Summary

Synthèse, caractérisation et application de nanosons à oxyde de fer superparamagnetic pour la détection de la tuberculose extrapulmonaire

Published: February 16, 2020
doi:

Summary

Pour améliorer les tests de diagnostic sérologiques pour les antigènes de mycobacterium tuberculosis, nous avons développé des nanosondes d’oxyde de fer superparamagnetic pour détecter la tuberculose extrapulmonaire.

Abstract

Une sonde d’imagerie moléculaire comprenant des nanoparticules d’oxyde de fer superparamagnetic (SPIO) et un anticorps de surface De mycobacterium tuberculosis (MtbsAb) a été synthétisée pour améliorer la sensibilité d’imagerie pour la tuberculose extrapulmonaire (ETB). Une nanosonde SPIO a été synthétisée et conjuguée avec MtbsAb. La nanoprobe purifiée de SPIO-MtbsAb a été caractérisée utilisant TEM et NMR. Pour déterminer la capacité de ciblage de la sonde, les nanosondes SPIO-MtbsAb ont été incubées avec Mtb pour des essais d’imagerie in vitro et injectées dans des souris inoculées par Mtb pour une recherche in vivo avec résonance magnétique (MR). La réduction d’amélioration de contraste sur la formation image de résonance magnétique (MRI) des cellules de Mtb et de THP1 a montré proportionnelle à la concentration de nanoprobe de SPIO-MtbsAb. Après 30 min d’injection intraveineuse de nanoprobe de SPIO-MtbsAb dans les souris Mtb-infectées, l’intensité de signal du site granulomatous a été augmentée par 14 fois dans les images de MR T2-weighted comparées à cela dans les souris recevant l’injection de PBS. Les nanosondes MtbsAb peuvent être utilisées comme une modalité nouvelle pour la détection ETB.

Introduction

À l’échelle mondiale, la tuberculose extrapulmonaire (ETB) représente une proportion importante des cas de tuberculose. Néanmoins, le diagnostic d’ETB est souvent manqué ou retardé en raison de sa présentation clinique insidieuse et de la performance pauvre sur des essais diagnostiques ; les faux résultats incluent des frottis de sputum négatifs pour les bacilles acide-rapide, le manque de tissu granulomatous sur l’histopathologie, ou l’échec à la culture Mycobacterium tuberculosis (Mtb). Par rapport aux cas typiques, etB se produit moins fréquemment et implique peu de libération du bacille de Mtb. En outre, il est généralement localisé à des sites difficiles d’accès, tels que les ganglions lymphatiques, pleura, et les zones ostéo-articulaires1. Ainsi, les procédures invasives pour l’obtention de spécimens cliniques adéquats, ce qui rend la confirmation bactériologique risquée et difficile, sont essentielles2,3,4.

Les tests de détection d’anticorps disponibles dans le commerce pour etb ne sont pas fiables pour la détection clinique en raison de leur large gamme de sensibilité (0,00-1,00) et de leur spécificité (0,59-1,00) pour tous les sites extrapulmonaires combinés5. Des tests immunospot liés à l’enzyme (ELISPOT) pour l’interféron, la protéine de filtrate de culture (CFP) et la cible antigénique de sécrétion précoce (ESAT) ont été utilisés pour diagnostiquer la tuberculose latente et active. Cependant, les résultats varient entre les différents sites de la maladie pour diagnostiquer ETB6,7,8. En outre, la PPD de peau (dérivé purifié de protéine) et QuantiFERON-TB ont fréquemment fourni de faux résultats négatifs9. QuantiFERON-TB-2G est un test de réactivité immunitaire du sang entier, qui ne nécessite pas un spécimen de l’organe affecté et cela peut être un outil de diagnostic alternatif6,10,11. D’autres méthodes diagnostiques généralement utilisées pour la méningite tuberculeuse, comme la réaction en chaîne de polymérase, sont encore trop insensibles pour exclure en toute confiance le diagnostic clinique12,13. Ces tests conventionnels démontrent l’information diagnostique insuffisante pour découvrir le site d’infection extrapulmonaire. Ainsi, de nouvelles modalités diagnostiques sont cliniquement requises.

L’imagerie moléculaire vise à concevoir de nouveaux outils qui peuvent examiner directement les cibles moléculaires spécifiques des processus de la maladie in vivo14,15. L’oxyde de fer superparamagnetic (SPIO), un agent de contraste RmN pondéré par T2, peut augmenter de manière significative la spécificité et la sensibilité de l’imagerie par résonance magnétique (IRM)16,17. Cette nouvelle modalité d’imagerie fonctionnelle peut esquisser avec précision les changements tissulaires au niveau moléculaire par le biais d’interactions ligand-récepteur. Dans cette étude, une nouvelle sonde d’imagerie moléculaire, comprenant des nanoparticules DePIO, a été synthétisée pour conjuguer avec l’anticorps de surface DeMtb (MtbsAb) pour le diagnostic ETB. Les nanosondes SPIO sont peu invasives pour les tissus et les corps soumis à l’examen18,19. En outre, ces nanosondes peuvent démontrer des images précises de M. à de faibles concentrations en raison de leurs propriétés paramagnétiques. En outre, les nanosondes SPIO semblent susciter les réactions allergiques les moins graves parce que la présence d’ions de fer fait partie de la physiologie normale. Ici, la sensibilité et la spécificité des nanosondes SPIO-MtbsAb ciblant ETB ont été évaluées dans les modèles cellulaires et animaux. Les résultats ont démontré que les nanoprobes étaient applicables en tant qu’agents d’imagerie ultrasensibles pour le diagnostic d’ETB.

