Summary

데이터베이스 가이드-cytometry 골 골수성 세포 성숙의 평가 위한

Published: November 03, 2018
doi:

Summary

MDS 진단 기준 형태학 또는 비 유익한 세포 유전학의 부재에 어렵습니다. MFC는 MDS 진단 과정을 구체화 도움이 될. 임상 연습에 유용 될, MFC 분석 기반으로 해야 합니다 매개 변수 충분 한 특이성 및 감도, 그리고 데이터 다른 연산자 사이 재현 되어야 합니다.

Abstract

프랑스 Cytometry 협회 (AFC)에서 시작 하는 작업 그룹 프랑스에서 골수성 질환 진단을 위한 multiparameter cytometry (MFC) 응용 프로그램을 조화 하기 위하여 개발 되었다. 여기에 제시 된 프로토콜 6 프랑스 진단 실험실 (대학 병원의 세인트 에티엔느, 그 르노 블, 클레르몽페랑, 니스, 그리고 릴과 인 바울은 Calmettes에 합의 하 고 2013 년 9 월과 11 월 2015 사이의 적용 했다 마르세유) 골 수 샘플 준비 및 데이터 수집의 표준화를 허용. 3 성숙 데이터베이스 neutrophil, monocytic, 및 erythroid 계보 골 수 기증자가 “건강 한” 개인 (개인 조 혈 질환의 증거 없이)에서 함께 개발 되었다. 각 골수성 혈통에 대 한 분석의 강력한 방법 일상적인 진단 사용 하기 위해 적용 해야 합니다. 새로운 경우 동일한 방식으로 분석 하 고 일반적인 데이터베이스와 비교 수 있습니다. 따라서, 양적 및 질적 phenotypic 이상이 확인 될 수 있다 고 정상적인 골 수 샘플의 데이터와 비교 하는 2SD 위에 병 리의 지표로 고려 되어야 한다. 주요 제한은 hybridoma 기술에 기반 하 고 현재 임상 진단에 사용 되는 방법으로 얻은 단일 클론 항 체를 사용 하 여 달성 하는 데이터 간의 높은 가변성입니다. 데이터 취득 기술 유효성 검사에 대 한 기준을 설정 MDS 진단에 대 한 MFC의 유틸리티를 개선할 수 있습니다. 이러한 기준의 설립 데이터베이스에 대 한 분석을 요구 한다. 데이터 분석에서 조사 주관의 감소는이 방법의 중요 한 장점입니다.

Introduction

Phenotypic 마커 골수성 세포에서 발생 하는 MDS 개시 및 진행 하는 동안 dysplastic 변화에 특정의 부재, 새로운 접근의 성숙 경로 (변경 된 식의 평가에 따라 최근 몇 년 동안에서 제안 되었습니다. 성숙한 골수성 세포의 생산 동안 골수성 항) 또는 다른 종류의 세포 골 수 (BM) 내에서 비정상적인 분포의 세포 구획1,2.

이 문서는 BM 골수성 세포 구획 형성 증후군 (MDS) 또는 다른 골수성 혈액 질병에 관련 된에서 dysplastic 변화를 감지 하기 위해 MFC의 표준화 된 응용 프로그램에 대 한 새 메서드를 제공 합니다. 이 연구는 또한 성숙 데이터베이스를 사용 하 여 MFC 데이터 분석에 대 한 유틸리티를 보여 줍니다.

샘플 준비 절차, 데이터 수집, 데이터베이스를 사용 하 여 분석의 표준화 관련 BM 골수성 세포에서 dysplastic 변화에 가장 관련성이 높은 phenotypic 이상 식별을 수 있습니다. 따라서, 잘 분류 하 고 잘 인식 형식 (자동 인구 구분 (AP) 다이어그램, 히스토그램, 점 작)에 따라 통계적으로 선택한 하위 집합은 이후 분석에 사용할 수 있는 분석 전략 개발에 필요한 반올림합니다. MDS에서 강력한 phenotypic 이상이 발견 경우에 함께 또는 최소한의 형태 발육 이상 없이 cytogenetic aberrancies 없이 진단을 쉽게 것 이다. 차별 매개 변수 immunophenotypic 패널의 감소에 대 한 허용의 현재 점수2, 임상 병 리 실험실에서 그들의 적용을 허용 단순화할 수 있습니다.

이 방법으로 MDS 진단3신호 cytometry 데이터의 주관적인 해석을 제한 합니다. 이 단계는 처리 흐름 데이터4를 분석 하기 위한 자동화 도구 개발을 위한 전제 조건입니다.

