Summary

Tovejs Retroviral Integration Site PCR Metode og Quantitative Data Analysis Workflow

Published: June 14, 2017
doi:

Summary

Dette manuskript beskriver den eksperimentelle procedure og softwareanalyse for et tovejs integrationssite-assay, der samtidigt kan analysere opstrøms og nedstrøms vektor-værtsforbindelses-DNA. Tovejsede PCR-produkter kan anvendes til enhver downstream-sekventeringsplatform. De resulterende data er nyttige til en høj-gennemløbs kvantitativ sammenligning af integrerede DNA-mål.

Abstract

Integration Site (IS) analyser er en kritisk komponent i studiet af retrovirale integrationssteder og deres biologiske betydning. I nyere retrovirale genterapiundersøgelser er IS-analyser i kombination med næste generations sekventering blevet anvendt som et celleopsparingsværktøj til karakterisering af klonale stamcellepopulationer, der deler samme IS. For den nøjagtige sammenligning af repopulerende stamcellekloner inden for og på tværs af forskellige prøver er detektionens følsomhed, data reproducerbarhed og høj gennemløbskapacitet af analysen blandt de vigtigste analysekvaliteter. Dette arbejde giver en detaljeret protokol- og dataanalyseproces for tovejs-IS-analyse. Det tovejsede assay kan samtidigt sekvensere både opstrøms og nedstrøms vektor-værtsforbindelser. Sammenlignet med konventionelle ensrettede IS-sekventeringsmetoder forbedrer den tovejstilgang signifikant IS-detektionshastigheder og karakteriseringen af ​​integrationshændelser i begge ender af tHan målretter DNA. Dataanalysepipelinjen beskrevet her identificerer og opregner identiske og identiske identiske sekvenser gennem flere trin af sammenligning, som kort IS sekvenser på referencegenomet og bestemmer sekventeringsfejl. Ved hjælp af en optimeret analyseprocedure har vi for nylig offentliggjort de detaljerede repopulation mønstre af tusinder af hæmatopoietiske stamceller (HSC) kloner efter transplantation i rhesus macaques, der for første gang demonstrerer det præcise tidspunkt for HSC-repopulation og den funktionelle heterogenitet af HSC'er i Primatsystem. Den følgende protokol beskriver trin for trin eksperimentel procedure og dataanalyse-arbejdsgang, der identificerer og kvantificerer identiske IS-sekvenser nøjagtigt.

Introduction

Retrovirus indsætter deres genomiske DNA i værtsgenomet på forskellige steder. Denne unikke egenskab, som kan bidrage til udviklingen af ​​kræftformer og andre former for viral patogenese, har den ironiske fordel at gøre disse vira yderst velegnede til celleteknik til genterapi og grundbiologiforskning. Viral Integration Site (IS) – placeringen på værtsgenomet hvor et fremmed DNA (virus) er integreret – har vigtige implikationer for skæbnen for både de integrerede vira og værtscellerne. IS-analyser er blevet anvendt i forskellige biologiske og kliniske forskningsinstitutioner for at studere retroviral integrationssiteudvælgelse og patogenese, kræftudvikling, stamcellebiologi og udviklingsbiologi 1 , 2 , 3 , 4 . Lav detektionsfølsomhed, dårlig data reproducerbarhed og hyppig krydskontaminering er blandtNøglefaktorerne begrænser anvendelsen af ​​IS-analyser til aktuelle og planlagte undersøgelser.

