Summary

DNA-Färbung Methode basiert auf Formazan Niederschlag induziert durch blaues Licht aussetzen

Published: January 28, 2018
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Summary

Diese Methode erlaubt selektive Färbung und Quantifizierung der DNA in den Gelen durch Einweichen das Gel in einem SYBR Grün ich / Nitro blau Tetrazoliumsalz Lösung und setzen Sie sie dem Sonnenlicht oder eine blaue Lichtquelle. Dies erzeugt einen sichtbaren Niederschlag und erfordert fast keine Ausrüstung, wodurch es ideal für den mobilen Einsatz.

Abstract

DNA-Färbung Methoden sind sehr wichtig für die biomedizinische Forschung. Wir haben eine einfache Methode, die DNA-Visualisierung mit dem bloßen Auge durch die Bildung von farbigen Niederschlag ermöglicht entwickelt. Es funktioniert durch Einweichen der Acrylamid oder DNA Agarose-gel in einer Lösung aus 1 X (entspricht 2,0 µM) SYBR Green ich (SG ich) und 0,20 mM Nitro blau Tetrazoliumsalz, die eine lila produziert Niederschlag von Formazan bei Sonneneinstrahlung oder speziell blaues Licht. Auch wurden DNA-Recovery Tests durchgeführt mit einem Ampicillin resistent Plasmid in einem Agarosegel mit unserer Methode befleckt. Eine größere Zahl von Kolonien wurde erreicht mit unserer Methode als mit traditionellen Färbung mit SG ich mit UV-Beleuchtung. Das beschriebene Verfahren ist schnell, spezifisch und nicht toxisch für DNA-Nachweis, so dass Visualisierung von Biomolekülen mit dem “bloßen Auge” ohne ein Transilluminator und ist billig und für den mobilen Einsatz geeignet. Aus diesen Gründen hat unsere neue DNA Färbung Methode potenzielle Nutzen für Forschung und Industrie.

Introduction

Mit den Fortschritten in der Biochemie und Molekularbiologie haben die Studien mit DNA bessere Techniken zur DNA Analyse erforderlich. Die erste Methode für DNA-Färbung wurde Silber Färbung, die sehr empfindlich ist, aber ermangelt Selektivität und erlaubt keine Probenrückgewinnung. Später, erlaubt die Entwicklung von fluoreszierenden DNA-Färbung die selektive Quantifizierung der DNA mit der Möglichkeit der Probenrückgewinnung. Eines der ersten Fluoreszenzfarbstoffen verwendet für DNA-Quantifizierung war Interkalation Bromid1, mutagene2. Allerdings gibt es nun verbesserte fluoreszierende Farbstoffe, die sicherer und empfindlicher, wie GelRed und SYBR Green sind ich (SG ich)3; aber alle diese Leuchtstofffärbungen erfordern den Einsatz eines ultravioletten (UV) Transilluminator oder Fluorimeter.

Es gibt andere Techniken zum Färben sichtbar DNA, wie Methylenblau4 und Kristallviolett5,6,7,8,9, aber all diese Leiden verringerte Empfindlichkeit und Selektivität. Die Tetrazolium-Salze sind organische Verbindungen, die anfällig für Reduktion, und in diesem Fall bilden sie eine unlösliche und farbigen Formazan überstürzen sich10,11. Vor kurzem zeigten einige bivalenten Tetrazoliumsalz Salze aufgrund ihrer positiven Tetrazoliumsalz Ringe12an DNA zu binden.

In den letzten Veröffentlichung13wurde eine neue sichtbare Technik zu färben und zu quantifizieren DNA in Polyacrylamid-Gele vorgeschlagen, mit der Reduktion von bivalenten Tetrazoliumsalz Salz namens Nitro blau Tetrazoliumsalz (NBT) und Fluoreszenz-Farbstoffen wie Interkalation Bromid, GelRed, SYBR Green I und SYBR Gold. Diese Reaktion bei Anwesenheit von blauem Licht oder Sonnenlicht gearbeitet und erlaubt Probenrückgewinnung mit verbesserter Qualität gegenüber dem Einsatz von SG ich mit einem UV-Transilluminator. Das Ziel dieses Papiers ist ein detailliertes Protokoll der Färbung Technik mit Tetrazoliumsalz bieten Salze.

