Summary

Lys arks fluorescens mikroskopi å ta 4-dimensjonale bilder av effektene av modulerende skjæring Stress på utvikle sebrafisk hjertet

Published: August 10, 2018
doi:

Summary

Her presenterer vi en protokoll for å visualisere utvikle hjerter i sebrafisk i 4-dimensjoner (4-D). 4-D tenkelig, via lys arks fluorescens mikroskopi (LSFM), tar 3-dimensjonale (3D) bilder over tid å rekonstruere utvikle hjerter. Vi viser kvalitativt og kvantitativt at skjæring stress aktiverer endocardial hakk signalering under kammeret utvikling, som fremmer cardiac trabeculation.

Abstract

Hemodynamic krefter oppleves av hjertet innflytelse hjerte utvikling, spesielt trabeculation, som danner et nettverk av forgrening utvekster fra myokard. Genetisk programmet mangler i hakket signalering cascade er involvert i ventrikkel defekter som venstre ventrikkel Non-komprimering kardiomyopati eller Hypoplastic venstre hjertet syndrom. Bruker denne protokollen, kan det fastslås at skjæring stress drevet trabeculation og hakk signalene er knyttet til hverandre. Bruk lys arks fluorescens mikroskopi, var visualisering av utvikle sebrafisk hjertet mulig. I dette manuskriptet ble det vurdert om hemodynamic modulerer initiering av trabeculation via hakk signalering og dermed påvirke kontraktile funksjon oppstår. For kvalitativ og kvantitativ skjæring stress analyse, 4-D (3-D + tid) bildene ble anskaffet under sebrafisk cardiac morphogenesis, og integrert lys arks fluorescens mikroskopi med 4-D synkronisering erobret ventrikkel bevegelse. Blod viskositet ble redusert via gata1a– morpholino oligonucleotides (MO) mikro-injeksjon redusere skjæring stress, dermed ned-regulere hakk signalering og dempe trabeculation. Co injeksjon av Nrg1 mRNA med gata1a MO reddet hakk-relaterte gener for å gjenopprette trabeculation. For å bekrefte skjæring stress drevet hakk signalering påvirker trabeculation, cardiomyocyte sammentrekning arrestert videre via tnnt2a-MO å redusere hemodynamic styrker, dermed ned-regulere hakk målet gener å utvikle en ikke-trabeculated myokard. Endelig ble bekreftelse uttrykk mønstre av skjæring stress-responsive hakk gener utført ved å utsette endotelceller til pulsatile flyt. Dermed avdekket 4-D lys arks mikroskopi hemodynamic styrker underliggende hakk signalisering og trabeculation med klinisk relevans til ikke-komprimering kardiomyopati.

Introduction

Biomekaniske styrker, som hemodynamic skjæring stress, er nært forbundet med hjerte morphogenesis. Svar på hemodynamic skjær krefter utvikle hjerteinfarkt rygger og grooves i en bølge-lignende trabekulært nettverk i tråd med retningen til den skjær stresset over atrioventrikulær (AV) ventil1. CARDIAC trabeculation er nødvendig å øke kontraktile funksjon og hjerteinfarkt masse2. Mutasjoner i hakk signalnettverk trasé føre medfødt hjertefeil hos mennesker og andre virveldyr3. For eksempel har gata1a4 og tnnt2a5 morpholino oligonucleotides (MO) vist seg å redusere erythropoiesis, mens erytropoietin mRNA (EPO)6 og Isoproterenol (ISO)7 øke rødt blod celler og hjertefrekvens vegg henholdsvis, og derfor skjæring stress (WSS). Videre ErbB2 signalnettverk, nedstrøms av hakk, fremmer cardiomyocyte spredning og differensiering å generere kontraktile kraft, som igjen aktiverer hakk signalering8,9. Det anbefales at skjæring stress styrer hakk signalering drevet trabeculation for ventrikkel utvikling. Foreløpig det er mange studier som forsøker å videre forstå genetisk programmering hendelser som førte til medfødt hjerte feil (CHD)10,11,12, men lite undersøker hvordan mekaniske krefter innflytelse danner sentrum.

