Summary

Flow durchflusszytometrischen Erkennung von neu gebildeten Stammzellen-wie Brustkrebszellen nach Apoptose Umkehr

Published: January 26, 2019
doi:

Summary

Hier präsentieren wir Ihnen ein Protokoll zur isolieren Apoptotic Brustkrebszellen durch Fluoreszenz-aktivierte Zellsortierung und weiter den Übergang von nicht-Stamm Brustkrebszellen zu Brustkrebs-Stammzellen-ähnliche Zellen nach Apoptose Umkehr zu erkennen, indem Durchflusszytometrie.

Abstract

Rezidiv wurde lange von Onkologen untersucht, während die zugrunde liegenden Mechanismen unklar bleiben. Vor kurzem fanden wir und andere, dass ein Phänomen namens Apoptose Umkehr zu erhöhten Tumorigenität in verschiedenen Zellmodellen unter verschiedene Reize führt. Frühere Studien konzentrierten sich auf die Verfolgung dieser Prozess in vitro und in vivo; ist aber noch die Isolierung der echten umgekehrte Zellen erreicht werden, welche Grenzen unser Verständnis über die Folgen der Apoptose Umkehr. Hier nutzen wir einen Caspase-3/7 Grün Erkennung Farbstoff Label Zellen mit aktivierte Caspasen nach Induktion der Apoptose. Zellen mit positiven Signalen werden weiter durch Fluoreszenz-aktivierte Zelle sortieren (FACS) zur Verwertung aussortiert. Morphologische Untersuchung unter konfokalen Mikroskopie hilft den apoptotischen stand vor FACS bestätigen. Eine Zunahme der Tumorigenität kann oft die Höhe des Anteils der Krebsstammzellen (CSC) zugeschrieben werden-wie Zellen. Auch wäre angesichts die Heterogenität der Brustkrebs, Identifizierung des Ursprungs dieser CSC-ähnliche Zellen entscheidend für die Behandlung von Krebs. So bereiten wir nicht Stamm Brustkrebszellen vor Apoptose auslösen, Caspase-aktivierten Zellen zu isolieren und die Apoptose Umkehrung Verfahren durchführen. Flow-Zytometrie-Analyse zeigt, dass die CSC-wie Brustzellen wieder erscheinen im Bereich “umgekehrte” darauf hinweist, dass die CSC-wie Brustzellen von Brustkrebszellen-Stamm während der Apoptose Umkehr gereist sind. Zusammenfassend lässt sich sagen enthält dieses Protokoll die Isolierung von apoptotischen Brustkrebszellen und Erkennung von Veränderungen in CSC Prozentsatz in umgekehrter Zellen durch Durchflusszytometrie.

Introduction

Krebs ist eine führende Ursache des Todes, verursacht schwere Last zu Ländern weltweit1gewesen. Brustkrebs zählt bei weiblichen Patienten unter allen Arten von Krebs1hoch, sowohl in Bezug auf die Inzidenz und Mortalität. Aufgrund der Heterogenität Krebs ist eine Kombination von Medikamenten in der Regel in der Chemotherapie verwendet, um Krebs Zelle Tod2,3,4zu erreichen. Jedoch da gemeinsame Chemotherapeutika oft DNA-5,6 Ziel, betroffen Synthese7,8 und/oder Mikrotubuli Proteindynamik9, schnell wachsende Zellen sind am meisten während ruhende Zellen wie Krebs-Stammzellen (CSC) s sind in der Regel weniger betroffenen10. CSCs sind daher eher nach der Behandlung überleben, später führt zu Resistenzen und Krebs10,11 Rezidiv. Daher, Beseitigung von CSCs ist ein wichtiges Thema für die Krebsbehandlung geworden und Studie über den Ursprung des CSCs ist notwendig.