Mange IS-analyseteknologier er blevet udviklet. Restriktionsenzymbaserede integrationssite-assays, herunder linker-medieret (LM) polymerase-kædereaktion (PCR) 5 , inverse PCR 6 og lineærforstærkningsmedieret (LAM) PCR 7 er de mest anvendte. Anvendelsen af ​​stedsspecifikke restriktionsenzymer genererer imidlertid en bias under hentningen af ​​IS, hvilket tillader kun en delmængde af integromer (et fremmed DNA integreret i værtsgenomet) i nærheden af ​​restriktionsstedet, der skal genvindes 4 . Analyseteknologier, der mere omfattende vurderer vektor IS, er også blevet introduceret i de seneste år. Disse analyser anvender forskellige strategier, herunder Mu transposon-medieret PCR 8 , ikke-restriktive (nr) -LAM PCR 9 , type II restriktionsenzym-mEdieret fordøjelse 10 , mekanisk forskydning 11 og tilfældig hexamerbaseret PCR (Re-fri PCR) 12 til fragmentering af genomiske DNA'er og amplificering af IS. Nuværende teknologier har varierende niveauer af detektionsfølsomhed, genomdækning, målspecificitet, høj kapacitetskapacitet, kompleksitet af analyseprocedurer og forstyrrelser ved detektering af de relative frekvenser af målsteder. I betragtning af de forskellige kvaliteter af de eksisterende analyser og de forskellige formål, som de kan anvendes til, bør den optimale analysemetode udvælges omhyggeligt.

Dette arbejde giver detaljerede eksperimentelle procedurer og en beregningsdataanalyseproces for et tovejsanalyse, der signifikant forbedrer detektionshastigheder og sekvenskvantificeringsnøjagtighed ved samtidigt at analysere IS opstrøms og nedstrøms for det integrerede mål-DNA (se figur 1 for et skematisk billede af analyseprocedurerne ). Denne tilgang giver ogsåS midler til at karakterisere den retrovirale integrationsproces (for eksempel troværdigheden af ​​målstedduplikation og variationer i de genomiske sekvenser af opstrøms og nedstrøms insertioner). Andre bidirektionelle metoder er primært brugt til kloning og sekventering af begge ender af mål-DNA'et 11 , 13 , 14 . Dette assay optimeres i høj grad for den høje gennemstrømning og reproducerbare kvantificering af vektormarkerede kloner ved anvendelse af den veletablerede LM-PCR-metode og beregningsanalyse-kortlægning og til kvantificering af både opstrøms og nedstrøms krydsninger. Tovejsanalyse med TaqaI- enzymet har vist sig nyttigt til højkvalitets klonal kvantificering i stamcelle genterapi prækliniske studier 2 , 15 . Dette papir beskriver en ændret metode ved hjælp af en hyppigere cutter (RsaI / CviQI – motiv: GTAC), der fordobler tHan chancer for at detektere integromer sammenlignet med et TaqaI- baseret assay . Detaljerede forsøgs- og dataanalyseprocedurer, der bruger GTAC-motiv enzymer til lentiviral (NL4.3 og dets derivater) og gamma-retroviral (pMX vektorer) vektor IS-analyse, er beskrevet. Oligonukleotiderne anvendt i assayet er anført i tabel 1 . Et internt programmeringsskript til IS-sekvensanalyse findes i supplerende dokument.

Protocol

1. Generering af opstrøms (venstre) – og nedstrøms (højre) -junction sekvens biblioteker DNA linker præparation: Forbered en 10 μl linker-DNA-opløsning ved at tilsætte 2 μl 100 μM LINKER_A-oligos (endelige: 20 μM), 2 μl 100 μM LINKER_B-oligos (endelige: 20 μM), 2 μl 5 M NaCl (endelige: 1 M) og 4 μl nukleasefrit vand i et PCR-rør. Se tabel 1 for linkersekvenserne. Inkubér linker-DNA-opløsningen ved 95 ° C i 5 minutter i et PCR-instrument, …

Representative Results

Den tovejsede IS-analyse genererede forskellige størrelser af PCR-amplikoner for både opstrøms (venstre) og nedstrøms (højre) vektorværtsforbindelser ( figur 2 ). Størrelsen af ​​en PCR-amplicon er afhængig af placeringen af ​​det nærmeste GTAC-motiv opstrøms og nedstrøms for en integrering. Assayet producerede også interne DNA-PCR-amplikoner: retrovirale sekvenser nær polypurinkanalen og primerbindingsstedet blev samtidig amplificeret u…