For å undersøke de mekaniske kreftene må opptrer på endocardium, nær observasjon i løpet av utviklingsperioden implementeres. Men er det utfordrende å få gode bilder av i vivo slo eksempler på grunn av inherence av tradisjonelle mikroskopi13. For å observere utviklingen over tid i et utvalg, må fysiske snitting og flekker, derfor oppstår13,14,15. Selv om AC confocal mikroskopi er mye brukt til bilde 3-D strukturen prøver14,16, er disse imaging systems oppkjøpet fortsatt begrenset av lav skanning fart.

Lys arks fluorescens mikroskopi (LSFM) er en unik tenkelig teknikk som lar effekten av in vivo dynamiske hendelser med lang arbeider avstand13. Denne teknikken bruker en lys arks fluorescerende mikroskopi til optisk delen en eksempel17. På grunn av belysning av bare et tynt ark av lys på prøven er det en reduksjon i Foto-bleking og foto toksisitet13,18. Det store feltet og lenge arbeidsavstand gir store prøver å holde intakt som de er fotografert13,14,17. Lav forstørrelsen gir et større område å avbildes, mens langt arbeidsavstand gir tykkere prøver å bli fotografert uten akkord signal-til-støy-forhold. Mange grupper har brukt LSFM til bildet hele embryo17, hjerner14,18, muskler og hjerter19 blant andre vev, viser de ulike typene prøver som kan avbildes.

Selv om tidligere forskning viste redusert hemodynamic skjæring kraft ved å skjule sporene innstrømning eller utstrømming av sebrafisk hjertet, er informasjonen utelukkende kvalitative. Det resulterer i en unormal tredje kammeret, svekket cardiac løkker og svekket ventil formasjon20. 4-D LSFM bilder gir et nytt perspektiv inn i måten hemodynamic skjær krefter påvirker utviklingen av hjerte vev. Disse mekaniske krefter kan aktivere kraft-sensitive signalnettverk molekyler og indusere dannelsen av den trabekulært rygger. På grunn av det ekstra tidsaspektet av 4-D imaging er man i stand til å spore endringer i utviklingen i sanntid, noe som kan føre til nye avsløringer som hadde gått ubemerket tidligere. Sebrafisk er en ideell modell for imaging fordi forskere kan observere en hele vertebrate dyr versus bare celle-celle interaksjoner. Oksygen kan også diffus gjennom hele fosteret, hvilke innrømmer å skje uten avhengig av vaskulære systemet, i motsetning til i pattedyr utvikling. Selv om sebrafisk hjertet mangler lunge organer, som krever en fire-chambered hjerte, er det mange cardiac gener som er bevart mellom sebrafisk og mennesker21.

I dette manuskriptet beskriver vi hvordan du bruker lys arks fluorescens mikroskopi for å image de utvikling trabeculae i sebrafisk hjerter i ulike situasjoner. Først injeksjon gata1a4 eller tnnt2a5 MOs ble brukt til lavere blod viskositet, og derfor WSS. Morfologi av hjertet ble deretter innspilt. I en egen gruppe av fisk, vi økt i WSS ved å tilsette EPO mRNA6 eller isoproterenol7 og observerte resultatene. Vi har også gjennomført en celle studie med forskjellige pulsatile eller oscillasjon strømningshastigheter. Etter bildebehandling hver gruppe, fant vi at WSS kjente av endocardium via hakk signalering starter trabeculation.

Protocol

Metodene nedenfor ble utført i samsvar med UTA og UCLA IACUC. Disse eksperimentelle gruppene ble brukt med transgene Tg(cmlc2:gfp), mutanter wea (svak atrium) eller n (cloche) : (a) vill-type (WT) kontroll, (b) gata1a MO og (c) tnnt2a MO injeksjoner (tabell 1). Modell navn Modifisert g…

Representative Results

LSFM ble brukt i dette manuskriptet for å skaffe 2D og 3D-bilder med høy oppløsning. Som vist i figur 1A og 1B, leder belysning linsen lys arket på prøven. På grunn av thinness av lys arket lyser bare et enkelt fly. Gjenkjenning objektivet er plassert vinkelrett på belysning linsen og er fokusert på opplyst flyet (figur 1B). Lys arket på belysning objektiv skanner deretter prøven fra venstre til høyre …

