Summary

Multiplexed immunofluorescentie analyse en kwantificering van Intratumoral PD-1+ Tim-3+ CD8+ T cellen

Published: February 08, 2018
doi:

Summary

Bestuderen van tumor communicatie kan identificeren prognostische of voorspellende biomarkers voor klinische respons op immunotherapie. Hier wordt gepresenteerd, is een innovatieve methode op basis van in situ fluorescentie multispectrale imaging te analyseren en automatisch verschillende subpopulaties van CD8 tellen+ T cellen. Deze reproduceerbaar zijn en betrouwbare techniek is geschikt voor grote cohort analyses.

Abstract

Immune cellen zijn belangrijke componenten van de communicatie van de tumor en tumorgroei en evolutie beïnvloeden in alle stadia van carcinogenese. Met name nu ook vaststaat dat de immuun infiltreren in menselijke tumoren met de prognose en respons op therapie correleren kan. De analyse van de immuun infiltreren in de communicatie van de tumor is uitgegroeid tot een grote uitdaging voor de classificatie van patiënten en de reactie op behandeling.

De co uitdrukking van remmende receptoren zoals programma cel dood eiwit 1 (PD1; ook bekend als CD279), cytotoxische T-lymfocyten geassocieerde eiwit 4 (CTLA-4), T-cel Immunoglobulin Mucin bevattende eiwitten-3 (Tim-3; ook bekend als CD366) en lymfocyt Activering gen 3 (Lag-3; ook bekend als CD223), is een kenmerk van T cel uitputting. We ontwikkelden een multiparametric in situ immunofluorescentie kleuring te identificeren en te kwantificeren op cellulair niveau de co uitdrukking van deze remmende receptoren. Op een retrospectieve serie van bevroren weefsel van renaal cel carcinomen (RCC), met behulp van een fluorescentie multispectrale imaging technologie in combinatie met de software van de analyse van een afbeelding, bleek dat mede uiting van PD-1 en Tim-3 op tumor infiltreren CD8+ T cellen is gecorreleerd met een slechte prognose in RCC. Om onze kennis, dit is de eerste studie waaruit blijkt dat dit geautomatiseerd multiplex in situ technologie wellicht sommige klinische relevantie.

Introduction

In de afgelopen jaren, heeft immunotherapie ontpopt als een zeer veelbelovende behandeling voor vele soorten van kanker, met inbegrip van de RCC. Bijzonder, immunotherapie, gebaseerd op de remming van remmende checkpoints als PD-1 en CTLA-4 is gemeld te worden klinisch effectief1,2,3,4,5, 6. monoklonale antilichamen tegen CTLA-4, PD-1, of programma dood Ligand 1 (PD-L1) zijn al goedgekeurd in verschillende kankers en leiden tot langdurige klinische reacties in meer dan 20% van de patiënten7. Echter niet alle patiënten responders, de kosten van de behandeling is hoog, en deze behandelingen zijn giftig, wat leidt tot potentiële ernstige bijwerkingen van de auto-immune-achtige. Daarom is de huidige uitdaging het identificeren van voorspellende markers aan die nieuwe immuuntherapie. Het tempo van de mutaties in de tumor, de uitdrukking van PD-L1 of de niveaus van intratumoral CD8+ T cel infiltratie gemeld te correleren met de klinische respons. Deze vereniging is echter nog steeds te zwak om te raden het gebruik van deze klinische biomarkers in de klinische praktijk met uitzondering van de test van de metgezel voor PD-L1 vóór de administratie voor Pembrolizumab in niet-kleincellige longkanker kanker (NKCLK) patiënten8 ,9,1011,12. Het is aangetoond dat de co uitdrukking van vele remmende receptoren als PD-1, Tim-3, Lag-3, en CTLA-4, induceert een cel uitputting fenotype en weerstand tegen therapie13,14,15. Aangezien perifeer bloed niet representatief zijn voor de communicatie van de tumor is, is het van groot belang voor het analyseren van de fenotypische kenmerken van de cellen in situ. PD-1 en Tim-3 mede waarin T-cellen zitten bekend voor zitten functioneel verminderde cellen in verschillende contexten13,16,17. In deze studie, de prognostische impact van de co uitdrukking van de twee remmende receptoren PD-1 en Tim-3 op CD8+ T cellen werd beoordeeld.