Weitere Studien über das Phänomen der Apoptose Umkehrung wurden im letzten Jahrzehnt12,13,14,15,16,17,18 durchgeführt , 19. vor der Entstehung dieses Konzeptes, es hat weit angenommen worden, dass Zellen irreversibel nach der Aktivierung der Caspase Apoptose. Caspasen sind eine Familie von Protein-Enzyme, die wichtige Rolle in der Initiierung und Durchführung Stadien der Apoptose, einschließlich der Bildung von komplexen apoptotische und die Spaltung von nachgelagerten Substrate20spielen. Aktivierung von Caspasen Henker wie Caspase 3 oder Caspase 7 galt als der “Point Of No Return” für Apoptose21. Allerdings beobachteten Forscher vor kurzem, dass Umkehr Apoptose sowohl in-vitro tritt- und in-vivo, , während die Zellen sich von Apoptose auch nach Caspase Aktivierung12,13,14 erholen können , 15 , 16 , 17 , 18 , 19. Darüber hinaus aggressive Merkmale wie z. B. höhere Beständigkeit gegen die ursprünglichen Apoptose-Induktor und höheren Invasivität werden in der umgekehrten Krebs erkannt Zellen15. Daher wurde vorgeschlagen, dass der Anteil der CSC-ähnlichen Zellen in der umgekehrten Bevölkerung im Vergleich zu den unbehandelten Zellen schließlich einen Beitrag zu mehr bösartigen Funktionen nach Apoptose Umkehr18höher wäre.

Zuvor wurden viele Anstrengungen unternommen, die Apoptose Umkehr in-vitro- und noch wichtiger, in vivo zu verfolgen die sehr helfen bei der Bestätigung der Universalität von diesem Prozess16,17,19. Allerdings fehlt eine systemische Studie über die Folgen der umgekehrte Zellen aufgrund der unbefriedigenden Isolation von Zellen, die wirklich Apoptose Umkehr unterzogen wurden. Es muss eine reine Apoptotic Zellen zu erwerben und für weitere Studien zu erholen. Also, wir verwenden den traditionell anerkannten Marker der Henker Caspase Aktivierung als Marker für den “Point Of No Return”-21 für die Apoptose und nutzen Fluoreszenz-aktivierte Zelle sortieren (FACS) um Caspase-aktivierten Zellen befleckt Diskriminierung mit Farbstoff Caspase-3/7-Grün-Erkennung. Der Farbstoff ist kovalent verbunden mit eine kurze Aminosäuresequenz, DEVD, die erkannt und durch aktive Caspasen 3/7 abgespalten werden können. Die Spaltung hilft den Farbstoff freigeben, die aus dem Zytosol in den Zellkern translozieren wird, wo es bindet an DNA und starke Fluoreszenz emittiert. Dieses Verfahren vermeidet die Verwendung einer Bulk-Zell-Population, in der einige Zellen keine Apoptose durchgemacht haben können.

CSCs oder Tumor-initiierenden Zellen wurden in vielen soliden Tumoren, die mit einer einzigen oder eine Kombination aus mehreren Oberflächen Marker(s) und sehr wenige Zahlen dieser Zellen sind ausreichend, um Form Tumoren immungeschwächte Mäuse22,23, 24,25,26,27. Häufig wird eine Kombination von CD44 und CD24 Brust CSC Studien und CD44+/CD24 Zellen wurden definiert als die Brust CSCs26,27,28,29 , 30. vor kurzem haben wir eine Reihe von Experimenten bestätigen die vorgeschlagene Beziehung zwischen Apoptose Umkehr und CSCs zu demonstrieren, dass umgekehrte Brustkrebszellen erhöhte Tumor bilden Fähigkeit in vitro und in vivo mit gewonnen durchgeführt ein erhöhter Anteil an Zellen mit CSC Marker18. Obwohl wir nicht ausschließen konnte, dass Brust CSCs besser überleben und somit nach Apoptose Umkehr, wichtig ist, bereichert wenn wir nicht-Stamm Krebszellen und Thema isolieren entstehen ihnen zu Apoptose Umkehr, CSC in der ursprünglich nicht-stem Krebs-Zell-Population, darauf hindeutet, dass nicht-Stammzellen Krebs, wie Zellen auf die Erhöhung des Anteils von CSCs während der Apoptose Umkehr beitragen können.