MDS에 있는 spliceosome 돌연변이를 MDS 형 특정 epigenetic 한정자와 협력 하는 클론 조 혈 줄기 세포 (HSC) 무질서의 이질적인 그룹으로 구성 됩니다. 그것은 지금, HSC 돌연변이, 함께 다른 메커니즘 MDS 이상, 정도 벗어난 면역 중재 염증 등 악성 HSCs는 BM의 실질 microenvironment 사이 상호 작용에에서 관련 된 알려져 있다. 그러나, 이러한 메커니즘 제대로 이해 남아 있다. MDS의 넓은 임상과 생물학이 도전 진단과 최적의 치료의 선택은. 지난 10 년간에서 여러 연구 MFC는 종종 더 많은 형태, 기술적, 경제적 제약 보다 발육 이상2 감지에 민감한 어렵게이 기술을 표준화, 결과 따라 자주 하는 3통역 경험입니다. 또한, 그것은 불분명 얼마나 MFC는 다른 비 클론 BM에서 경우 또는 최소한의 형태 발육 이상 없이 및 cytogenetic 변칙의 부재 또는 hypocellular MDS, 낮은 폭발 카운트와 같은 경계선 경우 MDS 향해 균형 팁 수 있습니다. 골 수 오류 장애 (., aplastic 빈 혈). 그것은 또한 급성 골수성 백혈병 (AML) 폭발의 초과 MDS의 경계선 경우를 구분 하기 어려운 남아 있다. 모든 이러한 이유로, MFC 테스트 MDS 최종 진단에 임상 지침 통합 하지 않습니다. 2011 년에 미국 국립 종합 암 네트워크 (NCCN) CD34 + 세포의 비율, 발작 야행성 hemoglobinuria 클론의 검색 및 hypocellular MDS5에서 세포 독성 T 세포 클론의 존재의 추정에 대 한 MFC를 권장. 이러한 두 가지 후자의 경우는 또한 임상 데이터 면역 치료6이러한 환자 들의 좋은 반응을 보여왔다 때문에 치료 목표를 포함 한다. 국제 작업 그룹 (IWG) 권고를 인용 2017 NCCN 가이드라인, 나열 MDS 진단 하지만 모든 사양6하지 않고 공동 기준 사이에서 MFC에 의해 탈 선 immunophenotyping 탐지. 또한, 최근 발표 된 WHO 분류 규정 MFC 결과 혼자 결정적인 형태학 및 cytogenetic 데이터7의 부재에서 MDS의 기본 진단 설정 충분 하지 않습니다. 그러나 MFC 골수성 세포의 dysregulation 성숙 패턴을 보여주는 고 질병 과정에서 특정 시간에 환자에 대 한 정상에서 “거리”를 측정 하는 추가 테스트로 사용할 수 있습니다.

이 방법은 MFC immunophenotyping를 사용 하 여 MDS 또는 dysplastic 이상으로 다른 골수성 질환에서 진단 구체화 BM 골수성 세포에서 형성 평가에 관심이 있는 임상 실험실에서 적용 됩니다.

Protocol

아래 나열 된 프로토콜은 “위원회 회의 드 보호 des Personnes” (독립적인 윤리 위원회)에 의해 승인 되었습니다 Sud Est 1 대학 병원의 세인트 에티엔느, 프랑스에서. 1. Cytometer 설정 참고: cytometer 설정 EuroFlow 절차 “EuroFlow 표준 운영 프로토콜 (SOP) 계기 설치 및 보상 (https://www.euroflow.org/usr/pub/protocols.php)에 따라 프랑스 흐름 권장 사항에 따라 수행 했다. <stro…

Representative Results

K-EDTA 응고 제에는을 걷이 54 BM 샘플 연구에 포함 됐다. MFC 데이터는 환자에 대 한 어떤 정보가 없을 경우에 분석 되었다. 회고전 연구 BM 샘플 (5 남성 및 47.4 [35-48]의 중간 나이 2 여성, 11 (8 남성과 57.9 [35-72]의 중간 나이로 3 여성) 조 혈 질환의 증거 없는 개인과 다양 한 36 경우 7 건강 한 기증자 로부터 나타났다 병 적인 조건: 1 경우 빈 혈과 낮은 크 수준, 3의 경우 빈 혈과 높…