Protocol

1. Vorbereitung und Ausführung der Gel Bereiten Sie die nicht Denaturierung 12 % Polyacrylamid-Gel Gele Sodium Dodecyl Sulfat-Polyacrylamid-Gel-Elektrophorese (SDS-PAGE) Rezept fand in Sambrook und Russell14 , aber mit Wasser anstelle von SDS. Verwenden Sie um 5 mL Lösung Gel vorzubereiten, 1,7 mL destilliertem Wasser, 2 mL Acrylamid/Bis-Acrylamid (30/0,8 % w/V), 1,3 mL 1,5 M Tris pH 8,8, 0,05 mL 10 % Ammonium bleichen und 0,002 mL TEMED. Zur Vorbereitung verwenden 2…

Representative Results

Ein violette Formazan Niederschlag erscheint (verifiziert durch Massenspektrometrie13) wo die DNA befindet. Im Experiment wurde eine DNA-Leiter geladen zu einer Kalibrierkurve (Abbildung 3). Das Protokoll arbeitet für Acrylamid und Agarose Gele, aber es hat eine geringere Intensität und nimmt eine längere Zeit in Agarose. Jedoch die Verwendung von Agarose-Gele ermöglicht die Rückgewinnung der Probe mit einem kommerziell erhältlic…

Discussion

Eine sensible und Roman DNA Färbung Methode anhand der Reduzierung der NBT und die Verwendung von SG, die ich in diesem Artikel vorgestellt wurde. Der entscheidende Schritt in diesem Protokoll ist die Inkubationszeit des Gels in der NBT-SG ich Lösung und die Konzentration der NBT. Die Färbung Agarose-Gele dauert länger als bei Acrylamid Gele wegen der größeren Dicke Agarose-Gele. Diese Methode funktioniert nicht gut im Beisein von SDS, wie NBT mit ihm in Berührung ausfällt. Wenn das Gel einen violetten Hintergrun…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde unterstützt von Fondo Nacional de Desarrollo y Científico Tecnológico (Fondecyt), Chile, Projekt 11130263 (für CW), Projekt CONICYT ++ NERC Programa de Überwachung Internacional PCI-PII20150073 (für CW) und U-Inicia aus der Vicerrectoría-de Investigación Universidad de Chile (CW).

Danke an Tatiana Naranjo-Palma für die Hilfe in der Anfangsphase des Projekts, Dr. Jorge Babul und Diego Quiroga-Roger für hilfreiche Diskussion, Robert Lesch für die Überarbeitung des Manuskripts und Dirección de Extensión De La spielte de Ciencias Químicas y Farmacéuticas von Universidad de Chile. Vielen Dank auch an Marcelo Pérez für die Videobearbeitung und Neil Stevens zum Korrigieren von Text und Errol Watson für die Bereitstellung von der Voice-over.

Materials

Nitro blue tetrazolium Gold Biotechnology 298-83-9 reagent used in the staining
SYBR Green I 10000X Thermo-Fisher S7563 reagent used in the staining
Gel extraction kit QIAGEN 28704 used to extract plasmid from the gel in integrity assay
DNA ladder Thermo-Fisher SM 1331 used to make calibration curves and as reference to cut band in integrity assay
Agar Agar Merck used to make LB-ampicillin culture plates 
sodium chloride Merck 1064045000 used to make LB-ampicillin culture plates 
yeast extract Becton, Dickinson and Company 212750 used to make LB-ampicillin culture plates 
peptone Merck 72161000 used to make LB-ampicillin culture plates 
TEMED AMRESCO 761 used to make polyacrylamide gels
ammonium persulfate Calbiochem 2310 used to make polyacrylamide gels
acrylamide invitrogen 15512-023 used to make polyacrylamide gels
bisacrylamide SIGMA 146072 used to make polyacrylamide gels
Tris-base Merck 1083821000 used to make TAE buffer and non-denaturing polyacrylamide gel tris-HCl buffer
EDTA J.T. Baker 8993-01 used to make TAE buffer
Acetic acid Merck 1,000,632,500 used to make TAE buffer
agarose Merck 16802 used to make TAE buffer
spectrophotometer Tecan infinite 200 pro used to quantify DNA plasmid
water purificatiom unit Merck Elix 100 use to make water type 1 (ASTM) used in spectrophotometry and DNA dilutions
distilled water used in gels, culture medium, stainings and general solutions
HCl J.T. Baker 9535-03 used to make non-denaturing polyacrylamide gel tris-HCl buffer
6X DNA loading dye Thermo-Fisher R0610
5 mm Blue LED Jinyuan electronics SP-021 light source used in integrity assay
protoboard KANDH KH102 light source support and circuit 
9 V battery Duracell used to power the LED's
horizontal electrophoresis chamber Biorad 1704486EDU used to make and run agarose gel in integrity assay
vertical electrophoresis kit Biorad 1658002EDU used to run polyacrylamide gels in calibration curves
power supply Biorad 1645050  used to power the electrophoresis

