Summary

חוץ-גופית של הכרומוזומים Spermatocytes חרקים

Published: October 22, 2018
doi:

Summary

ב פרוטוקול זה, אנו מתארים את הבחירה ואת הכנת תאים המתאימים עבור המיקרומניפולציה ושימוש micromanipulator פיזואלקטריים כדי למקם מחדש כרומוזומים בתוך התאים האלה.

Abstract

חוץ-גופית של כרומוזומים היה שיטה חיונית עבור מאירה את המנגנון על כרומוזום congression, פלך מחסום ו “אנאפאזה” כרומוזום תנועות, ואני כבר מפתח להבנת מה ששולט כרומוזום תנועות במהלך חלוקת התא. ביולוג מיומן ניתן להשתמש micromanipulator כדי לנתק את הכרומוזומים מ בכישור, מיקום מחדש של הכרומוזומים שבתא, וכדי להחיל כוחות על כרומוזומים באמצעות מחט זכוכית קטנים עם טיפ מצוין. בעוד לפליטת יכולים להתבצע כרומוזומים באמצעות שיטות אחרות כגון השמנה אופטי ושימושים אחרים של לייזר, נכון להיום, אין שיטה אחרת מאפשר את מיקום מחדש של רכיבי הסלולר בהיקף של עשרות למאות מיקרון עד אין נזק לתא .

את הבחירה ואת הכנה של תאים המתאימים חוץ-גופית של כרומוזומים, במיוחד המתארת את הכנת חגב קריקט spermatocyte הראשית תרבויות לשימוש הדמיה לחיות תאים, חוץ-גופית המתוארים כאן. בנוסף, אנו מראים הבנייה של מחט כדי לשמש להעברת כרומוזומים בתוך התא, השימוש micromanipulator פיזואלקטריים שבשליטת ג’ויסטיק עם מחט זכוכית מצורף, מיקום מחדש של הכרומוזומים בתאים החלוקה. תוצאה הדגימה מראה את השימוש micromanipulator לנתק כרומוזום מ זה פלך ב spermatocyte העיקרי וכדי למקם מחדש הכרומוזום בתוך התא.

Introduction

המיקרומניפולציה חשף חלקי המנגנון של כרומוזום congression, פלך מחסום ו “אנאפאזה” כרומוזום תנועות. הפרסום המוקדם ביותר המתאר את תוצאות המיקרומניפולציה ניסויים היה על ידי רוברט צ’יימברס1. צ’יימברס להשתמש micromanipulator מכני עם מחט זכוכית המצורף כדי לחקור את הציטופלסמה של מספר סוגי תאים שונים. למרבה הצער, שיטות ניגוד שמותר הפריט החזותי של כרומוזומים ורכיבים רבים אחרים התאית בתאים חיים לא היו זמינים בזמן, אז הניסויים של צ’יימברס לא יכולתי להראות את ההשפעות של שינוי מיקום כזה מרכיבי התא. Micromanipulations מוקדם ששינו את המיקום כרומוזום משמש את המנגנון צ’יימברס לטאטא את midzone פלך בתאים “אנאפאזה”, מראה כי מניפולציות כאלה יכול לשנות את המיקום של הזרועות כרומוזום ב “אנאפאזה” חרגול neuroblasts2 . Nicklas ושותפיו שלו היו הראשונים לבצע בסדר micromanipulations של כרומוזומים, מתיחה של כרומוזומים3, ניתוק אותם מן בכישור וגרימת ולהתפכחות3,4, ייצוב malorientation על-ידי החלת מתח הכרומוזומים5,6,7ולאחר מדידה. לכוחות המיוצר על ידי הצירים “אנאפאזה”8,9. עבודה אחרת על ידי המעבדה Nicklas הראה כי בגרגרים cytoplasmic יכול גם להיות מרומה10 כי centrosomes יכול למקם על ידי המיקרומניפולציה11. המיקרומניפולציה שימושי לא רק להעברת כרומוזומים ורכיבים אחרים התאית. מחט המיקרומניפולציה נקיה יכול לחתוך דרך זה mitotic פלך בתאים demembranated12 או יכול לשמש כדי להעלים את מעטפת הגרעין13. בנוסף, תאים סמוכים יכולים נכרכים על ידי המיקרומניפולציה14,15.

