladder ThermoFisher 10787-018
Potassium Chloride Sigma P9541-500G
Magnesium Chloride Sigma M8266-100G
NP-40 ThermoFisher 28324
Tween 20 Sigma P1379-500ML
Tris pH 8.3 Teknova T1083
12-strip PCR tube Thermo Scientific AB-1113

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Cite This Article
Erickson, P. A., Ellis, N. A., Miller, C. T. Microinjection for Transgenesis and Genome Editing in Threespine Sticklebacks. J. Vis. Exp. (111), e54055, doi:10.3791/54055 (2016).

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