Discussion

I denne protokollen, har vi vist at 4-D bildebehandling kan brukes til å spore utviklingen av et trabekulært nettverk svar på endringer i biomekaniske styrker. Spesielt starter skjær stress erfarne av endotelceller hakket signalering cascade, som igjen fremmer trabeculation. I dette manuskriptet har vi vist at (1) gata1a MO injeksjon redusert hematopoiesis og derfor det redusert veggen skjæring stress, (2) tnnt2a MO injeksjon hemmet ventrikulær kontraktile funksjonen for å redusere veggen skjæri…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne ønsker å uttrykke takknemlighet til William Talbot fra Stanford University for å gi menneskelige Nrg1 cDNA og Deborah Yelon fra UCSD for å gi den Wea mutanter. Forfatterne vil også gjerne takke Cynthia Chen for å hjelpe med bildeopptak. Denne studien ble støttet av tilskudd NIH HL118650 (til T.K. Hsiai), HL083015 (til T.K. Hsiai), HD069305 (til NC Chi og T.K. Hsiai.), HL111437 (til T.K. Hsiai og NC Chi), HL129727 (til T.K. Hsiai), T32HL007895 (til R.R. Sevag Packard), HL 134613 (å V. Messerschmidt) og Universitetet i Texas System stjerner finansiering (til J. Lee).

Materials

Clontech Hifi PCR pre-mix  Takara  639298 PCR mastermix
1.1.1.1, 1.1.1.2, 1.1.1.5, 1.1.2.1, 3.1.4
Human Nrg1 cDNA Gift from William Talbot, Stanford University, Stanford, California, USA N/A Used for trabeculation rescue
1.1.1.3, 1.1.1.4, 1.1.2.1
CFX Connect™ Real-Time PCR Detection System Bio-Rad 1855201 PCR Machine
1.1.1.5, 1.1.1.6, 1.1.2.2, 1.1.3.2
pCS2+ GE Health Plasmid used to synthesize mRNA
1.1.2.1, 1.1.2.4, 1.1.2.5
Nucleospin purification kit   Clontech 740609.25 DNA Purification
1.1.2.3, 1.1.2.4, 1.1.6.2
T4 DNA ligase  Clontech 2011A PCR Ligation solution
1.1.2.5
Stellar competent cells Clontech 636763 E. coli cells used for transformation
1.1.2.6, 1.1.3.1, 1.1.3.2
Lipofectamine 2000 transfection reagent Life Technologies 11668027 Transfection reagent
1.1.4
mMessage SP6 kit Invitrogen AM1340 Kit used to synthesize mRNA
1.1.6.3
Aurum Total RNA Mini Kit Bio-Rad 7326820 Purifies RNA 
1.1.6.4, 3.1.2
GeneTools 4.3.8 GeneTools N/A Software for primer design
1.2.1, 3.1.3
EPO cDNA Creative Biogene CDFH006026 Increases WSS
1.2.2, 1.2.3, 1.1.7
AG1478 Sigma-Aldrich  T4182 ErbB inhibitor
1.3.1
E3 medium To grow embryos
1.3.1, 1.3.2, 5.1.5
DAPT Sigma-Aldrich  D5942 γ-secretase inhibitor
1.3.2
Agarose  Sigma-Aldrich  A9539 Used for mounting embryos
2.1.1.1
ORCA-Flash4.0 LT Digital CMOS camera Hamamatsu Photonics C11440-42U Used to capture Images
2.1.1.2, 2.1.1.3
Amira Software FEI Software N/A Visualized and Analysed images into 3D, and 4D
2.1.5.1.1-2.1.5.2.8
Tricaone mesylate  Sigma-Aldrich  886-86-2 Used to humanely sedated or sacrifice embryos
3.1.1
iScript cDNA Synthesis Kit Bio-Rad 1708890 Synthesizes cDNA
3.1.2
Eppendorf 5424 microcentrifuge Eppendorf 05-400-005 Microcentrifuge
4.1.1.3
GI254023X Sigma-Aldrich  260264-93-5 ADAM10 inhibitor
4.1.2, 4.1.3 
Isoprenaline hydrochloride Sigma-Aldrich  I5627 Isoproterenol increases WSS
5.1.5
MATLAB Mathworks N/A Cardiac mechanics analysis