Omhoog tot nu toe, het bestuderen van de co uitdrukking van meerdere markeringen op tumor infiltreren lymfocyten (TILs) is voornamelijk door stroom cytometry analyse, waardoor het noodzakelijk wordt om te werken aan nieuwe tumoren en daarom uitschakeling retrospectieve analyses verricht. Met conventionele in situ kleuring, slechts één kleuring tegelijk kan worden uitgevoerd, en de karakterisatie van het celtype die mede de markers uitdrukt is niet mogelijk. Bijvoorbeeld, wordt PD-L1 uitgedrukt door veel celtypen van het tumoraal communicatie, waardoor het moeilijk te definiëren door conventionele immunohistochemistry analyse welke cellen uiten van PD-L1 relevanter voor oereenstemming studies zijn. In dit werk, ontwikkelden we een methode van multiparametric immunofluorescentie innovatieve in situ met computer-tellen om te correleren de co uitdrukking van PD-1 en Tim-3 door tumor infiltreren CD8+ T-cellen met klinische resultaten in de RCC. Deze techniek heeft meerdere voordelen, met inbegrip van de mogelijkheid om te analyseren op het niveau van een enkele cel en meerdere markeringen op hetzelfde moment met behulp van een multispectrale camera die beperkt intervallen vangen kan > 10 nm via vloeibare kristallen filters18. De procedure is bovendien automatische waardoor een inter exploitant reproduceerbaarheid en een verkorte analyse in vergelijking met manuele technieken19. Op het gebied van kanker, verschillende studies gerapporteerd overtuigend meerdere technieken van immuun moleculen zoals PD-1, PD-L1 en CD8 in Merkel-cel carcinoom, longkanker, en hoofd en nek kanker20,21,22, 23. de telling van de geautomatiseerde cel is mogelijk met de opleiding door de gebruiker (fenotypering stap). De fluorescentie wordt gemeten in de andere cel compartimenten (kernen cytoplasma en membraan).

Hier, de verschillende subgroepen van tumor-infiltreren CD8+ T cellen waarin PD-1 en/of Tim-3 in een grote cohort van RCC werden geteld en de resultaten werden gecorreleerd met klinische Ernst scores en overleving parameters. Het was ook mogelijk om het analyseren van membraan intensiteit van de fluorescentie bij de cellulaire resolutie met bedoel fluorescentie intensiteit (MFI) gegevens zoals in cytometry. As far as we know, vertegenwoordigt dit de eerste rapportage prognostische studieresultaten met behulp van deze multispectrale imaging gebaseerde graaf techniek.

Protocol

Deze studie werd uitgevoerd overeenkomstig de verklaring van Helsinki en werd goedgekeurd door de lokale ethische Commissie (CPP Ile de France nr. 2012-05-04). Geïnformeerde toestemming was verkregen van de deelnemer in de cohorten opgenomen. 1. de weefsels materiaal Verzamelen RCC weefselsteekproeven op de dag van de operatie. Omgaan met de chirurgische model bij kamertemperatuur (Afdeling Pathologie). Een monster van de tumor van ongeveer 0,5 x 0,5 cm x 0.5 cm grootte in…

Representative Results

Met behulp van het algemeen protocol zoals hierboven beschreven, we gericht op het kwantificeren van intratumoral CD8+ T cellen samen uiting geven aan de remmende receptoren PD-1 en Tim-3 in bevroren weefsels van patiënten met RCC, en de resultaten correleren met klinische resultaten25. Optimalisatie van de kleuring van CD8/PD-1/Tim-3: <p class="jove_content" fo:keep-toget…

Discussion

Wijzigingen en probleemoplossing:

De kwaliteit van het weefsel is een belangrijke parameter; het kan gemakkelijk worden gecontroleerd door de haematoxyline en eosine-kleuring.

Een voordeel van de techniek is de mogelijkheid van multiplexed technieken, maar om te voorkomen dat fluorophore spill-over, het aanbevolen te kiezen emissie golflengten met delta van 10 nm minimum. Hier, omdat we 4 technieken waaronder DAPI hadden, we kozen te spreiden de gol…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dit werk werd gesteund door subsidies van het Institut National du Cancer (INCA) (ET), Ligue contre le Cancer (ET), Université Sorbonne Paris Cité (ET), ANR (Selectimmunco) (ET), Labex Immuno-oncologie (ET), SIRIC CARPEM (CG, ET). EdG werd gefinancierd door een beurs van de Fondation ARC. EV en CD werden gefinancierd door een beurs van APHP (bourse année recherche). ChB wordt gefinancierd door een beurs van de universiteit Sorbonne Paris Cité (contrat promovendi). De auteurs bedanken Bristol-Myers Squibb voor hun financiering in dit project. De auteurs bedanken de afdeling pathologie van Hopital Européen Georges Pompidou en Necker (Laurianne Chambolle, Elodie Michel en Gisèle Legall). De auteurs bedanken de histologie platform van PARCC, Hopital Européen Georges Pompidou (Corinne Lesaffre).