Protocol

Tout protocole concernant l’expérimentation animale suit les procédures d’exploitation standard pour l’élevage d’animaux de laboratoire conformément aux Lignes directrices des National Institutes of Health pour le soin et l’utilisation des animaux de laboratoire (8e édition, 2011) et est approuvé par le comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux. 1. Synthèse des nanoparticules SPIO Préparer des nanoparticules magnétiques d’oxyde de fer recouve…

Representative Results

Synthèse et caractérisation des nanosons SPIO-MtbsAbLes nanoparticules SPIO ont été conçues pour se conjuguer avec MtbsAb. Le dextran stabilisé à la surface des nanoparticules SPIO a été relié par l’épichlorohydin. Les nanoparticules SPIO ont ensuite été incorporées avec EDBE pour activer les groupes fonctionnels primaires d’amine aux extrémités dextran. SA a ensuite été conjugué pour former SPIO-EDBE-SA. Les nanosondes SPIO-MtbsAb se sont formées dans la dernière étape par …

Discussion

Semblable aux études pertinentes, nos résultats concernant les nanoprobes de SPIO-MtbsAb ont démontré une spécificité significative pour Mtb27,28. Le granulome sous-cutané de Mtb a été trouvé 1 mois après injection de tb dans les modèles de souris. Les résultats typiques d’histologie granulomatetous de TB ont inclus l’infiltration de lymphocyte, la présence des macrophages épithélioïdes, et la néovascularization. Des bacilles acide-rapides o…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Les auteurs sont reconnaissants pour le soutien financier du ministère de l’Économie taiwanais (subventions NSC-101-2120-M-038-001, MOST 104-2622-B-038 -007, MOST 105-2622-B-038-004) pour effectuer ce travail de recherche. Ce manuscrit a été édité par Wallace Academic Editing.

Materials

(benzotriazol-1-yloxy) tripyrrolidinophosphonium hexafluorophosphate Sigma-Aldrich
1-hydroxybenzotriazole Sigma-Aldrich
dextran(T-40) GE Healthcare Bio-sciences AB
epichlorohydrin, 2,2'-(ethylenedioxy)bis(ethylamine) Sigma-Aldrich
ferric chloride hexahydrate Fluka
ferrous chloride tetrahydrate Fluka
Human monocytic THP-1
M. bovis BCG Pasteur Mérieux Connaught strain; ImmuCyst Aventis
MRI GE medical Systems 3.0-T, Signa
NH4OH Fluka
NMR relaxometer Bruker NMS-120 Minispec
Sephacryl S-300 GE Healthcare Bio-sciences AB
Sephadex G-25 GE Healthcare Bio-sciences AB
SPECTRUM molecular porous membrane tubing, 12,000 -14,000 MW cut off Spectrum Laboratories Inc
TB surface antibody- Polyclonal Antibody to Mtb Acris Antibodies GmbH BP2027
transmission electron microscope JEOL JEM-2000 EX II

