צנתור עורק נחתכו בחזיר
Summary
הווידאו מתאר בפירוט את צנתור של העורק איחתי דיסטלי של החזירים. הליך זה במדויק מודד לחץ דם עורקי, היא שיטה פשוטה ומהירה לאסוף דגימות דם עורקי גז מעבדתיים.
Abstract
הווידאו מתאר בפירוט את צנתור של העורק איחתי דיסטלי של החזירים. טכניקה זו מאפשרת לחוקרים למדוד לחץ דם עורקי ברציפות ולאסוף דגימות דם עורקי להעריך מדידות גזים בדם עורקי. לחץ דם עורקי הגזים והסריקה פרמטרים פיזיולוגיים חשובים לעקוב במהלך הליכי ניסיוני בקרב אנשי עסקים ותיירים כאחד. בחזיר, ארבע שיטות נפוצות של צנתור עורקי תוארו, כולל צנתור של העורקים saphenous העורק הירך, אזני, המדיאלי. כל הטכניקות הללו יש יתרונות, כגון נוחות גישה עבור העורק אוריקולארית וכן חסרונות הכוללים רקמות עמוק לנתיחה על צנתור עורק הראש. שיטת חלופית שתואר צנתור עורקי בחזיר, צנתור של ההיבט הדיסטלי של העורק נחתכו, היא הליך מהיר זה דורש ניתוח רקמה קטנה יחסית, והיא מספקת מידע זה עולה בקנה אחד עם הנתונים נאסף מאתרים אחרים צנתור עורקי. ההליך משתמשת בגישה המדיאלי לאורך מטוס עקיפה של brachium התחתון, הממוקם בין את olecranon ואת ההיבט כופף של מפרק המרפק, ומאפשרת גישה זו חוקרים היתרון העיקרי של חופש ללא הפרעה להליכי המערבות caudoventral, caudodorsal האחורי, או הגפיים האחוריות של החזיר. בשל המיקום של forelimb העליון של כלי השיט catheterized ואתגרים פוטנציאלי של הומאוסטזיס יעיל בעקבות הסרת קטטר מן העורק, טכניקה זו עשוי להיות מוגבל ההליכים לשחזור שאינם.
Introduction
התערבות כירורגית משמש במחקר ניסיוני לפתח מודלים בעלי חיים המשפרים את פיתוח מדעי. הספרות המדעית היא מלאה בדוגמאות של הרומן חיה ניתוח מודלים1,2,3. הניתוחים הם תהליך מורכב מעורבים לא רק המניפולציה של מבנים אנטומיים, אלא גם מסובך פיזיולוגיים אינטראקציות עם תרופות שונות הדרושות הרדמה, שיכוך כאבים. הגומלין הזה יכול לגרום שינויים משמעותיים בתהליכים פיזיולוגיים בתוך החיה, ובתור שכזה דורש ניטור על המשמר של בעלי חיים4. תוצאות ניתוח מוצלח קלינית קושרו עם מדידות של גזים בדם, לחץ דם עורקי5. פרמטרים קליניים אלה דורשות את היכולת למדוד לחץ דם עורקי ולאסוף בדם באופן יעיל, אשר בתורו מחייב את צנתור מוצלחת של6,עורק7.
צנתור עורקי כדי לאסוף דם עורקי ולמדוד את הלחץ כבר בשימוש שונים מיני בעלי חיים5,6,7,8,9,10, 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 , 19 , 20 , 21 ו בבעלי חיים בגילאים שונים של פיתוח19,20,21 , יש כוון לעבר שני שחזור הליכים (קליניים, אבחון)4,5, 6,7,8 ו שחזור ללא הליכים (ניסיוני)14,15,16,17,18. יתר על כן, להקל על הגישה עורקי המיקום של העורק בהקשר של הליך כירורגי גם הם שיקולים חשובים בבחירת בעורק למדידות בדם. לדוגמה, העורק סימטרית החציוני אצל כלבים עורק הפנים אצל סוסים, וכן את העורק פדלים כלבים, סוסים, הן בשימוש למדידה לאבחון ולניטור במהלך השחזור הליכים6,7, 8. לעומת זאת, עורק הצוואר ואת שמנקזים הם לעתים קרובות catheterized ב החזירים גם ללא שחזור או לטווח ארוך קטטר השרשה ניסויים14,15,18.