References

  1. LePecq, J. B., Paoletti, C. A fluorescent complex between ethidium bromide and nucleic acids: physical-chemical characterization. J. Mol. Biol. 27 (1), 87-106 (1967).
  2. Singer, V. L., Lawlor, T. E., Yue, S. Comparison of SYBR Green I nucleic acid gel stain mutagenicity and ethidium bromide mutagenicity in the Salmonella/mammalian microsome reverse mutation assay (Ames test). Mutat Res. 439 (1), 37-47 (1999).
  3. Xin, X., Yue, S., Wells, K. S., Singer, V. L. SYBR Green-I: a new fluorescent dye optimized for detection picogram amounts of DNA in gels. Biophys. J. 66 (A150), (1994).
  4. Flores, N., Valle, F., Bolivar, F., Merino, E. Recovery of DNA from agarose gels stained with methylene blue. Biotechniques. 13 (2), 203-205 (1992).
  5. Yang, Y. I., Jung, D. W., Bai, D. G., Yoo, G. S., Choi, J. K. Counterion-dye staining method for DNA in agarose gels using crystal violet and methyl orange. Electrophoresis. 22 (5), 855-859 (2001).
  6. Yang, Y. I., et al. Detection of DNA using a visible dye, Nile blue, in electrophoresed gels. Anal. Biochem. 280 (2), 322-324 (2000).
  7. Santillán-Torres, J. L. A novel stain for DNA in agarose gels. Trends Genet. 9 (2), 40 (1993).
  8. Adkins, S., Burmeister, M. Visualization of DNA in agarose gels as migrating colored bands: applications for preparative gels and educational demonstrations. Anal. Biochem. 240 (1), 17-23 (1996).
  9. Cong, W. T., et al. A visible dye-based staining method for DNA in polyacrylamide gels by ethyl violet. Anal. Biochem. 402 (1), 99-101 (2010).
  10. Altman, F. P. Tetrazolium salts and formazans. Prog. Histochem. Cytochem. 9 (3), 1-56 (1976).
  11. Nineham, A. W. The chemistry of formazans and tetrazolium salts. Chem. Rev. 55 (2), 355-483 (1955).
  12. Crandall, I. E., Zhao, B., Vlahakis, J. Z., Szarek, W. A. The interaction of imidazole-, imidazolium, and tetrazolium-containing compounds with DNA. Bioorg. Med. Chem. Lett. 23 (5), 1522-1528 (2013).
  13. Paredes, A. J., et al. New visible and selective DNA staining method in gels with tetrazolium salts. Anal. Biochem. 517, 31-35 (2017).
  14. Green, M. R., Sambrook, J. . Molecular Cloning: a Laboratory Manual. , (2012).
  15. Hansen, W., Garcia, P. D., Walter, P. In vitro protein translocation across the yeast endoplasmic reticulum: ATP-dependent post-translational translocation of the prepro-α-factor. Cell. 45 (3), 397-406 (1986).
  16. Inoue, H., Nojima, H., Okayama, H. High efficiency transformation of Escherichia coli with plasmids. Gene. 96 (1), 23-28 (1990).
  17. Madigan, M., Martinko, J., Parker, J. . Brock biology of microorganisms. , (2003).
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Cite This Article
Paredes, A. J., Alfaro-Valdés, H. M., Wilson, C. A. DNA Staining Method Based on Formazan Precipitation Induced by Blue Light Exposure. J. Vis. Exp. (131), e56528, doi:10.3791/56528 (2018).

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