Summary

Analyser av mitokondrie kalcium tillströmningen i isolerade mitokondrier och odlade celler

Published: April 27, 2018
doi:

Summary

Här presenterar vi två protokoll för mätning av mitokondriell Ca2 + tillströmningen i isolerade mitokondrier och odlade celler. För isolerade mitokondrier, vi detalj en plate reader-baserade Ca2 + import assay med de Ca2 + känsliga färga kalcium grön-5N. För odlade celler beskriver vi en konfokalmikroskopi metod där Ca2 + färgämnet Rhod-2/AM.

Abstract

Ca2 + hantering av mitokondrierna är en kritisk funktion som reglerar både fysiologiska och patofysiologiska processer i ett brett spektrum av celler. Förmågan att noggrant mäta inflödet och utflödet av Ca2 + från mitokondrier är viktigt för att fastställa rollen av mitokondriell Ca2 + hantering i dessa processer. I denna rapport presenterar vi två metoder för mätning av mitokondriell Ca2 + hantering både isolerade mitokondrier och odlade celler. Vi detalj först en tallrik läsare-baserad plattform för mätning av mitokondriell Ca2 + upptag med de Ca2 + känsliga dye kalcium grön-5N. Det platta läsare-baserade formatet kringgår behovet av specialutrustning och kalcium grön-5N färgämnet är idealiskt lämpad för att mäta Ca2 + från isolerade vävnaden mitokondrier. För vår ansökan beskriver vi mätning av mitokondriell Ca2 + upptag i mitokondrierna som isolerats från mus hjärta vävnad; dock kan detta förfarande tillämpas för att mäta mitokondriell Ca2 + upptag i mitokondrierna isolerade från andra vävnader såsom levern, skelettmuskel och hjärnan. För det andra beskriver vi en confocal microscopy-baserad analys för mätning av mitokondriell Ca2 + i permeabilized celler använder Ca2 + känsliga färgämnet Rhod-2/AM och imaging använder 2-dimensionell laserskanning mikroskopi. Detta permeabilisering protokoll eliminerar cytosoliska dye kontaminering, möjliggör specifika inspelning av ändringar i mitokondriell Ca2 +. Dessutom tillåter laserskanning mikroskopi för hög bildfrekvens att fånga snabba förändringar i mitokondriell Ca2 + svar på olika droger eller reagenser som används i den externa lösningen. Detta protokoll kan användas för att mäta mitokondriell Ca2 + upptag i många celltyper inklusive primära celler såsom hjärt myocyter och nervceller och förevigade cellinjer.

Introduction

Mitokondrierna är kritiska platser av intracellulära Ca2 + lagring och signalering. Decennier av forskning har visat att mitokondrierna har förmågan att importera och binda Ca2 + 1,2. Mitokondrier är dock inte bara passiva platser Ca2 + lagring. Ca2 + på mitokondriell facket utför grundläggande signalering funktioner inklusive reglering av metabola utdata och aktivering av mitokondrie-medierad cell death gångvägar, som har granskat tidigare3. För metabolisk reglering ökar Ca2 + aktiviteten hos tre matrix-lokaliserad mellan östradiol och östron av den tricarboxylic syra cykel samt respiratoriska kedja komplex, att öka mitokondriell energi produktion4,5 . Med mitokondriell Ca2 + överbelastning och dysreglerad mitokondriell Ca2 + hantering, Ca2 + utlösare mitokondriell permeabilitet övergången pore (MPTP) öppning, leder till mitokondriell inre membranet vilket, membranet potentiella förlust, mitokondriell dysfunktion, svullnad, brista och i slutändan cell död6,7,8,9. Således, mitokondriell Ca2 + signalering direkt påverkar både cellulära liv och död vägar genom metabol kontroll och MPTP-döden axel.

Under de senaste åren, det har snabbt växande intresse i studien av mitokondriell Ca2 + dynamics förfaller i stor del till att identifiera de molekylära beståndsdelarna av den mitokondriella Ca2 + uniporter complex, en mitokondriell inre membranet transportör som är en primär läge Ca2 + importera till mitokondriella matris 10,11,12. Identifiering av dessa strukturella och reglerande subenheter av uniporter har frambringat möjligheten att genetiskt inriktning mitokondriell Ca2 + inflödet för att modulera mitokondriell funktion och dysfunktion och underlättade studiet av de bidrag av uniporter komplexa och mitokondrie Ca2 + tillströmningen till sjukdom13,14,15. Faktiskt, mitokondriell Ca2 + signalering har varit inblandad i patologier av en mångfald av sjukdomar allt från hjärtsjukdom till neurodegeneration och cancer16,17,18, 19,20.