בחזיר, צנתור עורקי כדי למדוד לחץ דם עורקי או או לאסוף דם עורקי העסיקה באופן שגרתי את עורק הצוואר, את עצם הירך, המדיאלי saphenous גדולות, או אוריקולארית העורקים22,23. לקבלת הליכים מיוחדים הלא-שגרתי, העורקים יותר יוצאי דופן אחרים שימשו, כולל subclavian ו- iliac העורקים, למדוד את ה tortuosity האנטומי של עורק הזרוע17 , תמונה של אבי העורקים16, בהתאמה. ללא קשר עורק נבחרת עבור צנתור, כל עורק יש היתרונות והחסרונות עבור השימוש. למשל, העורק אוריקולארית קל מבחינה אנטומית לגישה, אך השימוש בו עלולה להיות מוגבלת על קרבתו אוזן שולי ורידים11,12. לשם השוואה, העורק הראשי הוא יחסית גדול וחזק24, אבל זה נמצא עמוק בתוך פארו צוואר ודורש רקמות מהותית לנתיחה25. ככזה, זיהוי עורק אחר זה יכול להיות catheterized כדי למדוד את לחץ הדם בעורק ולאסוף בדם יש הצדקה זה כתב היד של וידאו לתאר בפירוט את צנתור של העורק איחתי דיסטלי של חזיר, בטכניקה יכול לחול על ההליכים לשחזור שאינם. ראוי לציין, צנתור עורק הזרוע חזיר שימש כדי למדוד לחץ דם עורקי ופרמטרים גזים בדם במהלך ניתוח עמוד השדרה המותני עם מדידות גפה הינד (המידע מהחלק הזה של הניתוח לא יוצג).
Protocol
Representative Results
Discussion
צנתור עורקי כדי למדוד לחץ דם עורקי ולאסוף דגימות דם למדידות גזים בדם עורקי הקימה במגוון רחב של מיני בעלי חיים5,6,7,8 , 9 , 10 , 11 , 12 , 1…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
עבודה זו נתמכה על ידי מוסדות הקנדי למחקר בריאות וקרן קנדה חדשנות מענק כדי Mushahwar ק (פ’). א Toossi נתמכה על ידי וניהר קנדה במלגה ללימודי תואר שני, אלברטה מחדשת – פתרונות בריאות Studentship לתואר שני, המלכה אליזבת השנייה במלגה ללימודי תואר שני. V.K. Mushahwar הוא כיסא מחקר קנדה שיחזור פונקציונלי. ברצוננו להודות מר ג’יי ערימת הפקות רחוב מוס על עזרתו עם הפקה שמע, צוות של מכון מחקר רפואי כירורגי לסיוע שלהם עם ההליכים.
Materials
| 0.9% NaCl (Saline) Solution | EMRN | JB1322P | 1 x1 liter bag |
| 10% Lidocaine spray | AstraZeneca | DIN:02039508 / 1 x 50 ml bottle | |
| 10% Povidone-Iodine scrub | Purdue Pharma | 521232 | 1 x 500 ml bottle |
| 20 ga 1-inch angiocatheter | Becton Dickinson | 381433 | 1 x angiocatheter |
| 2-0 polyglactin suture (Vicryl) | Ethicon | J339H | 2-0 vicryl / 1 packet of suture |
| 2-0 polypropylene suture (Prolene) | Ethicon | 8833H | 2-0 prolene / 1 packet of suture |
| 22 ga 1-inch angiocatheter | Becton Dickinson | 381423 | 1 x angiocatheter |
| 9 ID mm endotracheal tube | Jorvet | J0835P | 1 x endotracheal tube |
| Arterial blood pressure IV line | Argon Medical Devices | 112411 | 1 x arterial blood pressure IV line |
| Disposable drapes | Halyard Sales LLC | 89731 | 4-8 x disposable drapes |
| Glycopyrrolate hydrochloride | Sandoz | DIN:02039508 / 1 x 20ml vial | |
| Isoflurane | Abbott Animal Health | 05260-5 | 1 x 250ml bottle |
| Kelly forceps-curved (14cm) | Stevens | 162-7-38 | 8-10 instruments |
| Ketamine hydrochloride | Vetoquinol | DIN:02374994 / 1 x 10ml vial | |
| Lactated Ringer's Solution | Hospira | 0409-7953-09 | 4 x1 liter bag |
| Metzenbaum scissors | Fine Science | 14518-18 | |
| Miller laryngoscope blade | Welch Allyn | 68044 | 182 mm length / 1 instrument |
| Nasal temperature probe | Surgivet | V3417 | 1 probe |
| Needle Drivers | Stevens | 162-V98-42 | 2 instruments |
| Q tip applicators | Fisher Scientific | 22-037-960 | 20-40 app |
| Remifentanil hydrochloride | TEVA | DIN:0234432 / 1 mg vial | |
| Surgivet advisor: Vital signs monitor | Surgivet | V9203 | 1 monitor |
| Weitlaner retractor | Stevens | 162-11-602 | 2 retractors |
| Xylazine hydrochloride | Bayer | DIN:02169606 1 x 50ml bottle |
References
- Uwiera, R. R., et al. Plasmid DNA induces increased lymphocyte trafficking: a specific role for CpG motifs. Cellular Immunology. 214 (2), 155-164 (2001).