Discussion

BM aspirate의 품질 최종 결과에 영향을 줄 수 있습니다. BM aspirate의 hemodilution 창시자의 부재로 인해 성숙의 다른 단계에 있는 세포 또는 선구자 세포의 분포를 왜곡 수 있습니다. 아마 채용 방법 lysing 대량 흐름 cytometric 분석에서 hemodilution에 대 한 BM aspirates의 정상화에 도움이 됩니다. 또한, cytometry 의해 BM 골수성 dysplasia의 평가 위한 중요 한 단계는 샘플 처리 및 얼룩, 데이터 수집 및 해석<sup class="xre…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

이 연구에 사용 된 항 체는 BD 생물 과학에 의해 제공 되었다. 저자는 그들의 동료, 박사 Pascale Flandrin-Gresta에서 부의 분자 생물학, 혈액학 연구소, 대학 병원의 세인트 에티엔느, 프랑스, NGS 데이터의 두 번째에 대 한 해석에 대 한 전문성을 제공 감사 하 고 싶습니다. MDS의 경우입니다. 저자는이 연구에 참여 하도록 그들의 계약에 대 한 건강 한 기증자와 환자에 대 한 그들의 관심과이 연구에 참여 한 임상 hematologists에 대 한 감사. 저자는 또한 간행물에 대 한 재정 지원에 대 한 “Les Amis de 레미” 재단을 감사 하 고 싶습니다.

Materials

BD FACSCanto II flow-cytometer BD Biosciences, CA, USA SN: V33896301336 3-laser, 4-2-2 configuration, Filters and mirrors details: https://www.bdbiosciences.com/documents/BD_FACSCanto_II_FilterGuide.pdf
Awel C48-R Centrifuge AWEL Industries, FR SN: 910120016; Model No: 320002001 low speed centrifuges; capacity 60 FACS tubes
Pipetts of 10µl and 200µl
Pasteur pipettes
15 mL Falcon tubes
polypropylene tube for FACS
Mouse Anti-Human HLA-DR BD Biosciences, CA, USA 655874 clone L243
Mouse BALB/c IgG2a, κ
Fluorochrome Horizon V450
(Ex max 404 nm/
Em max 448 nm)
Mouse Anti-Human CD45 BD Biosciences, CA, USA 560777 clone HI30
Mouse IgG1, κ
Fluorochrome Horizon V500 (Ex max 415 nm/
Em max 500 nm)
Mouse Anti-Human CD16 BD Biosciences, CA, USA 656146 clone CLB/fcGran1 Mouse BALB/c IgG2a, κ
Fluorochrome FITC
(Ex max 494 nm/
Em max 520 nm)
Mouse Anti-Human CD13 BD Biosciences, CA, USA 347406 clone L138
Mouse BALB/c X C57BL/6 IgG1, κ
Fluorochrome PE
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD34 BD Biosciences, CA, USA 347222 clone 8G12
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome PerCP-Cy5.5
(Ex max 482 nm/
Em max 678 nm)
Mouse Anti-Human CD117 BD Biosciences, CA, USA 339217 clone 104D2
Mouse BALB/c IgG1
Fluorochrome PE-Cy7
(Ex max 496 nm/
Em max 785 nm)
Mouse Anti-Human CD11b BD Biosciences, CA, USA 333143 clone D12
Mouse BALB/c IgG2a, κ
D12, Fluorochrome APC
(Ex max 650 nm/
Em max 660nm
Mouse Anti-Human CD10 BD Biosciences, CA, USA 646783 clone HI10A
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome APC-H7
(Ex max 496 nm/
Em max 785nm)
Mouse Anti-Human CD35 BD Biosciences, CA, USA 555452 clone E11
Mouse IgG1, κ
Fluorochrome FITC
(Ex max 494 nm/
Em max 520 nm)
Mouse Anti-Human CD64 BD Biosciences, CA, USA 644385 clone 10.1
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome PE
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD300e Immunostep IREM2A-T100 clone UP-H2
Mouse BALB/c IgG1, k
Fluorochrome APC
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD14 BD Biosciences, CA, USA 641394 clone MoP9
Mouse BALB/c IgG2b, κ
Fluorochrome APC-H7
(Ex max 496 nm/
Em max 785nm)
Mouse Anti-Human CD36 BD Biosciences, CA, USA 656151 clone CLB-IVC7
Mouse IgG1, κ
Fluorochrome FITC
(Ex max 494 nm/
Em max 520 nm)
Mouse Anti-Human CD105 BD Biosciences, CA, USA 560839 clone 266
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome PE
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD33 345800 clone P67.6
Mouse BALB/c IgG1, κ
Fluorochrome APC
(Ex max 496 nm/
Em max 578 nm)
Mouse Anti-Human CD71 BD Biosciences, CA, USA 655408 clone M-A712
Mouse BALB/c IgG2a, κ
Fluorochrome APC-H7
(Ex max 496 nm/
Em max 785nm)
Lysing Solution 10X Concentrate (IVD) BD Biosciences, CA, USA 349202
FACSFlow Sheath Fluid BD Biosciences, CA, USA 342003
FACSDiva CS&T IVD beads BD Biosciences, CA, USA 656046
RAINBOW CALIBRATION PARTICLES, 8 PEAKS Cytognos, Salamanca, Spain SPH-RCP-30-5A lots EAB01, EAC01, EAD05, EAE01, EAF01, EAG01, EAH01, EAI01, EAJ01, EAK01
Compensation Particles Multicolor CompBeads(CE/IVD) BD Biosciences, CA, USA ref. #51-90-9001229 + #51-90-9001291
Diva software versions 6.1.2 and 6.1.3 BD Biosciences, CA, USA
Phosphate buffered saline tablets R&D Systems, Minneapolis, USA 5564
Bovine serum albumin (BSA) Sigma-Aldrich, France A9647
Sodium azide 99% Sigma-Aldrich, France 199931
Infinicyt software version 1.8.0.e Cytognos, Salamanca, Spain