Med tanke på den grundläggande betydelsen av mitokondriell Ca2 + signalering i metabolism och celldöd, och kombinerat med den breda räckhåll för biologiska system påverkar att mitokondriell Ca2 + signalering, metoder att bedöma mitokondriell Ca2 + tillströmningen är av stort intresse. Inte överraskande, en mängd tekniker och verktyg att mäta mitokondriell Ca2 + har utvecklats. Dessa inkluderar metoder som använder verktyg som fluorescerande Ca2 +-känsliga färgämnen21,22 och genetiskt-kodade Ca2 + sensorer riktade till mitokondrierna, såsom cameleon och aequorin23, 24. Målet med denna artikel är att belysa olika metoder och modellsystem där mitokondrie Ca2 + upptag kan mätas. Vi presenterar två experimentella metoder för att utvärdera mitokondriella Ca2 + tillströmning kapacitet. Med hjärt mitokondrier som exempel, vi detalj en plate reader-baserad plattform för mätning av mitokondriell Ca2 + upptag med de Ca2 + känsliga färga kalcium grön-5N som är idealisk för isolerade vävnaden mitokondrier14 . Med hjälp av odlade NIH 3T3-celler, beskriver vi också en konfokalmikroskopi imaging-baserad analys för mätning av mitokondriell Ca2 + i permeabilized celler med Ca2 + känsliga färgämnet Rhod-2/AM25.

Protocol

Alla metoder som beskrivs i detta protokoll har godkänts av den institutionella djur vård och användning kommittén vid Emory University. Obs: Den första delen är experimentella förfarandet för mätning mitokondriell Ca2 + tillströmning i isolerade hjärt mitokondrier med hjälp av en tallrik-läsare. 1. reagenser och lösningar Gör 500 mL MS-EGTA buffert för mitokondriell isolering: 225 mM mannitol, 75 mM sackaros, 5 mM 4-(2-hydroxyet…

Representative Results

Figur 1 visar mitokondriell Ca2 + upptag mätningar i isolerade hjärt mitokondrier med hjälp av plattan läsare-baserade plattformen och den Ca2 + färga kalcium grön-5N. Under kontrollförhållanden (figur 1A), hjärt mitokondrier var upphängd i KCl buffert innehållande kalcium grön-5N och sedan utmanade med sekventiell pulser CaCl2 (5 μL av en 0,6 mM CaCl2 lösning) lagt till v…

Discussion

Här beskriver vi två olika metoder för att mäta mitokondriell Ca2 + tillströmning. Den plattan läsare-baserade kalcium grön-5N metod bildskärmar extramitochondrial Ca2 + nivåer och är en Ca2 + upptag som lämpar sig väl för mätningar i isolerade mitokondrier. Medan vi har visat representativa resultat från isolerade murina hjärt mitokondrier, kan denna analys lätt anpassas för mitokondrierna isolerade från vävnader med hög mitokondriell överflöd inklusive lever, skel…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av bidragsfinansiering från den amerikanska hjärtat Association (J.Q.K.).

Materials

Olympus FV1000 Laser Scanning confocal microscope Olympus FV1000
Synergy Neo2 Multimode microplate reader with injectors Biotek
Tissue Homogenizer Kimble 886000-0022
22 x 22 mm coverslips Corning 2850-22
96 well plate Corning 3628
6 well plate Corning 3506
Calcium Green-5N Invitrogen C3737
MitoTracker green FM Invitrogen M7514
Rhod-2, AM Invitrogen R1244
DMSO Invitrogen D12345
Pluronic F-127 Invitrogen P3000MP
D-Mannitol Sigma M9546
Sucrose EMD Millipore 8510
HEPES Sigma H3375
EGTA Sigma E8145
Potassium chloride Fisher BP366-500
Potassium phosphate monobasic Sigma P0662
Magnesium chloride Sigma M2670
Sodium pyruvate Sigma P2256
L-malic acid Sigma M1125
Calcium chloride Sigma C4901
Potassium acetate Fisher BP364-500
Adenosine 5′-triphosphate magnesium salt Sigma A9187
Phosphocreatine disodium salt Sigma P7936
Saponin Sigma S7900
Ru360 Calbiochem 557440