- Uwiera, R. R., Kastelic, J. P., Inglis, G. D. Catheterization of intestinal loops in ruminants. Journal of Visualized Experiments. (28), (2009).
- Uwiera, R. R., Mangat, R., Kelly, S., Uwiera, T. C., Proctor, S. D. Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs. Journal of Visualized Experiments. (109), (2016).
- Wohlfender, D. H., et al. International online survey to assess current practice in equine anaesthesia. Equine Veterinary Journal. 47, 65-71 (2015).
- Dugdale, A. H., Taylor, P. M. Equine anaesthesia-associated mortality: where are we now?. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 43 (3), 242-255 (2016).
- McGrotty, Y., Brown, A. Blood gases, electrolytes and interpretation 1. Blood gases. In Practice. 35 (2), 59-65 (2013).
- Taylor, P. M. Techniques and clinical application of arterial blood pressure measurement in the horse. Equine Veterinary Journal. 13, 271-275 (1981).
- Trim, C. M., Hofmeister, E. H., Quandt, J. E., Shepard, M. K. A survey of the use of arterial catheters in anesthetized dogs and cats: 267 cases. Journal of Veterinary Emergency and Critical. 27, 89-95 (2017).
- Komine, H., Matsukawa, K., Tsuchimochi, H., Nakamoto, T., Murata, J. Sympathetic cholinergic nerve contributes to increased muscle blood flow at the onset of voluntary static exercise in conscious cats. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology. 295 (4), R1251-R1262 (2008).
- Krista, L. M., Beckett, S. D., Branch, C. E., McDaniel, G. R., Patterson, R. M. Cardiovascular Responses in Turkeys as Affected by Diurnal Variation and Stressor. Poultry Science. (60), 462-468 (1981).
- Bass, L. M., Yu, D. Y., Cullen, L. K. Comparison of femoral and auricular arterial blood pressure monitoring in pigs. Veterinay Anaesthesia Analgesia. 36 (5), 457-463 (2009).
- Karnabatidis, D., Katsanos, K., Diamantopoulous, A., Kagadis, G. C., Siablis, D. Transauricular arterial or venous access for cardiovascular experimental protocols in animals. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 17 (11 Pt 1), 1803-1811 (2006).
- Namba, K., Kawamura, Y., Higaki, A., Nemoto, S. Percutaneous medial saphenous artery approach for Swine central artery access. Journal of Investigative Surgery. 26 (6), 360-363 (2013).
- Hong, Y., et al. Feasibility of Selective Catheter-Directed Coronary Computed Tomography Angiography Using Ultralow-Dose Intracoronary Contrast Injection in a Swine Model. Investigative Radiology. (50), 449-455 (2015).
- Kumar, A., et al. Aortic root catheter-directed coronary CT angiography in swine: coronary enhancement with minimum volume of iodinated contrast material. American Journal of Roentgenology. (188), W415-W422 (2007).
- Park, J. H., et al. Safety and Efficacy of an Aortic Arch Stent Graft with Window-Shaped Fenestration for Supra-Aortic Arch Vessels: an Experimental Study in Swine. Korean Circulation Journal. 47 (2), 215-221 (2017).