Dieser Artikel soll den Übergang von Brustkrebszellen-Stamm zu CSC-wie Brustzellen nach Apoptose Umkehr zu zeigen und diesen Übergang durch Durchflusszytometrie zu erkennen. -Stamm-Brustkrebszellen bereiten wir zunächst durch die Isolierung von CD44/CD24+ Brustkrebs Krebszellen durch FACS. Dann ist Apoptose induziert und durch morphologische Veränderungen unter dem Mikroskop bestätigt. Danach sind Apoptotic Zellen positiv gekennzeichnet durch Caspase 3/7 Grün Erkennung Farbstoff durch FACS isoliert und weiter in das Fehlen von Apoptose induzieren Apoptose Umkehr kultiviert. Die umgekehrten Zellen sind dann nach 7 Tagen Erholung für durchflusszytometrischen Analyse mit CSC-Markern gefärbt. Zellen mit CD44+/CD24 Marker erscheinen wieder in der umgekehrten Bevölkerung darauf hindeutet, dass Übergang von nicht-Stamm Krebszellen zu CSC-wie Zellen in Apoptose Umkehrung aufgetreten ist.

Apoptose Umkehr wurde in mehreren Krebs beobachtet Zelllinien sowie normale Primärzellen mit verschiedenen apoptotischen Stimuli in vitro-12,13behandelt. Dieser Prozess hat auch in Drosophila verfolgt worden Modell in-vivo16,17,19. Viele Informationen über die zugrunde liegenden Mechanismus der Krebs-Rückfall in verschiedenen Krebs-Krankheit-Modelle und die Herkunft des CSCs erhalten Sie durch den Einsatz der Technik wie in diesem Manuskript beschrieben.

Protocol

1. Vorbereitung der Brust nicht-Stamm Krebszellen Kultur MCF-7 und MDA-MB-231 Zellen in 10 mL Phenol Rotfrei-Roswell Park Memorial Institute (RPMI) 1640 Medium mit 10 % Hitze-inaktivierten fetalen bovine Serum (FBS) in einer 100 mm Schale ergänzt. Kultur T47D in 10 mL Phenol Rotfrei RPMI 1640 Medium ergänzt mit 2 mM L-Glutamin, Hitze-inaktivierten 10 % FBS und 1 % V/V Penicillin-Streptomycin (PS) in einer 100 mm Schale. Zellkulturen bei 37 ° C in einem 5 % CO295 % Luft Zelle Kultu…

Representative Results

Um den Übergang von der Brust nicht-Krebszellen zu CSC-wie Brustzellen, eine erste Sortierung der CD44 Stiel zu beobachten–/CD24+ Brustkrebs-Zellen wurden benötigt. Seit die MCF-7-Zell-Linie, die etwa 0,15 % Zellen mit CSC-Marker in der ursprünglichen Bevölkerung (Abbildung 1), dieser Schritt unterstützt CSC Bereicherung während der Apoptose Umkehr auszuschließen. Im Gegenteil, gäbe es keine Zellen mit CSC-Marker in der ursprü…

Discussion

Dieses Protokoll beschreibt eine direkte und klare Weise zur Erkennung von den Übergang von nicht-Stamm Brustkrebszellen in Brust CSC-ähnliche Zellen infolge Apoptose Umkehr. Bestätigung der CSC Eigenschaften dieser umgekehrte Zellen könnte gefördert werden, mit der ichn Vitro Mammosphere Bildung Assay und in Vivo Xenograft-Transplantation in immungeschwächte Mäuse18,24,26 ,

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde unterstützt durch die Innovative Technologie der Innovation Technologie Kassenkommission: Finanzierung Unterstützung durch den Staat Schlüssel Labor der Agrobiotechnologie (CUHK), Lo Qixi-Seong Biomedical Research Fund und Lee Hysan Foundation. Y.X. wurde von der postgradualen Zugehörigkeit aus der CUHK unterstützt.