Materials

Vectra 3 Automated Quantitative Pathology Imaging  Perkin Elmer CLS142338
inForm cell analysis 2.1. Perkin Elmer CLS135781
R software https://www.r-project.org
Dakopen delimiting pen Dako S2002
Tris Buffer Salin TBS Tablets Takara, Bio Inc. TAKT9141Z pH7.6 100 tablet
Tris Buffer Salin Tween 20 TBS(+Tween20) Takara, Bio Inc. TAKT9142Z pH 7.6 100 tablets
Biotin blocking system Dako X0590 Avidin 0.1% and Biotin 0.01%
normal donkey serum Jackson Immunoresearch 017-000-001 5% vol./vol. concentration
Fluoroshield with DAPI Sigma-aldrich F6057 1.5 µg/mL concentration 
Knittel glass coverslip Knittel Gläser, 100039 24×60 mm 100 cover slips
Rabbit anti-CD8 Clone P17-V novus NBP1-79055 use at 4µg/mL
Mouse anti-PD-1 Clone NAT abcam ab52587 use at 2 µg/mL
Goat anti-Tim-3 R&D AF2365 use at 3 µg/mL
Rabbit anti-PD-L1 Clone SP142 Roche 7309457001 use at 1 µg/mL
Mouse AF647 labeled pan- Keratin Clone C11  Cell Signalling 4528 use at 0.5 µg/mL
Goat anti-human gal9  R&D AF2045 use at 0.3 µg/mL
Cyan 5 conjugated donkey anti-rabbit  Jackson Immunoresearch 711-175-152 use at 5 µg/mL
Biotinylated F(ab’2) donkey anti-mouse IgG Jackson Immunoresearch 715-066-150 use at 3 µg/mL
Alexa Fluor488 conjugated donkey anti-goat IgG abcam ab150133 use at 5 µg/mL
Cy3 labeled streptavidin  Amersham PA43001 use at 3 µg/mL
negative control mouse IgG1 Dako X0931 use at 2 µg/mL
IgG from goat serum Sigma-aldrich I5256 use at 3 µg/mL
IgG from rabbit serum Sigma-aldrich I5006 use at 4µg/mL