עם מגוון רחב של ניסויים מעניינים שאפשר לעשות שימוש חוץ-גופית, זה במבט ראשון מפתיע כי המיקרומניפולציה ניסויים נעשו על ידי ביולוגים כרומוזום מעט מאוד. סיבה אחת על מחסור זה הוא התאים בתרבית חלוקת mitotically נגזרות רקמות חוליות, משמשים בדרך כלל לימוד תנועות כרומוזום הן קשה מאוד micromanipulate. תאים אלה תרביות רקמה בדרך כלל יש שלד התא קורטיקלית כי “מפריע” של המיקרומניפולציה המחט, ואת כרומוזומים או לא נגיש באמצעות המחט או המחט חורק דרך התא, המוביל אל המוות ולמסמנים התא. אנחנו, ניסויים אחרים המשתמשים המיקרומניפולציה, מצאו תאים arthropod להיות מקובל המיקרומניפולציה. Arthropod spermatocytes מתפשטים בקלות תחת שכבה של שמן halocarbon, נראה כי שלד התא קורטיקלית הרבה פחות חזקים שבבסיס קרום התא במהלך חלוקת התא. לפיכך, האשכים arthropod לספק מקור טוב של meiotically, חלוקת תאים (spermatocytes), mitotically, חלוקת תאים (spermatogonia) עם כרומוזומים נגיש עבור המיקרומניפולציה. טורי חלוקתה של spermatocyte חגב קבוע במהלך מניפולציה חשף כי המחט לא חודר את קרום התא; קרום התא מתעוות סביב המחט (R.B. Nicklas, תקשורת אישית). Spermatocytes ממספר taxa חרק, עכביש היה micromanipulated בהצלחה, כולל חגבים, גמלי שלמה התפילה, זבובי פירות, קריין, צרצרים, spittlebugs, עש, אלמנה שחורה עכבישים, עכבישים מרתף, אריגה orb העכבישים והזבובים 3,7,17,18,19,20,21,22. התאים בתרבית, חלוקת mitotically מפני חרקים יכולים להיות micromanipulated. לדוגמה, הכרומוזומים. חגב neuroblasts בתרבות הראשי יש כרומוזום שניתן בקלות micromanipulated2,23. אנו חושדים כי קווי נגזר דרוזופילה תרבותי זמינים, חרקים אחרים יהיה גם micromanipulatable, למרות שלא בדקנו את הטכניקה עם תאים אלה. אנחנו נראה איך חלוקת תאים חגבים, צרצרים יכול להיות מוכנים חוץ-גופית. צרצרים בקרבת להשיג ברוב החנויות לחיות מחמד בכל עת של השנה. חגבים הן פתוח בעונת הקיץ בלבד אלא אם החוקר חייב גישה מושבה מעבדה, אבל המין בשימוש (Melanoplus sanguinipes) יש משוטחים בקלות תאים ולאחר זמן, קל לתפעל כרומוזומים.

סיבה נוספת למה המיקרומניפולציה ניסויים נעשו על ידי קומץ קטן של ביולוגים היא כי micromanipulators להזיז כרומוזומים טוב זמינים רק לעתים נדירות בשוק. מצאנו כי micromanipulator פיזואלקטריים שבשליטת ג’ויסטיק שולטת התנועה מחט ללא רטט, הסחף או השהיה בין התנועה ג’ויסטיק התנועה מחט, אך סוגים אחרים של סימולטורי יכול לדחוף גם בהצלחה כרומוזומים סביב בתא. Micromanipulators שעוצב על ידי25,אליס, ייסד26 הינם אידיאליים עבור חוץ-גופית של כרומוזומים, אף הם להשתמש בטכנולוגיה בוגרים. Micromanipulators פיזואלקטריים הם זמין כעת, בדרך כלל בשימוש אלקטרופיזיולוגיה; עם זאת, micromanipulators האלה אינם בדרך כלל מבוקר ג’ויסטיק. ג’ויסטיק הבקרה היא המפתח חלקה התנועות הדרושות המיקרומניפולציה מוצלחת, אז יש אפשרות לבנות ג’ויסטיק מותאם אישית כדי להפוך את micromanipulators פיזואלקטריים זמין כרגע עובד חוץ-גופית הכרומוזום. שבשליטת ג’ויסטיק פיזואלקטריים micromanipulators עובד בצורה הטובה ביותר יש שליטה עמדה ישירה, שבה תנועת מוט ההיגוי מתורגם ישירות תנועה מחט.