Materials

MCF-7 American Type Culture Collection (ATCC) HTB-22
MDA-MB-231 American Type Culture Collection (ATCC) HTB-26
T47D American Type Culture Collection (ATCC) HTB-133
Reagent
0.05% trypsin-EDTA Invitrogen 25300054
0.25% trypsin-EDTA Invitrogen 25200072
Alexa Fluor 680 annexin V conjugate Invitrogen A35109
bovine serum albumin USB 9048-46-8
CaCl2 · 2H2O Sigma-Aldrich C-5080
CellEvent caspase-3/7 green fluorescent dye Invitrogen C10423
dimethyl sulfoxide Sigma-Aldrich D2650
Fc block Miltenyi Biotec 130-059-901
fetal bovine serum Invitrogen 16000044 heat-inactivated
HEPES USB 16926
Hoechst 33342 Invitrogen H3570
L-glutamine Invitrogen 25030081
Mitotracker Red CMXRos Invitrogen M7512
monoclonal antibodies against human CD24 BD Biosciences 555428 PE Clone:ML5
Lot:5049759
RRID:AB_395822
monoclonal antibodies against human CD44 BD Biosciences 560531 PERCP-CY5.5 Clone:G44-26
Lot:7230770
RRID:AB_1727485
NaCl Sigma-Aldrich 31434
paclitaxel Sigma-Aldrich T7402
PE Mouse IgG2a, κ Isotype Control BD Biosciences 554648 Clone:G155-178 (RUO)
RRID:AB_395491
Penicillin-Streptomycin Invitrogen 15070-063
PerCP-Cy5.5 Mouse IgG2b, κ Isotype Control BD Biosciences 558304 Clone:27-35
RRID:AB_647257
phosphate buffered saline Thermo Fisher Scientific 21600010
propidium iodide Invitrogen P1304MP
Roswell Park Memorial Institute 1640 medium Invitrogen 11835055 phenol red-free
sodium azide Sigma-Aldrich S2002
staurosporine Sigma-Aldrich S4400
Equipment
100 mm culture dish Greiner Bio-One 664160
12-well tissue culture plates Thermo Fisher Scientific 150628
Cell Strainer 40-μm nylon mesh BD Biosciences 08-771-1
FACSuite software bundle v1.0 BD Biosciences 651360
FACSVerse BD Biosciences 651155
FluoView FV1000 confocal microscope Olympus IX81 60X objective
FV10-ASW Viewer software Ver.4.2b Olympus
round-bottom polystyrene 12 × 75 mm tubes BD Biosciences 352003
S3e sorter Bio-Rad 1451006