References

  1. Borghaei, H., et al. Nivolumab versus Docetaxel in Advanced Nonsquamous Non-Small-Cell Lung Cancer. N Engl J Med. 373 (17), 1627-1639 (2015).
  2. Granier, C., et al. Cancer immunotherapy: Rational and recent breakthroughs. Rev Med Interne. 37 (10), 694-700 (2016).
  3. Motzer, R. J., et al. Nivolumab for Metastatic Renal Cell Carcinoma: Results of a Randomized Phase II Trial. J Clin Oncol. 33 (13), 1430-1437 (2015).
  4. Robert, C., et al. Nivolumab in previously untreated melanoma without BRAF mutation. N Engl J Med. 372 (4), 320-330 (2015).
  5. Robert, C., et al. Ipilimumab plus dacarbazine for previously untreated metastatic melanoma. N Engl J Med. 364 (26), 2517-2526 (2011).
  6. Rosenberg, J. E., et al. Atezolizumab in patients with locally advanced and metastatic urothelial carcinoma who have progressed following treatment with platinum-based chemotherapy: a single-arm, multicentre, phase 2 trial. Lancet. 387 (10031), 1909-1920 (2016).
  7. Schadendorf, D., et al. Pooled Analysis of Long-Term Survival Data From Phase II and Phase III Trials of Ipilimumab in Unresectable or Metastatic Melanoma. J Clin Oncol. 33 (17), 1889-1894 (2015).
  8. Ribas, A., Hu-Lieskovan, S. What does PD-L1 positive or negative mean?. J Exp Med. 213 (13), 2835-2840 (2016).
  9. Rizvi, N. A., et al. Cancer immunology. Mutational landscape determines sensitivity to PD-1 blockade in non-small cell lung cancer. Science. 348 (6230), 124-128 (2015).
  10. Roussel, H., et al. Composite biomarkers defined by multiparametric immunofluorescence analysis identify ALK-positive adenocarcinoma as a potential target for immunotherapy. OncoImmunology. 6 (4), e1286437 (2017).
  11. Pages, F., Granier, C., Kirilovsky, A., Elsissy, C., Tartour, E. Biomarqueurs prédictifs de réponse aux traitements bloquant les voies de costimulation inhibitrices. Bull Cancer. 103, S151-S159 (2016).
  12. Tumeh, P. C., et al. PD-1 blockade induces responses by inhibiting adaptive immune resistance. Nature. 515 (7528), 568-571 (2014).
  13. Fourcade, J., et al. Upregulation of Tim-3 and PD-1 expression is associated with tumor antigen-specific CD8+ T cell dysfunction in melanoma patients. J Exp Med. 207 (10), 2175-2186 (2010).
  14. Koyama, S., et al. Adaptive resistance to therapeutic PD-1 blockade is associated with upregulation of alternative immune checkpoints. Nat Commun. 7, 10501 (2016).
  15. Wherry, E. J., Kurachi, M. Molecular and cellular insights into T cell exhaustion. Nat Rev Immunol. 15 (8), 486-499 (2015).
  16. Cai, C., et al. Tim-3 expression represents dysfunctional tumor infiltrating T cells in renal cell carcinoma. World J Urol. 34 (4), 561-567 (2016).
  17. Sakuishi, K., et al. Targeting Tim-3 and PD-1 pathways to reverse T cell exhaustion and restore anti-tumor immunity. J Exp Med. 207 (10), 2187-2194 (2010).
  18. Stack, E. C., Wang, C., Roman, K. A., Hoyt, C. C. Multiplexed immunohistochemistry, imaging, and quantitation: a review, with an assessment of Tyramide signal amplification, multispectral imaging and multiplex analysis. Methods. 70 (1), 46-58 (2014).
  19. Bethmann, D., Feng, Z., Fox, B. A. Immunoprofiling as a predictor of patient’s response to cancer therapy-promises and challenges. Curr Opin Immunol. 45, 60-72 (2017).
  20. Badoual, C., et al. PD-1-expressing tumor-infiltrating T cells are a favorable prognostic biomarker in HPV-associated head and neck cancer. Cancer Res. 73 (1), 128-138 (2013).
  21. Nizard, M., et al. Induction of resident memory T cells enhances the efficacy of cancer vaccine. Nat Commun. 8, 15221 (2017).
  22. Nghiem, P. T., et al. PD-1 Blockade with Pembrolizumab in Advanced Merkel-Cell Carcinoma. N Engl J Med. 374 (26), 2542-2552 (2016).
  23. Roussel, H., et al. Composite biomarkers defined by multiparametric immunofluorescence analysis identify ALK-positive adenocarcinoma as a potential target for immunotherapy. Oncoimmunology. (4), (2017).
  24. Woods, K., et al. Mismatch in epitope specificities between IFNgamma inflamed and uninflamed conditions leads to escape from T lymphocyte killing in melanoma. J Immunother Cancer. 4, 10 (2016).
  25. Granier, C., et al. Tim-3 Expression on Tumor-Infiltrating PD-1+CD8+ T Cells Correlates with Poor Clinical Outcome in Renal Cell Carcinoma. Cancer Res. 77 (5), 1075-1082 (2017).
  26. Feng, Z., et al. Multispectral Imaging of T and B Cells in Murine Spleen and Tumor. J Immunol. 196 (9), 3943-3950 (2016).
  27. Feng, Z., et al. Multispectral imaging of formalin-fixed tissue predicts ability to generate tumor-infiltrating lymphocytes from melanoma. J Immunother Cancer. 3, 47 (2015).
  28. Fridman, W. H., Pages, F., Sautes-Fridman, C., Galon, J. The immune contexture in human tumours: impact on clinical outcome. Nat Rev Cancer. 12 (4), 298-306 (2012).
  29. Nizard, M., Roussel, H., Tartour, E. Resident Memory T Cells as Surrogate Markers of the Efficacy of Cancer Vaccines. Clin Cancer Res. 22 (3), 530-532 (2016).
  30. Sandoval, F., et al. Mucosal imprinting of vaccine-induced CD8(+) T cells is crucial to inhibit the growth of mucosal tumors. Sci Transl Med. 5 (172), 172ra120 (2013).
  31. Carstens, J. L., et al. Spatial computation of intratumoral T cells correlates with survival of patients with pancreatic cancer. Nat Commun. 8, 15095 (2017).
check_url/56606?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Granier, C., Vinatier, E., Colin, E., Mandavit, M., Dariane, C., Verkarre, V., Biard, L., El Zein, R., Lesaffre, C., Galy-Fauroux, I., Roussel, H., De Guillebon, E., Blanc, C., Saldmann, A., Badoual, C., Gey, A., Tartour, É. Multiplexed Immunofluorescence Analysis and Quantification of Intratumoral PD-1+ Tim-3+ CD8+ T Cells. J. Vis. Exp. (132), e56606, doi:10.3791/56606 (2018).

View Video