References

  1. Orfao, A., Ortuño, F., de Santiago, M., Lopez, A., San Miguel, J. Immunophenotyping of Acute Leukemias and Myelodysplastic Syndromes. Cytometry Part A. 58, 62-71 (2004).
  2. Porwit, A., et al. Revisiting guidelines for integration of flow cytometry results in the WHO classification of Myelodysplastic Syndromes – proposal from the International/European LeukemiaNet Working Group for Flow Cytometry in MDS (IMDSFlow). Leukemia. 28 (9), 1793-1798 (2014).
  3. Westers, M. T., et al. Implementation of flow cytometry in the diagnostic work-up of myelodysplastic syndromes in a multicenter approach: Report from the Dutch Working Party on Flow Cytometry in MDS. Leukemia Research. 36, 422-430 (2012).
  4. Meehan, S., et al. AutoGate: automating analysis of flow cytometry data. Immunologic Research. 58, 218-223 (2014).
  5. Greenberg, P. L., et al. NCCN Clinical Practice Guidelines in Oncology: myelodysplastic syndromes. Journal of the National Comprehensive Cancer Network. 9, 30-56 (2011).
  6. Greenberg, P. L., et al. Myelodysplastic Syndromes, Version 2.2017, Clinical Practice Guidelines in Oncology. Journal of the National Comprehensive Cancer Network. 15, (2017).
  7. Swerdlow, S. H., et al. . WHO Classification of Tumours of Haematopoietic and Lymphoid Tissues. Revised 4th Edition. (2), 86-128 (2017).
  8. . https://lists.purdue.edu/pipermail/cytometry/2009-March/036889.html Available from: https://lists.purdue.edu/pipermail/cytometry/2009-March/036889.html (2018)
  9. . . Composition of EuroFlow panels and technical information on reagents Version 1.5. , (2017).
  10. . . EuroFlow Standard Operating Procedure (SOP) for sample preparation and staining Version 1.2.1. , (2015).
  11. Kalina, T., et al. EuroFlow standardization of flow cytometer instrument settings and immunophenotyping protocols. Leukemia. 26, 1986-2010 (2012).
  12. van Dongen, J. J. M., et al. EuroFlow antibody panels for standardized n-dimensional flow cytometric immunophenotyping of normal, reactive and malignant leukocytes. Leukemia. 26, 1908-1975 (2012).
  13. Matarraz, S. Introduction to the Diagnosis and Classification of Monocytic-Lineage Leukemias by Flow Cytometry. Cytometry Part B (Clinical Cytometry). 92 (3), 218-227 (2015).
  14. Westers, M. T. Immunophenotypic analysis of erythroid dysplasia in myelodysplastic syndromes. A report from the IMDSFlow working group). Haematologica. 102, 308-319 (2017).
  15. Shen, Q., et al. Flow cytometry immunophenotypic findings in chronic myelomonocytic leukemia and its utility in monitoring treatment response. European Journal of Haematology. 95, 168-176 (2015).
check_url/57867?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Aanei, C. M., Jacob, M., Veyrat-Masson, R., Picot, T., Rosenthal-Allieri, M. A., Lhoumeau, A., Ticchioni, M., Dumezy, F., Campos Catafal, L. Database-guided Flow-cytometry for Evaluation of Bone Marrow Myeloid Cell Maturation. J. Vis. Exp. (141), e57867, doi:10.3791/57867 (2018).

View Video