Discussion

Det tovejsede assay muliggør samtidig analyse af både opstrøms (venstre) og nedstrøms (højre) vektor-vært-DNA-forbindelsessekvenser og er anvendelig i en række genterapi-, stamceller- og cancerforskningsapplikationer. Anvendelsen af ​​GTAC-motiv-enzymer (RsaI og CviQI) og den tovejsede PCR-tilgang forbedrer signifikant chancerne for at detektere en integromet (eller en klonal population) sammenlignet med tidligere TCGA-motiv enzym ( TaqaI ) -baserede assays 2 ,</…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Finansiering blev ydet af National Institutes of Health Grants R00-HL116234, U19 AI117941 og R56 HL126544; National Science Foundation Grant DMS-1516675; Koreas Nationale Forskningsfond (NRF-2011-0030049, NRF-2014M3C9A3064552); Og KRIBB initiativprogrammet.

Materials

Thermostable DNA polymerase Agilent 600424 PicoMaxx Polymerase
Thermostable DNA polymerase buffer Agilent 600424 PicoMaxx Polymerase buffer
Deoxynucleotide (dNTP) solution mix New England Biolabs N0447L dNTP solution mix (10mM each)
PCR tubes VWR International 53509-304 PCR Strip Tubes With Individual Attached Caps
2ml microcentrifuge tube Molecular Bioproducts 3453 microcentrifuge tubes
PCR purification kit Qiagen 28106
RsaI  New England Biolabs R0167L restriction enzyme
CviQI New England Biolabs R0639L restriction enzyme
Buffer A New England Biolabs B7204S NEB CutSmart buffer
DNA Polymerase I large (klenow) fragment  New England Biolabs M0210L Blunting
streptavidin beads solution Invitrogen  60101 Dynabeads kilobaseBINDER kit
Binding Solution Invitrogen  60101 Dynabeads kilobaseBINDER kit
Washing Solution Invitrogen  60101 Dynabeads kilobaseBINDER kit
magnetic stand ThermoFisher 12321D DynaMag™-2 Magnet
T4 DNA ligase New England Biolabs M0202L T4 DNA ligase
10X T4 DNA ligase buffer New England Biolabs B0202S T4 DNA ligase reaction buffer
5X T4 DNA ligase buffer Invitrogen  46300-018 T4 DNA ligase buffer with polyethylene glycol-8000
UV-Vis spectrophotometer Fisher Scientific S06497 Nanodrop 2000
pvuII new England Biolabs R0151L restriction enzyme
sfoI new England Biolabs R0606L restriction enzyme
Buffer B new England Biolabs B7203S NEB buffer 3.1
Nuclease free water Integrated DNA Technologies 11-05-01-14
Capillary electrophoresis Qiagen 9001941 QIAxcel capillary electrophoresis
Veriti 96-well Fast Thermal Cycler Thermo Fisher Scientific 4375305 PCR Instrument
Rotating wheel (or Roller) Eppendorf M10534004 Cell Culture Roller Drums
DNA size marker Qiagen 929559 QX size marker (100-2,500 bp)
DNA size marker Qiagen 929554 QX size marker (50-1,500 bp)
DNA alignment markers Qiagen 929524 QX DNA Alignment Marker
genomc DNA Not Available Not Available Sample genomc DNA from in vivo or in vitro experiments