References

  1. Lee, J., et al. Moving domain computational fluid dynamics to interface with an embryonic model of cardiac morphogenesis. PLoS One. 8 (8), e72924 (2013).
  2. Peshkovsky, C., Totong, R., Yelon, D. Dependence of cardiac trabeculation on neuregulin signaling and blood flow in zebrafish. Dev Dyn. 240 (2), 446-456 (2011).
  3. High, F. A., Epstein, J. A. The multifaceted role of Notch in cardiac development and disease. Nat Rev Genet. 9 (1), 49-61 (2008).
  4. Galloway, J. L., Wingert, R. A., Thisse, C., Thisse, B., Zon, L. I. Loss of Gata1 but Not Gata2 Converts Erythropoiesis to Myelopoiesis in Zebrafish Embryos. Developmental Cell. 8 (1), 109-116 (2005).
  5. Chi, N. C., et al. Cardiac conduction is required to preserve cardiac chamber morphology. Proceedings of the National Academy of Sciences. 107 (33), 14662 (2010).
  6. Paffett-Lugassy, N., et al. Functional conservation of erythropoietin signaling in zebrafish. Blood. 110 (7), 2718 (2007).
  7. De Luca, E., et al. ZebraBeat: a flexible platform for the analysis of the cardiac rate in zebrafish embryos. Scientific Reports. 4, 4898 (2014).
  8. Liu, J., et al. A dual role for ErbB2 signaling in cardiac trabeculation. Development. 137 (22), 3867-3875 (2010).
  9. Samsa, L. A., et al. Cardiac contraction activates endocardial Notch signaling to modulate chamber maturation in zebrafish. Development. 142 (23), 4080-4091 (2015).
  10. Li, Y., et al. Global genetic analysis in mice unveils central role for cilia in congenital heart disease. Nature. 521, 520 (2015).
  11. Sifrim, A., et al. Distinct genetic architectures for syndromic and nonsyndromic congenital heart defects identified by exome sequencing. Nature Genetics. 48, 1060 (2016).
  12. Hu, Z., et al. A genome-wide association study identifies two risk loci for congenital heart malformations in Han Chinese populations. Nature Genetics. 45, 818 (2013).
  13. Huisken, J., Stainier, D. Y. R. Selective plane illumination microscopy techniques in developmental biology. Development (Cambridge, England). 136 (12), 1963-1975 (2009).
  14. Panier, T., et al. Fast functional imaging of multiple brain regions in intact zebrafish larvae using Selective Plane Illumination Microscopy. Frontiers in Neural Circuits. 7, 65 (2013).
  15. Lee, E., et al. ACT-PRESTO: Rapid and consistent tissue clearing and labeling method for 3-dimensional (3D) imaging. Scientific Reports. 6, 18631 (2016).
  16. Kelley, L. C., et al. Live-cell confocal microscopy and quantitative 4D image analysis of anchor-cell invasion through the basement membrane in Caenorhabditis elegans. Nature Protocols. 12, 2081 (2016).
  17. Lee, J., et al. 4-Dimensional light-sheet microscopy to elucidate shear stress modulation of cardiac trabeculation. The Journal of Clinical Investigation. 126 (5), 1679-1690 (2016).
  18. Lavagnino, Z., et al. 4D (x-y-z-t) imaging of thick biological samples by means of Two-Photon inverted Selective Plane Illumination Microscopy (2PE-iSPIM). Scientific Reports. 6, 23923 (2016).
  19. Huisken, J., Swoger, J., Del Bene, F., Wittbrodt, J., Stelzer, E. H. K. Optical Sectioning Deep Inside Live Embryos by Selective Plane Illumination Microscopy. Science. 305 (5686), 1007 (2004).
  20. Hove, J. R., et al. Intracardiac fluid forces are an essential epigenetic factor for embryonic cardiogenesis. Nature. 421 (6919), 172-177 (2003).
  21. Bakkers, J. Zebrafish as a model to study cardiac development and human cardiac disease. Cardiovascular Research. 91 (2), 279-288 (2011).
  22. BioRad. . General Protocol for Western Blotting. 6376, (2018).
  23. GeneTools. . Gene Tools Oligo Design Website. , (2018).
  24. Mullins, M. . Zebrafish Course. , (2013).