ניתן לבנות micromanipulator פיזואלקטריים החדש תוכנן מן החלקים הזמינים בשוק כי ניתן להחליף בקלות ומן כמה רכיבים קטנים המודפס תלת-ממדי, וזה עובד היטב עבור המיקרומניפולציה כרומוזום24. Micromanipulator יש רגישות מתכווננת, מיקום גס ידנית, ו אין רטט, הסחף או השהיה המחט התנועה, ואת תפקיד ישיר הבקרה של המחט. מדענים יכולים לבנות את micromanipulator באמצעות הוראות באינטרנט זמין24. להלן השיטות להכנת תרבות תא spermatocyte הראשי ועבור micromanipulating הכרומוזומים בתוך התאים בתרבות הזו.

Protocol

1. הכנה של תרבית תאים ראשיות חרקים Spermatocyte חוץ-גופית הכנת שקופית להשיג שקופית 75 מ”מ x 25 מ”מ זכוכית עם חור עגול של קוטר 20 מ מ לגזור במרכז השקופית.הערה: הם נקטפו מתוך גיליון אחד של חלון זכוכית לגודל של שקופית מזכוכית עם חור במרכז. לעבור coverslip 25 מ”מ x 25 מ”מ #1.5 של להבה מבער בונזן 2 s. …

Representative Results

איור 6 מראה של המיקרומניפולציה מדגם של 2 חגב סמוכים spermatocytes ראשי מספר דוגמאות של השימושים האפשריים של חוץ-גופית. ניסוי זה נעשה שימוש במיקרוסקופ ניגוד שלב הפוכה,. 0:00 (ערב לזמנים הנקובים הם ב- min:s) תמונת מראה שני התאים לפני המניפולציה. כרומוזום אחד בתא התחתון מ?…

Discussion

עם התרגול, זז הכרומוזומים בתא יכול להפוך לטבע שני. כי הן מספיק נוקשה מספיק דק שקצהו שהמחטים קשה להשיג “הכישרון של” בדיית, אבל היכולת הזו מגיע גם עם תרגול. מחטים כי הם כל כך טוב כי הם לעוות בעת העברת הנפט halocarbon לא יהיה שימושי עבור דוחפים הכרומוזומים בתא. מחטים. זה כל-כך קהה כי הטיפים גלויים, גדול…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

אנו מודים ג’סיקה הול לדיון בעל ערך שלה.

Materials

VWR micro cover glass VWR 48366 249 25×25 mm, no 1.5
Dow Corning High Vacuum Grease VWR AA44224-KT
KEL-F Oil #10 Ohio Valley Specialty Chemical 10189
Microdissecting Scissors, Stainless Steel Sigma-Aldrich S3271-1EA
Dumont #5 fine foreceps Fine Science Tools 11254-20
0.85 mm outer diameter, 0.65 mm inner diameter Pyrex glass tube  Drummond Scientific Custom order–call to request
Inverted, Phase contrast microscope with 10X or 16X low magnification objective and 60X or 100X high magnification objective Any brand
microforge either custom built or Narashige MF-900
micromanipulator either custom built or Burleigh PCS-6000 with custom piezo-controlling joystick PCS-6300