References

  1. Serrao, E., Engelman, A. N. Sites of Retroviral DNA Integration: From Basic Research to Clinical Applications. Crit. Rev. Biochem. Mol. Bio. 51 (1), 26-42 (2016).
  2. Kim, S., et al. Dynamics of HSPC Repopulation in Nonhuman Primates Revealed by a Decade-Long Clonal-Tracking Study. Cell Stem Cell. 14 (4), 473-485 (2014).
  3. Bushman, F. Retroviral integration and human gene therapy. J. Clin. Invest. 117 (8), 2083-2086 (2007).
  4. Bystrykh, L. V., Verovskaya, E., Zwart, E., Broekhuis, M., de Haan, G. Counting stem cells: methodological constraints. Nat Meth. 9 (6), 567-574 (2012).
  5. Schröder, A., et al. HIV-1 integration in the human genome favors active genes and local hotspots. Cell. 110 (4), 521-529 (2002).
  6. Silver, J., Keerikatte, V. Novel use of polymerase chain reaction to amplify cellular DNA adjacent to an integrated provirus. J. Virol. 64, 3150 (1990).
  7. Schmidt, M., et al. High-resolution insertion-site analysis by linear amplification-mediated PCR (LAM-PCR). Nat. Meth. 4 (12), 1051-1057 (2007).
  8. Brady, T., et al. A method to sequence and quantify DNA integration for monitoring outcome in gene therapy. Nucleic Acids Res. 39 (11), e72 (2011).
  9. Gabriel, R., et al. Comprehensive genomic access to vector integration in clinical gene therapy. Nat. Med. 15 (12), 1431-1436 (2009).
  10. Kim, S., Kim, Y., Liang, T., Sinsheimer, J., Chow, S. A high-throughput method for cloning and sequencing human immunodeficiency virus type 1 integration sites. J. Virol. 80 (22), 11313-11321 (2006).
  11. Maldarelli, F., et al. Specific HIV integration sites are linked to clonal expansion and persistence of infected cells. Science. 345 (6193), 179-183 (2014).
  12. Wu, C., et al. High Efficiency Restriction Enzyme-Free Linear Amplification-Mediated Polymerase Chain Reaction Approach for Tracking Lentiviral Integration Sites Does Not Abrogate Retrieval Bias. Hum. Gene. Ther. 24 (1), 38-47 (2013).
  13. Aker, M., Tubb, J., Miller, D. G., Stamatoyannopoulos, G., Emery, D. W. Integration Bias of Gammaretrovirus Vectors following Transduction and Growth of Primary Mouse Hematopoietic Progenitor Cells with and without Selection. Mol. Ther. 14 (2), 226-235 (2006).
  14. Gabriel, R., Kutschera, I., Bartholomae, C. C., von Kalle, C., Schmidt, M. Linear Amplification Mediated PCR; Localization of Genetic Elements and Characterization of Unknown Flanking DNA. J Vis Exp. (88), e51543 (2014).
  15. Kim, S., et al. High-throughput, sensitive quantification of repopulating hematopoietic stem cell clones. J. Virol. 84 (22), 11771-11780 (2010).
  16. Mitchell, R., et al. Retroviral DNA integration: ASLV, HIV, and MLV show distinct target site preferences. PLoS Biol. 2 (8), e234 (2004).
  17. Melkus, M., et al. Humanized mice mount specific adaptive and innate immune responses to EBV and TSST-1. Nat. Med. 12 (11), 1316-1322 (2006).
  18. Bystrykh, L. V. A combinatorial approach to the restriction of a mouse genome. BMC Res Notes. 6, 284 (2013).
  19. Beard, B. C., Adair, J. E., Trobridge, G. D., Kiem, H. -. P. High-throughput genomic mapping of vector integration sites in gene therapy studies. Methods Mol Biol. , 321-344 (2014).
  20. Gabriel, R., et al. Comprehensive genomic access to vector integration in clinical gene therapy. Nat. Med. 15 (12), 1431-1436 (2009).
  21. Qin, X., An, D., Chen, I., Baltimore, D. Inhibiting HIV-1 infection in human T cells by lentiviral-mediated delivery of small interfering RNA against CCR5. Proc Natl Acad Sci U S A. 100 (1), 183-188 (2003).
  22. Kitamura, T., et al. Retrovirus-mediated gene transfer and expression cloning: powerful tools in functional genomics. Exp. Hematol. 31 (11), 1007-1014 (2003).
  23. Cartier, N., et al. Hematopoietic stem cell gene therapy with a lentiviral vector in X-linked adrenoleukodystrophy. Science. 326 (5954), 818-823 (2009).
check_url/55812?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Suryawanshi, G. W., Xu, S., Xie, Y., Chou, T., Kim, N., Chen, I. S. Y., Kim, S. Bidirectional Retroviral Integration Site PCR Methodology and Quantitative Data Analysis Workflow. J. Vis. Exp. (124), e55812, doi:10.3791/55812 (2017).

View Video