References

  1. McGuire, S. World Cancer Report 2014. Geneva, Switzerland: World Health Organization, International Agency for Research on Cancer, WHO Press, 2015. Advances in Nutrition. 7 (2), 418-419 (2015).
  2. Slamon, D. J., et al. Use of chemotherapy plus a monoclonal antibody against HER2 for metastatic breast cancer that overexpresses HER2. New England Journal of Medicine. 344 (11), 783-792 (2001).
  3. Geyer, C. E., et al. Lapatinib plus capecitabine for HER2-positive advanced breast cancer. New England Journal of Medicine. 355 (26), 2733-2743 (2006).
  4. Cameron, D., et al. A phase III randomized comparison of lapatinib plus capecitabine versus capecitabine alone in women with advanced breast cancer that has progressedon trastuzumab: updatedefficacy andbiomarker analyses. Breast Cancer Research and Treatment. 112 (3), 533-543 (2008).
  5. Liu, L. F. DNA topoisomerase poisons as antitumor drugs. Annual Review of Biochemistry. 58, 351-375 (1989).
  6. Hertel, L. W., et al. Evaluation of the antitumor activity of gemcitabine (2′,2′-difluoro-2′-deoxycytidine). Cancer Research. 50 (14), 4417-4422 (1990).
  7. Ni, H., et al. Analysis of expression of nuclear factor kappa B (NF-kappa B) in multiple myeloma: downregulation of NF-kappa B induces apoptosis. British Journal of Haematology. 115 (2), 279-286 (2001).
  8. Richardson, P. G., Mitsiades, C., Hideshima, T., Anderson, K. C. Bortezomib: proteasome inhibition as an effective anticancer therapy. Annual Review of Medicine. 57, 33-47 (2006).
  9. Dumontet, C., Jordan, M. A. Microtubule-binding agents: a dynamic field of cancer therapeutics. Nature Review Drug Discovery. 9 (10), 790-803 (2010).
  10. Dean, M., Fojo, T., Bates, S. Tumour stem cells and drug resistance. Nature Review Cancer. 5 (4), 275-284 (2005).
  11. Pirozzi, G., et al. Prognostic value of cancer stem cells, epithelial-mesenchymal transition and circulating tumor cells in lung cancer. Oncology Reports. 29 (5), 1763-1768 (2013).
  12. Tang, H. L., Yuen, K. L., Tang, H. M., Fung, M. C. Reversibility of apoptosis in cancer cells. British Journal of Cancer. 100 (1), 118-122 (2009).
  13. Tang, H. L., et al. Cell survival, DNA damage, and oncogenic transformation after a transient and reversible apoptotic response. Molecular Biology of the Cell. 23 (12), 2240-2252 (2012).
  14. Xie, X., Wang, S. S., Wong, T. C. S., Fung, M. C. Genistein promotes cell death of ethanol-stressed HeLa cells through the continuation of apoptosis or secondary necrosis. Cancer Cell International. 13 (1), 63 (2013).
  15. Wang, S. S., Xie, X., Wong, C. S., Choi, Y., Fung, M. C. HepG2 cells recovered from apoptosis show altered drug responses and invasiveness. Hepatobiliary & Pancreatic Diseases International. 13 (3), 293-300 (2014).
  16. Tang, H. L., Tang, H. M., Fung, M. C., Harwick, J. M. In vivo CaspaseTracker biosensor system for detecting anastasis and non-apoptotic caspase activity. Scientific Reports. 5, 9015 (2015).
  17. Tang, H. L., Tang, H. M., Hardwick, J. M., Fung, M. C. Strategies for tracking anastasis, a cell survival phenomenon that reverses apoptosis. Journal of Visualized Experiments. (96), (2015).
  18. Xu, Y., So, C., Lam, H. M., Fung, M. C., Tsang, S. Y. Apoptosis reversal promotes cancer stem cell-like cell formation. Neoplasia. 20 (3), 295-303 (2018).
  19. Tang, H. M., Fung, M. C., Tang, H. L. Detecting anastasis in vivo by CaspaseTracker biosensor. Journal of Visualized Experiments. (132), (2018).
  20. Li, J., Yuan, J. Caspases in apoptosis and beyond. Oncogene. 27 (48), 6194-6206 (2008).
  21. Green, D. R., Amarante-Mendes, G. P. The point of no return: mitochondria, caspases, and the commitment to cell death. Results and Problems in Cell Differentiation. 24, 45-61 (1998).
  22. Singh, S. K., et al. Identification of a cancer stem cell in human brain tumors. Cancer Research. 63 (18), 5821-5828 (2003).
  23. Ricci-Vitiani, L., et al. Identification and expansion of human colon-cancer-initiating cells. Nature. 445 (7123), 111-115 (2007).
  24. O’Brien, C. A., Pollett, A., Gallinger, S., Dick, J. E. A human colon cancer cell capable of initiating tumour growth in immunodeficient mice. Nature. 445 (7123), 106-110 (2007).