References

  1. Chambers, R. Microdissection studies II. The cell aster: a reversible gelation phenomenon. Journal of Experimental Zoology. 23 (3), 483-505 (1917).
  2. Carlson, J. G. Microdissection studies of the dividing neuroblast of the grasshopper, Chortophaga viridifasciata. Chromosoma. 5 (3), 199-220 (1952).
  3. Nicklas, R. B., Staehly, C. A. Chromosome micromanipulation. I. The mechanics of chromosome attachment to the spindle. Chromosoma. 21 (1), 1-16 (1967).
  4. Nicklas, R. B. Chromosome micromanipulation. II. Induced reorientation and the experimental control of segregation in meiosis. Chromosoma. 21 (1), 17-50 (1967).
  5. Nicklas, R. B., Koch, C. A. Chromosome micromanipulation. 3. Spindle fiber tension and the reorientation of mal-oriented chromosomes. Journal of Cell Biology. 43 (1), 40-50 (1969).
  6. Nicklas, R. B., Ward, S. C. Elements of error correction in mitosis: microtubule capture, release, and tension. Journal of Cell Biology. 126 (5), 1241-1253 (1994).
  7. Li, X., Nicklas, R. B. Mitotic forces control a cell-cycle checkpoint. Nature. 373 (6515), 630-632 (1995).
  8. Nicklas, R. B. Measurements of the force produced by the mitotic spindle in anaphase. Journal of Cell Biology. 97 (2), 542-548 (1983).
  9. Nicklas, R. B. The forces that move chromosomes in mitosis. Annual Review of Biophysics and Biophysical Chemistry. 17, 431-449 (1988).
  10. Nicklas, R. B., Koch, C. A. Chromosome micromanipulation. IV. Polarized motions within the spindle and models for mitosis. Chromosoma. 39 (1), 1026 (1972).
  11. Zhang, D., Nicklas, R. B. The impact of chromosomes and centrosomes on spindle assembly as observed in living cells. Journal of Cell Biology. 129 (5), 1287-1300 (1995).
  12. Nicklas, R. B., Lee, G. M., Rieder, C. L., Rupp, G. Mechanically cut mitotic spindles: clean cuts and stable microtubules. Journal of Cell Science. 94 (Pt 3), 415-423 (1989).
  13. Zhang, D., Nicklas, R. B. Chromosomes initiate spindle assembly upon experimental dissolution of the nuclear envelope in grasshopper spermatocytes. Journal of Cell Biology. 131 (5), 1125-1131 (1995).
  14. Nicklas, R. B. Chromosome distribution: experiments on cell hybrids and in vitro. Philosophical Transactions of the Royal Society of London B. 227 (955), 267-276 (1977).
  15. Paliulis, L. V., Nicklas, R. B. The reduction of chromosome number in meiosis is determined by properties built into the chromosomes. Journal of Cell Biology. 150 (6), 1223-1232 (2000).
  16. Church, K., Nicklas, R. B., Lin, H. P. Micromanipulated bivalents can trigger mini-spindle formation in Drosophilamelanogaster spermatocyte cytoplasm. Journal of Cell Biology. 103 (6), 2765-2773 (1986).
  17. Forer, A., Koch, C. Influence of autosome movements and of sex-chromosome movements on sex-chromosome segregation in crane fly spermatocytes. Chromosoma. 40 (4), 417-442 (1973).
  18. Camenzind, R., Nicklas, R. B. The non-random chromosome segregation in spermatocytes of Gryllotalpa hexadactyla. A micromanipulation analysis. Chromosoma. 24 (3), 324-335 (1968).
  19. Ault, J. G., Felt, K. D., Doan, R. N., Nedo, A. O., Ellison, C. A., Paliulis, L. V. Co-segregation of sex chromosomes in the male black widow spider Latrodectus mactans (Araneae, Theridiidae). Chromosoma. 126 (5), 645-654 (2017).
  20. Felt, K. D., Lagerman, M. B., Ravida, N. A., Qian, L., Powers, S. R., Paliulis, L. V. Segregation of the amphitelically attached univalent X chromosome in the spittlebug Philaenus spumarius. Protoplasma. 254 (6), 2263-2271 (2017).
  21. Golding, A. E., Paliulis, L. V. Karyotype, sex determination, and meiotic chromosome behavior in two pholcid (Araneomorphae, Pholcidae) spiders: implications for karyotype evolution. PLoS One. 6, e24748 (2011).
  22. Doan, R. N., Paliulis, L. V. Micromanipulation reveals an XO-XX sex determining system in the orb-weaving spider Neoscona arabesca (Walckenaer). Hereditas. 146 (4), 180-182 (2009).
  23. Paliulis, L. V., Nicklas, R. B. Micromanipulation of chromosomes reveals that cohesion release during cell division is gradual and does not require tension. Current Biology. 14 (23), 2124-2129 (2004).
  24. . . Biology Micromanipulator. DIY High Precision Micromanipulator. , (2018).
  25. Ellis, G. W. Piezoelectric micromanipulators. Science. 138 (3537), 84-91 (1962).
  26. Ellis, G. W., Begg, D. A., Zimmerman , . A. M., Forer, A. Chromosome micromanipulation studies. Mitosis/Cytokinesis. , 155-179 (1981).
  27. Powell, E. O. A microforge attachment for the biological microscope. Journal. Royal Microscopical Society. 72 (4), 214-217 (1953).
  28. Alsop, G. B., Zhang, D. Microtubules continuously dictate distribution of actin filaments and positioning of cell cleavage in grasshopper spermatocytes. Journal of Cell Science. 117 (Pt 8), 1591-1602 (2004).
  29. Zhang, D., Nicklas, R. B. Anaphase’ and cytokinesis in the absence of chromosomes. Nature. 382, 466-468 (1996).
check_url/57359?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lin, N. K., Nance, R., Szybist, J., Cheville, A., Paliulis, L. V. Micromanipulation of Chromosomes in Insect Spermatocytes. J. Vis. Exp. (140), e57359, doi:10.3791/57359 (2018).

View Video