  25. Grenander, U. . Probability and Statistics: The Harald Cramér Volume. , (1959).
  26. Fei, P., et al. Cardiac Light-Sheet Fluorescent Microscopy for Multi-Scale and Rapid Imaging of Architecture and Function. Scientific Reports. 6, 22489 (2016).
  27. Liebling, M., Forouhar , A. S., Gharib, M., Fraser, S. E., Dickinson, M. E. Four-dimensional cardiac imaging in living embryos via postacquisition synchronization of nongated slice sequences. Journal of Biomedical Optics. 10 (5), (2005).
  28. Adeoye, A. A., et al. Combined effects of exogenous enzymes and probiotic on Nile tilapia (Oreochromis niloticus) growth, intestinal morphology and microbiome. Aquaculture. 463, 61-70 (2016).
  29. Matthews, M., Varga, Z. M. Anesthesia and Euthanasia in Zebrafish. ILAR Journal. 53 (2), 192-204 (2012).
  30. Singleman, C., Holtzman, N. G. Heart Dissection in Larval, Juvenile and Adult Zebrafish, Danio rerio. Journal of Visualized Experiments : JoVE. (55), e3165 (2011).
  31. Li, R., et al. Disturbed Flow Induces Autophagy, but Impairs Autophagic Flux to Perturb Mitochondrial Homeostasis. Antioxidants & Redox Signaling. 23 (15), 1207-1219 (2015).
  32. Li, R., et al. Shear Stress-Activated Wnt-Angiopoietin-2 Signaling Recapitulated Vascular Repair in Zebrafish Embryos. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 34 (10), 2268-2275 (2014).
  33. Baek, K. I., et al. Flow-Responsive Vascular Endothelial Growth Factor Receptor-Protein Kinase C Isoform Epsilon Signaling Mediates Glycolytic Metabolites for Vascular Repair. Antioxidants & Redox Signaling. 28 (1), 31-43 (2018).
  34. Huang, C. J., Tu, C. T., Hsiao, C. D., Hsieh, F. J., Tsai, H. J. Germ-line transmission of a myocardium-specific GFP transgene reveals critical regulatory elements in the cardiac myosin light chain 2 promoter of zebrafish. Developmental Dynamics. 228 (1), 30-40 (2003).
  35. Vermot, J., et al. Reversing blood flows act through klf2a to ensure normal valvulogenesis in the developing heart. PLoS Biol. 7 (11), (2009).
  36. Grego-Bessa, J., et al. Notch signaling is essential for ventricular chamber development. Dev Cell. 12 (3), 415-429 (2007).
  37. Berdougo, E., Coleman, H., Lee, D. H., Stainier, D. Y. R., Yelon, D. Mutation of weak atrium/atrial myosin heavy chain disrupts atrial function and influences ventricular morphogenesis in zebrafish. Development. 130 (24), 6121 (2003).
  38. Arnaout, R., et al. Zebrafish model for human long QT syndrome. Proc Natl Acad Sci U S A. 104 (27), 11316-11321 (2007).
  39. Chi, N. C., et al. Genetic and physiologic dissection of the vertebrate cardiac conduction system. PLoS Biol. 6 (5), e109 (2008).
  40. Liao, W., et al. The zebrafish gene cloche acts upstream of a flk-1 homologue to regulate endothelial cell differentiation. Development. 124 (2), 381-389 (1997).
  41. Stainier, D. Y., Weinstein, B. M., Detrich, H. W., Zon, L. I., Fishman, M. C. Cloche, an early acting zebrafish gene, is required by both the endothelial and hematopoietic lineages. Development. 121 (10), 3141-3150 (1995).
  42. Santi, P. A. Light Sheet Fluorescence Microscopy: A Review. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 59 (2), 129-138 (2011).
  43. Engelbrecht, C. J., Stelzer, E. H. Resolution enhancement in a light-sheet-based microscope (SPIM). Optics Letters. 31 (10), 1477-1479 (2006).
check_url/57763?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Messerschmidt, V., Bailey, Z., Baek, K. I., Ding, Y., Hsu, J. J., Bryant, R., Li, R., Hsiai, T. K., Lee, J. Light-sheet Fluorescence Microscopy to Capture 4-Dimensional Images of the Effects of Modulating Shear Stress on the Developing Zebrafish Heart. J. Vis. Exp. (138), e57763, doi:10.3791/57763 (2018).

View Video