References

  1. Deluca, H. F., Engstrom, G. W. Calcium uptake by rat kidney mitochondria. P Natl Acad Sci USA. 47, 1744-1750 (1961).
  2. Lehninger, A. L., Rossi, C. S., Greenawalt, J. W. Respiration-dependent accumulation of inorganic phosphate and Ca ions by rat liver mitochondria. Biochem Biophys Res Co. 10, 444-448 (1963).
  3. Kwong, J. Q. The mitochondrial calcium uniporter in the heart: energetics and beyond. J Physiol. 595 (12), 3743-3751 (2017).
  4. Denton, R. M. Regulation of mitochondrial dehydrogenases by calcium ions. Biochim Biophys Acta. 1787 (11), 1309-1316 (2009).
  5. Jouaville, L. S., Pinton, P., Bastianutto, C., Rutter, G. A., Rizzuto, R. Regulation of mitochondrial ATP synthesis by calcium: evidence for a long-term metabolic priming. P Natl Acad Sci USA. 96 (24), 13807-13812 (1999).
  6. Haworth, R. A., Hunter, D. R. The Ca2+-induced membrane transition in mitochondria. II. Nature of the Ca2+ trigger site. Arch Biochem Biophys. 195 (2), 460-467 (1979).
  7. Hunter, D. R., Haworth, R. A. The Ca2+-induced membrane transition in mitochondria. I. The protective mechanisms. Arch Biochem Biophys. 195 (2), 453-459 (1979).
  8. Kwong, J. Q., Molkentin, J. D. Physiological and pathological roles of the mitochondrial permeability transition pore in the heart. Cell Metab. 21 (2), 206-214 (2015).
  9. Luongo, T. S., et al. The mitochondrial Na+/Ca2+ exchanger is essential for Ca2+ homeostasis and viability. Nature. 545 (7652), 93-97 (2017).
  10. De Stefani, D., Patron, M., Rizzuto, R. Structure and function of the mitochondrial calcium uniporter complex. Biochim Biophys Acta. 1853 (9), 2006-2011 (2015).
  11. Baughman, J. M., et al. Integrative genomics identifies MCU as an essential component of the mitochondrial calcium uniporter. Nature. 476 (7360), 341-345 (2011).
  12. De Stefani, D., Raffaello, A., Teardo, E., Szabo, I., Rizzuto, R. A forty-kilodalton protein of the inner membrane is the mitochondrial calcium uniporter. Nature. 476 (7360), 336-340 (2011).
  13. Pan, X., et al. The physiological role of mitochondrial calcium revealed by mice lacking the mitochondrial calcium uniporter. Nat Cell Biol. 15 (12), 1464-1472 (2013).
  14. Kwong, J. Q., et al. The Mitochondrial Calcium Uniporter Selectively Matches Metabolic Output to Acute Contractile Stress in the Heart. Cell Rep. 12 (1), 15-22 (2015).
  15. Luongo, T. S., et al. The Mitochondrial Calcium Uniporter Matches Energetic Supply with Cardiac Workload during Stress and Modulates Permeability Transition. Cell Rep. 12 (1), 23-34 (2015).
  16. Brown, D. A., et al. Expert consensus document: Mitochondrial function as a therapeutic target in heart failure. Nat Rev Cardiol. 14 (4), 238-250 (2017).
  17. Logan, C. V., et al. Loss-of-function mutations in MICU1 cause a brain and muscle disorder linked to primary alterations in mitochondrial calcium signaling. Nat Genet. 46 (2), 188-193 (2014).
  18. Lewis-Smith, D., et al. Homozygous deletion in MICU1 presenting with fatigue and lethargy in childhood. Neurol Genet. 2 (2), e59 (2016).
  19. Tosatto, A., et al. The mitochondrial calcium uniporter regulates breast cancer progression via HIF-1alpha. EMBO Mol Med. 8 (5), 569-585 (2016).
  20. Cardenas, C., et al. Selective Vulnerability of Cancer Cells by Inhibition of Ca(2+) Transfer from Endoplasmic Reticulum to Mitochondria. Cell Rep. 15 (1), 219-220 (2016).
  21. Dedkova, E. N., Blatter, L. A. Calcium signaling in cardiac mitochondria. J Mol Cell Cardiol. 58, 125-133 (2013).
  22. Florea, S. M., Blatter, L. A. The role of mitochondria for the regulation of cardiac alternans. Front Physiol. 1, 141 (2010).
  23. Palmer, A. E., Tsien, R. Y. Measuring calcium signaling using genetically targetable fluorescent indicators. Nat Protoc. 1 (3), 1057-1065 (2006).
  24. Bonora, M., et al. Subcellular calcium measurements in mammalian cells using jellyfish photoprotein aequorin-based probes. Nat Protoc. 8 (11), 2105-2118 (2013).
  25. Zima, A. V., Kockskamper, J., Mejia-Alvarez, R., Blatter, L. A. Pyruvate modulates cardiac sarcoplasmic reticulum Ca2+ release in rats via mitochondria-dependent and -independent mechanisms. J Physiol. 550 (Pt 3), 765-783 (2003).
  26. Kruger, N. J. The Bradford method for protein quantitation. Methods Mol Biol. 32, 9-15 (1994).
  27. Zazueta, C., Sosa-Torres, M. E., Correa, F., Garza-Ortiz, A. Inhibitory properties of ruthenium amine complexes on mitochondrial calcium uptake. J Bioenerg Biomembr. 31 (6), 551-557 (1999).
  28. Davidson, S. M., Duchen, M. R. Imaging mitochondrial calcium signalling with fluorescent probes and single or two photon confocal microscopy. Methods Mol Biol. 810, 219-234 (2012).
  29. Matlib, M. A., et al. Oxygen-bridged dinuclear ruthenium amine complex specifically inhibits Ca2+ uptake into mitochondria in vitro and in situ in single cardiac myocytes. J Biol Chem. 273 (17), 10223-10231 (1998).
  30. Chamberlain, B. K., Volpe, P., Fleischer, S. Inhibition of calcium-induced calcium release from purified cardiac sarcoplasmic reticulum vesicles. J Biol Chem. 259 (12), 7547-7553 (1984).
check_url/57225?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Maxwell, J. T., Tsai, C., Mohiuddin, T. A., Kwong, J. Q. Analyses of Mitochondrial Calcium Influx in Isolated Mitochondria and Cultured Cells. J. Vis. Exp. (134), e57225, doi:10.3791/57225 (2018).

View Video