- Carniato, S., Mehra, M., King, R. M., Wakhloo, A. K., Gounis, M. J. Porcine brachial artery tortuosity for in vivo evaluation of neuroendovascular devices. American Journal of Neuroradiology. 34 (4), E36-E38 (2013).
- Hannon, J. P., Bossone, C. A., Wade, C. E. Normal Physiological Values for Consious pigs used in Biomedical Research. Laboratory Animal Science. 40, 293-298 (1990).
- Nijland, M. J., Shankar, U., Iyer, V., Ross, M. G. Assessment of fetal scalp oxygen saturation determination in the sheep by transmission pulse oximetry. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 183 (6), 1549-1553 (2000).
- Yawno, T., et al. Human Amnion Epithelial Cells Protect Against White Matter Brain Injury After Repeated Endotoxin Exposure in the Preterm Ovine Fetus. Cell Transplantation. 26 (4), 541-553 (2017).
- Amaya, K. E., et al. Accelerated acidosis in response to variable fetal heart rate decelerations in chronically hypoxic ovine fetuses. American Journal of Obstetrics and Gynecology. 214 (2), e270-e271 (2016).
- Malavasi, L. M. . Swine. Anesthesia and Analgesia for Domestic Species. , (2015).
- Moon, P. F., Smith, L. J. General Anesthetic Techniques in Swine. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 12 (3), 663-691 (1996).
- Caramoni, P. R. A., et al. Postangioplasty restenosis: a practical model in the porcine carotid artery. Brazilian Journal of Medical and Biological Research. (30), 1087-1091 (1997).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 636-638 (1930).
- Lundeed, A. B., Manohar, M., Parks, C. Systemic distribution of blood flow in swine while awake and during 1.0 and 1.5 MAC isoflurane anesthesia with or without 50% nitrous oxide. Anesthesia and Analgesia. 31, 499-512 (1983).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 302-304 (1930).
- Adin, C. A., Gregory, C. R., Adin, D. B., Cowgill, L. D., Kyles, A. E. Evaluation of three peripheral arteriovenous fistulas for hemodialysis access in dogs. Veterinary Surgery. 31 (5), 405-411 (2002).
- Gladczak, A. K., Shires, P. K., Stevens, K. A., Clymer, J. W. Comparison of indirect and direct blood pressure monitoring in normotensive swine. Research in Veterinary Science. 95 (2), 699-702 (2013).
- Wenzel, K., et al. Survey of Effects of Anesthesia Protocols on Hemodynamic Variables in Porcine Cardiopulmonary Resuscitation Laboratory Models Before Induction of Cardiac Arrest. Comparative Medicine. 50 (6), 644-648 (2000).
- Duval, J. D., Pang, J. M., Boysen, S. R., Caulkett, N. A. Cardiopulmonary Effects of a Partial Intravenous Anesthesia Technique for Laboratory Swine. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 57 (4), 376-381 (2018).
- Friendship, R. M., Lumsden, J. H., McMillan, I., Wilson, M. R. Hematology and Biochemistry Reference Values for Ontario Swine. Canadian Journal of Comparative Medicine. (48), 390-393 (1984).
- Kiorpes, A. L., MacWilliams, P. S., Schenkman, D. I., Bickstrom, L. R. Blood Gas and Hematological Changes in Experimental Peracute Porcine Pleuropneumonia. Canadian Journal of Veterinary Research. (54), 164-169 (1990).
- Klem, T. B., Bleken, E., Morberg, H., Thoresen, S. I., Framstad, T. Hematologic and biochemical reference intervals for Norwegian crossbreed grower pigs. Veterinary Clinical Pathology. 39 (2), 221-226 (2010).
- Sisson, S. . The Anatomy of the Domestic Animals. , 804-810 (1930).
- Lopes-Berkas, V. C., Jorgenso, M. A. Measurement of Peripheral Arterial Vasculature in Domestic Yorkshire Swine by Using Quantitative Vascular Angiograph. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 50 (5), 628-634 (2011).
- Geary, R. L., et al. Wound healing: A paradigm for lumen narrowing after arterial reconstruction. Journal of Vascular Surgery. (27), 96-108 (1998).