  25. Cioffi, M., et al. Identification of a distinct population of CD133(+) CXCR4(+) cancer stem cells in ovarian cancer. Scientific Reports. 5, 10357 (2015).
  26. Al-Hajj, M., Wicha, M. S., Benito-Hernandez, A., Morrison, S. J., Clarke, M. F. Prospective identification of tumorigenic breast cancer cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 100 (7), 3983-3988 (2003).
  27. Ponti, D., et al. Isolation and in vitro propagation of tumorigenic breast cancer cells with stem/progenitor cell properties. Cancer Research. 65 (13), 5506-5511 (2005).
  28. Liu, S., et al. Breast cancer stem cells transition between epithelial and mesenchymal states reflective of their normal counterparts. Stem Cell Reports. 2 (1), 78-91 (2013).
  29. Sheridan, C., et al. CD44+/CD24- breast cancer cells exhibit enhanced invasive properties: an early step necessary for metastasis. Breast Cancer Research. 8 (5), R59 (2006).
  30. Phillips, T. M., McBride, W. H., Pajonk, F. The response of CD24(-/low)/CD44+ breast cancer-initiating cells to radiation. Journal of the National Cancer Institute. 98 (24), 1777-1785 (2006).
  31. Welshons, W. V., Wolf, M. F., Murphy, C. S., Jordan, V. C. Estrogenic activity of phenol red. Molecular and Cellular Endocrinology. 57 (3), 169-178 (1998).
  32. Tsuji, K., et al. Effects of Different Cell-Detaching Methods on the Viability and Cell Surface Antigen Expression of Synovial Mesenchymal Stem Cells. Cell Transplantation. 26 (6), 1089-1102 (2017).
  33. Herzenberg, L. A., Tung, J., Moore, W. A., Herzenberg, L. A., Parks, D. R. Interpreting flow cytometry data: a guide for the perplexed. Nature Immunology. 7 (7), 681-685 (2006).
  34. Belmokhtar, C. A., Hillion, J., Ségal-Bendirdjian, E. Staurosporine induces apoptosis through both caspase-dependent and caspase-independent mechanisms. Oncogene. 20 (26), 3354-3362 (2001).
  35. Saunders, D. E., et al. Paclitaxel-induced apoptosis in MCF-7 breast-cancer cells. International Journal of Cancer. 70 (2), 214-220 (1997).
  36. Miller, A. V., et al. Paclitaxel-induced apoptosis is BAK-dependent, but BAX and BIM-independent in breast tumor. PLoS One. 8 (4), e60685 (2013).
  37. Elmore, S. Apoptosis: a review of programmed cell death. Toxicologic Pathology. 35 (4), 495-516 (2007).
  38. Vermes, I., Haanen, C., Steffens-Nakken, H., Reutelingsperger, C. A novel assay for apoptosis. Flow cytometric detection of phosphatidylserine expression on early apoptotic cells using fluorescein labelled Annexin V. Journal of Immunological Methods. 184 (1), 39-51 (1995).
  39. Ng, S. Y., et al. Role of voltage-gated potassium channels in the fate determination of embryonic stem cells. Journal of Cellular Physiology. 224 (1), 165-177 (2010).
  40. Lo, I. C., et al. TRPV3 channel negatively regulates cell cycle progression and safeguards the pluripotency of embryonic stem cells. Journal of Cellular Physiology. 231 (1), 403-413 (2016).
  41. Talanian, R. V., et al. Substrate specificities of caspase family proteases. Journal of Biological Chemistry. 272 (15), 9677-9682 (1997).
  42. Dontu, G., et al. In vitro propagation and transcriptional profiling of human mammary stem/progenitor cells. Genes & Development. 17 (10), 1253-1270 (2003).
  43. Vermeulen, L., et al. Wnt activity defines colon cancer stem cells and is regulated by the microenvironment. Nature Cell Biology. 12 (5), 468-476 (2010).
  44. Shaw, F. L., et al. A detailed mammosphere assay protocol for the quantification of breast stem cell activity. Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia. 17 (2), 111-117 (2012).
  45. Desiderio, V., et al. Increased fucosylation has a pivotal role in invasive and metastatic properties of head and neck cancer stem cells. Oncotarget. 6 (1), 71-84 (2015).
  46. Gupta, P. B., et al. Stochastic State Transitions Give Rise to Phenotypic Equilibrium in Populations of Cancer Cells. Cell. 146 (4), 633-644 (2011).
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Xu, Y., So, C., Lam, H., Fung, M., Tsang, S. Flow Cytometric Detection of Newly-formed Breast Cancer Stem Cell-like Cells After Apoptosis Reversal. J. Vis. Exp. (143), e58642, doi:10.3791/58642 (2019).

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