References

  1. Small, P. M., et al. Treatment of tuberculosis in patients with advanced human immunodeficiency virus infection. New England Journal of Medicine. 324, 289-294 (1991).
  2. Alvarez, S., McCabe, W. R. Extrapulmonary tuberculosis revisited: a review of experience at Boston City and other hospitals. Medicine. 63, 25-55 (1984).
  3. Ozbay, B., Uzun, K. Extrapulmonary tuberculosis in high prevalence of tuberculosis and low prevalence of HIV. Clinics in Chest Medicine. 23, 351-354 (2002).
  4. Ebdrup, L., Storgaard, M., Jensen-Fangel, S., Obel, N. Ten years of extrapulmonary tuberculosis in a Danish university clinic. Scandinavian Journal of Infectious Diseases. 35, 244-246 (2003).
  5. Steingart, K. R., et al. A systematic review of commercial serological antibody detection tests for the diagnosis of extrapulmonary tuberculosis. Postgraduate Medical Journal. 83, 705-712 (2007).
  6. Liao, C. H., et al. Diagnostic performance of an enzyme-linked immunospot assay for interferon-gamma in extrapulmonary tuberculosis varies between different sites of disease. Journal of Infection. 59, 402-408 (2009).
  7. Kim, S. H., et al. Diagnostic usefulness of a T-cell based assay for extrapulmonary tuberculosis. Archives of Internal Medicine. 167, 2255-2259 (2007).
  8. Kim, S. H., et al. Diagnostic usefulness of a T-cell-based assay for extrapulmonary tuberculosis in immunocompromised patients. The American Journal of Medicine. 122, 189-195 (2009).
  9. Pai, M., Zwerling, A., Menzies, D. Systematic review: T-cell-based assays for the diagnosis of latent tuberculosis infection: an update. Annals of Internal Medicine. 149, 177-184 (2008).
  10. Kobashi, Y., et al. Clinical utility of a T cell-based assay in the diagnosis of extrapulmonary tuberculosis. Respirology. 14, 276-281 (2009).
  11. Paluch-Oles, J., Magrys, A., Kot, E., Koziol-Montewka, M. Rapid identification of tuberculosis epididymo-orchitis by INNO-LiPA Rif TB and QuantiFERON-TB Gold In Tube tests: case report. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 66, 314-317 (2010).
  12. Kaneko, K., Onodera, O., Miyatake, T., Tsuji, S. Rapid diagnosis of tuberculous meningitis by polymerase chain reaction (PCR). Neurology. 40, 1617 (1990).
  13. Bhigjee, A. I., et al. Diagnosis of tuberculous meningitis: clinical and laboratory parameters. International Journal of Infectious Diseases. 11, 348-354 (2007).
  14. Miyawaki, A., Sawano, A., Kogure, T. Lighting up cells: labelling proteins with fluorophores. Nature Cell Biology. , 1-7 (2003).
  15. Weissleder, R., Mahmood, U. Molecular imaging. Radiology. 219, 316-333 (2001).
  16. Gupta, A. K., Gupta, M. Synthesis and surface engineering of iron oxide nanoparticles for biomedical applications. Biomaterials. 26, 3995-4021 (2005).
  17. Talelli, M., et al. Superparamagnetic iron oxide nanoparticles encapsulated in biodegradable thermosensitive polymeric micelles: toward a targeted nanomedicine suitable for image-guided drug delivery. Langmuir. 25, 2060-2067 (2009).
  18. Cho, W. S., et al. Pulmonary toxicity and kinetic study of Cy5.5-conjugated superparamagnetic iron oxide nanoparticles by optical imaging. Toxicology and Applied Pharmacology. , 106-115 (2009).
  19. Mahmoudi, M., Simchi, A., Milani, A. S., Stroeve, P. Cell toxicity of superparamagnetic iron oxide nanoparticles. Journal of Colloid and Interface Science. 336, 510-518 (2009).
  20. Chen, T. J., et al. Targeted folic acid-PEG nanoparticles for noninvasive imaging of folate receptor by MRI. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 87, 165-175 (2008).
  21. Chen, T. J., et al. Targeted Herceptin-dextran iron oxide nanoparticles for noninvasive imaging of HER2/neu receptors using MRI. Journal of Biological Inorganic Chemistry. 14, 253-260 (2009).
  22. Weissleder, R., et al. Ultrasmall superparamagnetic iron oxide: an intravenous contrast agent for assessing lymph nodes with MR imaging. Radiology. 175, 494-498 (1990).
  23. Wang, J., Wakeham, J., Harkness, R., Xing, Z. Macrophages are a significant source of type 1 cytokines during mycobacterial infection. Journal of Clinical Investigation. 103, 1023-1029 (1999).
  24. Angra, P., Ridderhof, J., Smithwick, R. Comparison of two different strengths of carbol fuchsin in Ziehl-Neelsen staining for detecting acid-fast bacilli. Journal of Clinical Microbiology. 41, 3459 (2003).
  25. Woods, A. E., Ellis, R. . Laboratory Histopathology- A Complete Reference. 1st edn. , 6-11 (1994).
  26. Lee, C. N., et al. Super-paramagnetic iron oxide nanoparticles for use in extrapulmonary tuberculosis diagnosis. Clinical Microbiology and Infection. 18, 149-157 (2012).
  27. Lee, H., Yoon, T. J., Weissleder, R. Ultrasensitive detection of bacteria using core-shell nanoparticles and an NMR-filter system. Angewandte Chemie International Edition. 48, 5657-5660 (2009).
  28. Fan, Z., et al. Popcorn-shaped magnetic core-plasmonic shell multifunctional nanoparticles for the targeted magnetic separation and enrichment, label-free SERS imaging, and photothermal destruction of multidrug-resistant bacteria. Chemistry. 19, 2839-2847 (2013).
  29. Nishie, A., et al. In vitro imaging of human monocytic cellular activity using superparamagnetic iron oxide. Computerized Medical Imaging and Graphics. 31, 638-642 (2007).
  30. von Zur Muhlen, C., et al. Superparamagnetic iron oxide binding and uptake as imaged by magnetic resonance is mediated by the integrin receptor Mac-1 (CD11b/CD18): implications on imaging of atherosclerotic plaques. Atherosclerosis. 193, 102-111 (2007).
check_url/58227?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lee, C., Chiu, L., Fang, C., Yeh, S., Zuo, C. S., Chen, S., Kuo, L., Wang, Y., Lai, W. T. Synthesis, Characterization, and Application of Superparamagnetic Iron Oxide Nanoprobes for Extrapulmonary Tuberculosis Detection. J. Vis. Exp. (156), e58227, doi:10.3791/58227 (2020).

View Video